利用HRM技術鑒定db/db小鼠基因型方法的建立

林 曉，譚睿陟，劉彤彤，張宇韋，王 麗

（西南醫科大學附屬中醫醫院中西醫結合研究中心，四川瀘州 646000）

隨著我國生活水平不斷提高，糖尿病等慢性代謝疾病的發病率呈直線上升趨勢[1]，嚴重威脅到人類健康，已成為較大的醫療負擔[2]。

db/db小鼠為美國Jackson實驗室研發，該小鼠4號染色體的瘦素受體等位基因突變形成了自發性的糖尿病。db/db小鼠沒有繁殖能力，將雜合子db/m與db/m進行交配，繁殖的后代有三種表型：1/4的野生型m/m，1/2的雜合子db/m,1/4的純合子db/db。db/m和m/m在體型上相似，它們的血糖、體重、血漿都正常。但是由于m基因對代謝影響較大，所以m/m與db/m相比，代謝效率更高，更容易耐受饑餓。而db/db在2周齡左右即出現高胰島素血癥，3到4周齡明顯肥胖，4到8周齡出現高糖血癥，并表現出多食，消渴，多尿等典型糖尿病的臨床表現，其腎臟，心血管，末梢神經等多個系統可觀察到病理變化，在研究糖尿病發病機制及治療方面具有較高的應用價值[3-4]。HRM（high resolution melting），即“高分辨率熔解曲線”，是最近在國內外興起的最新SNP及突變研究工具，具有簡單、快速、高通量、低成本的特點，可用于突變掃描，基因分型和甲基化研究。該技術在標準qPCR試劑的基礎上再加入飽和雙鏈DNA結合染料即可進行，無需序列特異性探針，直接運行高分辨率熔解曲線，即可完成對樣品基因型的分析。由于純合db/db小鼠基因型鑒定困難，常用的小鼠基因型鑒定方法酶切法和DNA測序法費時費力，成本相對較高。本文采用HRM技術建立了對db/db小鼠基因型鑒定的方法，并對其結果的準確性和一致性進行了驗證[4-5]，現總結報告如下。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 實驗動物

db/db小鼠（BKS.Cg-Dock7m+/+Leprdb/J，Jax編號：000642）購于Jax Lab。于SPF級實驗動物中心常規飼養，在飼養期間每日給予小鼠足夠的SPF級飼料和新鮮的飲用水，室溫20～22℃，相對濕度60%～70%，光照12 h明暗交替。在出生3周左右剪取鼠尾提取DNA，利用HRM技術鑒別野生型（m/m），雜合子（db/m），純合子（db/db）[6]。

1.1.2 實驗試劑

2×Super EvaGreenMaster Mix for HRM試劑盒購于US Everbright；DNA提取試劑：SDS購于上海伯樂生命醫學產品有限公司，Tris、EDTA購于上海生工工程股份有限公司，蛋白酶K購于上海艾研生物科技有限公司；酶切試劑：Taq polymerase購于北京全式金生物技術有限公司，dNTP、AfaI、0.1%BSA、10×buffer購于Takara。

1.1.3 實驗儀器

主要儀器LightCycler?480 II實時熒光定量PCR儀 ，MSC-100ThermoShakerIncubator，Nano-Drop2000 Spectrophotometer，BIO-RAD PowerPac Basic電泳儀及電泳槽，Veriti?96-Well Thermal Cycler。

1.2 方法

1.2.1 模型小鼠DNA提取

酚氯仿提取法:剪取0.3～0.5 cm小鼠尾巴，放入1.5 mL EP管；加入190 μL裂解液和10 μL蛋白酶K（10 mg/mL），55℃，750 r/min過夜震蕩，使之充分消化；加入10 μL RNA酶(20 mg/mL)，混勻，37 ℃恒溫箱中放置1 h后13 000 r/min離心5 min,取上清到新的1.5 mL EP管中；加入等體積（200 μL）的酚∶氯仿∶異戊醇=25∶24∶1，反復顛倒 20次后室溫放置5 min；4℃下13 000 r/min離心5 min，轉移上層水相（約200 μL）至一新的1.5 mL EP管中；加入等體積(200 μL)異丙醇沉淀DNA,反復顛倒離心管20次，13000 r/min，15 min收集沉淀的DNA；小心傾倒出異丙醇。將DNA沉淀浸沒于1 mL 70%乙醇里。如果沉淀比較松散，再離心5 min。傾倒除去乙醇，開蓋在室溫下放置15～20 min或在37℃孵育箱中放置5 min，讓乙醇充分揮發（此步驟重復兩次）；加入50 μL ddH2O，輕微震蕩使DNA沉淀溶解，-20℃保存備用。

改良后的DNA提取方法:剪取小鼠尾端約0.5～1 cm，放入1.5 mL EP管中；每管加0.5 mL裂解液[0.5%SDS，0.05 M Tris-HCL(pH 8.0),2.5 mM EDTA，0.1 M Nacl]和 50μl蛋白酶 K(100 μg/mL)[7]，55 ℃震蕩過夜；第2 d將樣本，12 000 r/min，4℃，離心 10 min；收集上清加入1.5 mL EP管中，加1 mL100%乙醇，蓋緊蓋子后輕搖，可見絮狀沉淀；13 000 r/min，離心15 min，棄上清；加70%乙醇1 ml，洗滌，13000 r/min，離心10～15 min；棄上清，收集沉淀，室溫放置10～15 min；每管加100 μL ddH2O，蓋好后在室溫放置1 h或數小時使之充分溶解；待DNA全部溶解后-20℃保存（如DNA溶解不完全,在37℃水浴中放置30～60 min，但不可過夜）。

