趙峻英,董劍,何建春,梅小億,歐國平
(大足區人民醫院 檢驗科,重慶 402360)
耐甲氧西林金黃色葡萄球菌(multiple-resistant staphylococcus aureus,MRSA)是金黃色葡萄球菌(staphylococcus aureus,SA)的一個獨特菌株,對多種抗生素耐藥,可引起嚴重的社區獲得性感染和醫源性感染[1-2],由于其癥狀與其他細菌感染無明顯差異,臨床難以早期針對該菌感染進行精準診斷和治療。常規的細菌培養方法通常需要2~3 d,甚至更久,難以滿足臨床的需求,因此,快速、靈敏、準確的MRSA檢測手段,是控制其感染和流行的關鍵[3-4]。本研究擬以環介導恒溫擴增技術(loop-mediated isothermal amplification,LAMP)和實時熒光技術相結合,構建實時熒光 LAMP(Rea-LAMP),同時檢測葡萄球菌的mecA耐藥標志性基因和SA特有的femA基因,并與VITEK2 Compact全自動微生物分析儀鑒定結果進行比較,初步探討實時熒光 LAMP(Rea-LAMP)方法快速鑒定MRSA在臨床應用中的可行性。
1.1.1菌株來源 隨機抽取2015年10月—2019年10月經VITEK2 Compact全自動微生物分析儀鑒定并保存于-80 ℃冰箱的68株SA,其中MRSA 37株、MSSA 31株。本研究選擇的標準菌株為MSSA(ATCC25923)、MRSA(ATCC43300)、表皮葡萄球菌(ATCC49134)、溶血葡萄球菌(CGMCC1.10528)、人葡萄球菌(ATCC27844)、沃氏葡萄球菌(ATCC17917)、頭狀葡萄球菌(ATCC 35661)、科氏葡萄球菌(ATCC29974)、路鄧葡萄球菌(ATCC700328)、腐生葡萄球菌(ATCC49907)、耳狀葡萄球菌(ATCC33753)、產色葡萄球菌(ATCC 43764)、佩氏葡萄球菌(DSM19554)、中間葡萄球菌(ATCC51874)、大腸埃希菌(ATCC25922)、肺炎克雷伯桿菌(ATCC700603)、銅綠假單胞菌(ATCC27853)、鮑曼不動桿菌(ATCC19606)和糞腸球菌(ATCC29212)標準菌株,由國家衛生和計劃生育委員會臨床檢驗中心提供。
1.1.2儀器與試劑 DEAOU-308C迪澳恒溫熒光檢測儀、VITEK2 Compact全自動微生物分析儀、細菌核酸提取試劑盒購自重慶中元匯吉生物技術有限公司,Loopamp DNA擴增試劑盒、梅里埃DENSIMAT比濁儀99234。
1.2.1細菌基因組DNA提取 將-80 ℃保存的19種標準菌株和68株臨床SA菌株接種于血平板上,于37 ℃溫箱培養18~24 h,取平板上的菌落于無菌生理鹽水中制成麥氏濁度為3.0~4.0的菌懸液1.5 mL,按細菌核酸提取試劑盒說明書操作步驟提取細菌DNA。
1.2.2引物設計與合成 從美國國立生物技術信息中心(national center for biotechnology information,NCBI)網站查找mecA和femA基因序列,并對查找到的基因序列使用Bioedit軟件進行比對,根據比對結果選擇保守區域利用LAMP引物設計軟件PrimerExplorer V5設計引物,引物序列由英濰捷基上海貿易有限公司合成。見表1。

表1 SA的Rea-LAMP檢測體系引物
1.2.3Rea-LAMP反應體系 將合成的引物序列F3、B3、FIP、BIP、LF、LB按1 ∶1 ∶8 ∶8 ∶4 ∶4混合配制引物混合液,然后取引物混合液1 μL進行Rea-LAMP反應,總反應體系25 μL:引物1 μL,2X反應液12.5 μL,鏈置換DNA聚合酶(Bst DNA polymerase)8U,待檢菌株DNA 2 μL,SYBR 0.5 μL,超純水補足至25 μL,在恒溫熒光檢測儀中進行反應(63 ℃,1 h)。
1.2.4特異性試驗 按1.2.1方法將提取的MRSA和MSSA及其他17種革蘭陽性和陰性標準菌株的全基因組DNA,按照Rea-LAMP的反應條件進行擴增,分析檢測信號并觀察熔解曲線,評價該體系引物的特異性。
1.2.5靈敏度試驗 測量提取的MRSA標準菌株全基因組DNA模板濃度,將濃度為1 mg/L的MRSA基因組DNA用超純水進行10倍梯度稀釋4次,得到5個不同濃度的DNA模板(1 000、100、10、1和0.1 μg/L),加入Rea-LAMP反應體系中進行反應,觀察擴增曲線,確定引物最低檢出限。
1.2.6重復性試驗 將MRSA和MSSA標準菌株作為陽性菌株,其余17種標準菌株作為陰性菌株,分別進行3次Rea-LAMP重復性試驗,所有標準菌株重復性試驗所用模板為同一模板。
1.2.7臨床菌株的檢測 用Rea-LAMP試驗體系對68株SA進行檢測,并與VITEK2 Compact全自動微生物分析儀鑒定結果進行比較。
MRSA標準菌株出現femA和mecA基因擴增曲線,MSSA標準菌株出現femA基因擴增曲線,其余17種病原菌的標準菌株未出現femA或mecA基因擴增曲線。擴增過程未出現引物二聚體的干擾,熔解曲線無雜峰。見圖1。

