徐藝箏,鄒 明
(四川省骨科醫院,四川 成都 610041)
中醫體質較早見于《皇帝內經》,從陰陽、氣血、津液虛實盛衰,體質的能量虧虛、病理產物相關等不同方面強調不同體質與不同的環境因素有關,與疾病的發生、發展有密切關系。現今以王琦九種中醫體質分類最具代表性,其認為體質是一種客觀存在的生命現象,在先天遺傳和后天獲得的基礎上,表現出的形態結構、生理機能以及心理狀態等方面綜合的、相對穩定的特質[1]。濕熱質為常見偏頗體質之一,在人群中比例較高[2,3]。其形成因素主要有先天稟賦、久居濕地、嗜食肥甘、長期飲酒等[1]。隨著氣候、生活水平等變化,越來越多的人過食肥甘厚膩,嗜好煙酒,情緒緊張,出現形盛體實,濕熱蘊積,但目前對體質的評判主要依據主訴、四診等來收集信息,存在主觀、隨意的缺點[4],尚未建立客觀有效指標。本文參考中醫體質的成因,以脾胃濕熱實驗動物造模方法進行造模[5~7],觀察其血液流變學變化,以發現界定濕熱質方便快捷的實驗指標。
1.1 動物分組與造模于2014年12月至2016年9月選擇4周齡SPF級SD雄性大鼠16只,購于四川省達碩生物技術有限公司,許可證編號:SCXK(111)2013-24。采用隨機數字表法將其分為濕熱質組和對照組各8只,兩組基礎體重、體溫、腹圍、體長無差異,分籠飼養。對照組在自然環境下普通飼料喂養。濕熱質組大鼠參考中醫濕熱質成因,通過增加動物生活環境的溫度和濕度,制造“外濕”;過食肥甘的方法損傷脾胃,阻礙運化,制造“內濕”,復制濕熱質動物模型[7]。采用普通標準顆粒飼料中混入12%豬油,8%蜂蜜制作高脂高糖飼料,飼養10天后,放入人工氣候箱內,其濕熱環境為溫度(32±2)°,相對濕度(95±2)%,仍用高脂高糖飼料喂養每日飼養10 h,進行造模。鼠糧投放時間為每日早8:30至晚18:30。飲用水(本院純凈水)始終足量供應。造模干預時間為28 d,依據方肇勤的方法[6]判斷并成功造模。
1.2 方法造模完成后,用10%水合氯醛按0.15 ml/100 g對大鼠進行腹腔注射麻醉,心臟穿刺取血。乙二胺四乙酸二鉀(EDTA.2k)抗凝管采集2 ml全血,2小時內使用日本希森美康XN1000血細胞計數儀進行全血細胞計數測定,獲得紅細胞(RBC)、血紅蛋白(HGB)、平均紅細胞血紅蛋白濃度(MCHC)、平均血紅蛋白量(MCH)、平均紅細胞體積(MCV)、紅細胞壓積(HCT)及紅細胞分布寬度(RDW-CV)。肝素抗凝管采集全血4 ml,4小時內使用北京賽科希德SA-6000血流變儀進行血液流變學指標測定,獲得切變率(1/s)為1(rt1)、5(rt5)、50(rt50)、100(rt100)、200(rt200)的全血粘度,血漿粘度(xjnd)、全血高切相對指數(gqxd)、全血低切相對指數(dqxd)、全血低切還原粘度(dqhy)、全血高切還原粘度(gqhy)、紅細胞聚集指數(hjj)、紅細胞剛性指數(hgx)、紅細胞變形指數(htk)。每7 d觀察1次大鼠體表特征,測量1次大鼠體重、攝食量、飲水量、抓力,體溫及抓力,于28天造模結束后比較兩組結果差異。體溫以測定大鼠肛溫表示,連續測2次,取平均值。抓力測試方法為將抓力測試儀水平放置,大鼠輕輕放在抓力板上,抓住鼠尾輕輕往后拉,帶大鼠抓牢抓力板后均勻用力后拉,直到大鼠松爪,記錄大鼠最大抓力,重復測量3次,每次間隔30秒,取3次平均值。每日測量剩余食/水量,食/水量均值=(投放量-剩余量)/大鼠只數。
1.3 統計學方法采用SPSS 17.0軟件進行數據統計分析。正態分布的計量資料以均數±標準差表示,組間數據比較采用獨立樣本t檢驗。P<0.05為差異有統計學意義。
2.1 兩組主要癥狀及體征比較濕熱質組大便有時稀溏、有時濕便有黏液;小便黃濁;毛色發暗雜亂、頸背部毛色發紅;外陰紅腫;尾巴肛門骯臟;舌質暗紅,舌苔厚膩;腹部脹滿;肛門周圍臟;應急排便。而對照組舌質粉紅;舌苔淡白;活躍;毛色白亮、整潔;反應靈敏;大小便正常。濕熱質組飲食、飲水量、抓力較對照組減少,體重及體重增幅較對照組高;兩組體溫、腹圍和體長比較,差異無統計學意義(P>0.05)。見表1。

表1 兩組主要癥狀、體征變化比較
2.2 兩組血液流變指標變化濕熱質組低切全血粘度rt1、rt5、hjj、dqhy高于對照組(P<0.05),hgx、htk較對照組明顯降低,差異有統計學意義(P<0.05)。見表2。

表2 濕熱質與對照組血液流變學指標比較

項目濕熱質組對照組tPgqxd3.59±0.623.99±0.28-1.6620.119dqxd31.48±10.0829.24±1.920.6150.549hjj8.13±0.907.35±0.372.2850.037dqhy(mPa.S)90.42±12.2980.05±5.192.1990.045gqhy(mPa.S)7.81±0.788.46±0.61-1.8530.085hgx6.31±1.357.57±0.79-2.2840.038htk0.97±0.111.07±0.06-2.3450.034
2.3 兩組血常規指標變化濕熱質組MCHC、MCH較對照組明顯下降(P<0.05),RBC、HGB、HCT、MCV、RDWSD兩組比較差異無統計學意義(P>0.05),見表3。

表3 濕熱質組與對照組血液學指標比較
濕熱質在偏頗體質中居于前三位[2,3],約占正常人群的 9.88%[8],濕熱之邪,不但可由外而感,且可自內而生。濕熱質大鼠,大便有時稀溏、有時濕便有粘液、毛色發暗雜亂、舌質暗紅、舌苔厚膩等體征與王琦等[2]對人體的研究一致。而呂冠華等通過給予實驗大鼠高脂高糖飲食,損傷大鼠脾胃,發現在短期內濕熱大鼠體重增加,飲食減少,精神萎靡,也與本研究一致。高脂高糖飲食過量攝入,干擾了機體正常的糖、脂代謝,使得大鼠體重明顯增加,出現肥胖之體,祖國醫學素有“肥人多濕”的觀點,而脂質代謝與氣血津液的運行和代謝過程密切相關[9],肥胖者因為其機體聚集濁脂,影響臟腑經脈,妨礙氣血運行,甚至影響臟腑功能[10]。大鼠高脂高糖的飲食使得能量代謝異常,內生濕熱,而濕濁內生,郁而化熱,濕熱質與體重具有較強的關聯性,其濕熱內蘊[11,12],多形體偏胖。脾胃虛弱為濕熱前提[5],過食肥甘致脾胃損傷,使得水谷精微難以生成精血,氣血津液失于運化,致濕熱質大鼠乏力,抓力下降。而體溫、腹圍和體長等體征也與呂冠華等[5]研究一致。
濕熱質者血脂代謝紊亂的概率高[13],為血脂異常的危險因素[9,14]。濕熱質大鼠攝入過多脂質,可使大鼠體內脂質增加,誘發脂質過氧化及生成自由基中間物,進而破壞內皮的完整性損傷血管內皮[15],引起血管擴張功能減弱,血管可痙攣或狹窄,血流阻力增加而致全血粘度增加。濕熱質大鼠通過高脂飼料喂養,終使紅細胞膜的液態特性的脂質雙層受到影響,膜的力學性質改變,膜流動性下降,變形性(htk)下降,與熊延連等[16]發現脂質過氧化對紅細胞變形性的研究一致。而變形性好壞又決定了血液的流動性,變形性降低,血液流動性變小,可使紅細胞的微粘度增加,影響氧的彌散,又進一步降低紅細胞變形性。加之攝入過多脂質,使血液脂質濃度增加,增加了血液粘度。Htk受紅細胞內粘度影響非常大,而紅細胞內粘度受MCHC、MCH的影響[17],濕熱質大鼠MCHC、MCH的降低,表明其紅細胞內粘度增加,變形性下降。Htk還受hgx的影響,hgx越大,紅細胞硬化程度越高,紅細胞變形性越差。但濕熱質大鼠hgx下降,與羅超等[18]對剛性指數與變形指數的研究不一致,可能與濕熱質大鼠對外濕環境的適應性改變有關。
濕熱質大鼠在濕度和溫度增加的外濕條件下生活,可通過對外界的適應性反應,代謝和激素水平等內環境發生相應改變。其紅細胞變形能力減低,血流變慢,流量減少,影響組織和器官的血液供應,使紅細胞在微血管易于瘀積。濕熱質大鼠hjj明顯增加,表明紅細胞聚集性增加,可使低切變率全血粘度增加,致紅細胞運送氧的能力受影響,紅細胞通過微循環障礙,進一步減小微循環血流灌注,造成組織缺血缺氧,使得紅細胞內粘度增高,影響變形性。而組織缺血缺氧可影響局部pH值的變化,使毛細血管通透性增加,血漿滲出,微血管中血液濃縮,可影響機體HCT,而HCT是影響血液粘度的主要決定因素,在濕熱質大鼠中,其HCT、RBC等均未有明顯改變,但濕熱質大鼠經HCT校正后的dqhy卻明顯增加,表明機體低切變率全血粘度明顯增加主要受到hjj、hgx、htk、MCHC、MCH對紅細胞變形性和聚集性的影響,與大鼠過食高脂高糖肥甘食物及在一定溫度和濕度的環境中生活的“內外濕”有關。濕熱質大鼠紅細胞變形性降低,聚集性增加又進一步使血液粘度增高,形成惡性循環,使得全身或局部血液循環和微循環受到影響,加重組織器官缺血缺氧,引起新陳代謝和生理功能障礙,致濕濁內停、血行滯澀,機體產生濕熱等病理物質而留滯不去,久而久之在人體內蓄積,血液濕性重濁黏滯,又與熱相合,則膠結難解影響機體健康。
綜上所述,祖國醫學在疾病治療中強調標本兼治,突出辨體論治,治人即“治體”,辨識體質在疾病診療中極為重要。濕熱質大鼠血液流變特性異常是在實驗室極易獲得的測試指標,可作為識別中醫濕熱體質定量、客觀判斷的早期輔助指標。但本課題研究是在動物模型中進行,尚需在大樣本的人群中觀察后進行臨床應用。