注:A為femA基因熔解曲線,B為mecA基因熔解曲線。
本研究體系顯示1 μg/L MRSA基因組DNA約23 min出峰,出現擴增曲線,此濃度為本研究體系的最低檢測限,見圖2。

圖2 MRSA靈敏度檢測
MRSA和MSSA各自的3個重復管幾乎同時出峰且擴增曲線幾乎重疊,其余菌株各自的3個重復管均無擴增曲線。
結果顯示,對68株臨床菌株檢測結果與VITEK2 Compact全自動微生物分析儀鑒定結果一致,見表2。

表2 本研究測試結果與VITEK2 Compact全自動微生物分析儀鑒定結果比較
MRSA一直以來是全球引起感染性疾病的重要病原菌之一,其耐藥性嚴重、耐藥機制復雜,使得臨床感染死亡率增高,成為當今感染醫學的一個難題[5-7]。
相關研究證明,MRSA菌株的耐藥性主要由mecA基因介導[8-9],其編碼產生的青霉素結合蛋白2a(PBP2a)使菌株對β-內酰胺類抗生素的親和力明顯降低,從而使細菌產生耐藥性[10-12]。故SA一旦獲得mecA基因,便可表現為高度和多重耐藥。
femA基因為SA所特有的基因,也是MRSA耐藥性的輔助基因[13-14],在MRSA中,femA基因啟動子或調控區域的插入,可使細菌細胞壁成分或結構發生改變,協助mecA基因降低對β-內酰胺類抗生素的敏感性,從而導致對甲氧西林耐藥[15-16]。
對于臨床實驗室而言,選擇合適的檢測方法,準確及時地發出檢驗報告尤為重要。LAMP是2000 年,由日本學者Notomi等[17]提出的一種恒溫核酸擴增技術,其特點是反應快、特異性強、靈敏度高、檢測成本低以及操作簡單等,被廣泛應用于分子診斷技術中[18-22]。本研究基于LAMP的基本原理,在mecA和femA基因序列上設計6條引物:2條外引物(F3、B3)、2條內引物(FIP、BIP)和2條環引物(LF、LB),特異性識別mecA和femA基因序列上的6個獨立區域,啟動循環鏈置換反應。內引物雜交在目標DNA區域,啟動互補鏈的合成,再通過外引物在同一鏈上互補序列,這樣周而復始形成有很多莖-環DNA混合物。環引物提高了反應靈敏度,縮短了反應時間,從而實現對目的DNA序列的快速擴增。同時,在反應體系中加入了SYBR熒光染料,反應過程在DEAOU-308C迪澳恒溫熒光檢測儀中進行,可對整個反應過程進行實時動態檢測。
本研究將LAMP的快速性和實時熒光的敏感性有機結合起來建立了Rea-LAMP檢測MRSA的新方法,主要特點包括以下5個方面。(1)特異性強,在靶基因mecA和femA的6個不同的區域設計了6條不同引物,要使目標序列快速擴增,引物必須與靶序列的6個區域嚴格識別配對,不受非目標DNA的干擾。本實驗選取了MRSA、MSSA和17種其他常見病原菌的全基因組DNA同時作為模板在Rea-LAMP檢測體系中擴增,僅MRSA和MSSA出現相應的擴增曲線。(2)檢測靈敏度高,本Rea-LAMP檢測體系的靈敏度達1 μg/L。(3)速度快,1 h以內即可完成檢測,大大縮短了檢測周期。常規的細菌培養的檢測方法通常需要2~3 d,甚至更久,本研究與常規的細菌培養和鑒定方法相比時間大大縮短,與普通的PCR方法相比省去了PCR模板的高溫變性和低溫退火步驟,節約了溫度變化導致的時間耗損。(4)穩定性好,MRSA和MSSA作為陽性樣品,各自的3個重復管幾乎同時出峰且擴增曲線幾乎重疊,說明該反應體系具有良好的穩定性。(5)實時動態檢測,本研究體系通過收集熒光信號,可對擴增體系進行實時動態檢測,及時跟蹤檢驗結果。同時,由于本研究的熒光染料SYBR在反應前加入,避免了實驗反應結束后開蓋導致氣溶膠污染。
在臨床菌株檢測中,同時出現mecA和femA擴增曲線的為MRSA,只出現femA擴增曲線的為MSSA。所檢測的臨床68株SA中,檢測出MRSA37株,MSSA31株,與VITEK2 Compact全自動微生物分析儀鑒定結果一致。由于本研究體系所檢測的臨床菌株數量有限,需增加菌株的數量做進一步的驗證。本研究只是定性檢測,下一步需要將嘗試設計標準曲線用于定量檢測。本研究只能檢測mecA和femA基因,對與MRSA耐藥機制有關的其他基因如mecC基因等[23-25]無法檢出。也無法區分MRSA和MSSA感染或定植。
綜上所述,雖然本研究的Rea-LAMP檢測MRSA的體系具有一定的局限性,但具有特異性強、穩定性好、靈敏度高、操作簡單快捷的特點,并且能夠實時動態觀察檢測結果,可為MRSA提供一種新的的快速檢測方法。