1.2.2 引物的設計與合成：

根據Geenbank中Lepr基因序列（NC_000070），設計用于PCR擴增的引物，見表1、表2。

表1 用于HRM的正向和反向引物

表2 用于DNA測序的正向和反向引物

1.2.3 反應體系及條件

PCR擴增及HRM分型：PCR擴增及HRM分型在LightCycler?480 II實時熒光定量PCR儀上完成，使用包含一種專為qPCR和高分辨溶解曲線分析設計的DNA結合染料的2×Super EvaGreen Master Mix for HRM試劑盒（US Everbright Inc.），在PCR儀上運行Gene Scanning選項對PCR擴增產物進行分析。最初的反應體系：2 × Mix for HRM 10 μL；primer hrm F+R 1 μL；DNA模板（10 ng/uL），1 μL；ddH2O8 uL；優化后的反應體系：2× Mix for HRM 5 uL；primer hrm F+R 1.5 uL；DNA模板（5 ng/μL）1 μL；dd H2O 2.5 μL。最適反應條件：pre-incubation，95 ℃ 2 min；amplication，95 ℃ 10 s，58 ℃ 10 s，72 ℃ 10 s，45個循環；HRM，95 ℃ 1 min，40 ℃ 1 min，65 ℃ 1 s；cooling 1 h。

測序法：PCR擴增體系10 × buffer 2 μL；PrimerF 0.5 μL；PrimerR 0.5 μL；dNTP 1 μL；Taq polymerase 0.2 μL；ddH2O 14.8 μL；DNA 1 μL；然后在PCR儀直接運行“Genotyping”程序（stage 1：95℃ 5 min；stage 2：95 ℃ 30 s，50 ℃ 45 s，68 ℃ 1 min，35個循環；stage 3：68℃ 10 min，16℃ ∞。）PCR完成后，用1%的膠點樣2 μL檢測是否有條帶，將有條帶的陽性樣本送上海生物工程有限公司測序。

1.2.4 血糖測定

糖尿病小鼠會出現糖代謝紊亂，所以在小鼠空腹12 h后，抽取尾尖靜脈血測定其血糖含量，從出生后第8周齡開始，每隔一周檢測一次，持續一個月，觀察三種基因型小鼠的血糖變化趨勢。

1.2.5 數據統計

數據結果采用SPSS 17.0進行統計分析，計量資料用均數±標準差（±s），多個樣本均數比較采用單因素方差分析（one-way ANOVA），兩兩比較用LSD法，P＜0.05為差異具有統計學意義。

2 結 果

2.1 改良DNA提取方法與常規方法的結果

對所提取的DNA測定其在260 nm和280 nm處的吸光度值，通過A260/A280的比值判定DNA的純度。檢測結果顯示，用常規方法提取的DNA其A260/A280比值多數小于1.8，提示可能存在蛋白質污染；而改良方法提取的DNA其A260/A280比值多為1.8～2.0，純度較高，說明改良DNA提取方法比常規方法更優。

2.2 利用HRM技術進行基因鑒定的三種分型結果

由于野生型，純合子，雜合子三種基因型具有不同的核酸序列，溶解曲線有所差異，據此可以分辨出三種基因型。在所設計的反應條件下對樣品進行鑒定，能夠準確區分出野生型（m/m），純合子(db/m)，雜合子(db/db)，見圖1。

2.3 HRM反應條件優化結果

圖1 利用高分辨溶解曲線（HRM)分析技術對db/db小鼠的基因分型結果

本實驗設計了三種不同退火溫度，分別是58℃、62℃、65℃，最后的結果表明當退火溫度為58℃時更能準確地區分出三種基因型的熔解曲線。通過對退火溫度的優化，找到最適反應條件，提高了分型準確性。當所用DNA模板濃度和其他試劑用量減半，也能獲得良好的分型結果，在很大程度上節約了實驗成本。

2.4HRM分型結果與DNA測序法結果一致

將用qPCR-HRM已經分型的三種基因型樣品，再用DNA測序方法進行驗證。結果顯示HRM分型結果與DNA測序法分型結果一致，證明HRM分型結果的準確性(見圖2）。

2.5 HRM分型結果與小鼠表型一致

圖2 db/db小鼠的DNA測序分型結果

小鼠在出生三周左右就被減尾鑒定基因型，在剪去尾后繼續飼養觀察。在出生2～3個月后，與野生型和雜合子相比，db/db小鼠多飲，多食，多尿癥狀明顯，體重大幅度上升，差異具有統計學意義（F=1015，P＜0.000 1）。測定空腹狀態下db/db小鼠的血糖，可高達20 mmol/L，耐受糖的能力明顯下降。表明HRM分型結果是準確的，小鼠表型符合預期結果(見圖3）。

圖3 通過HRM鑒定的三種基因型小鼠的表型

3 討論

糖尿病在我國乃至全世界其發病率均呈逐年上升趨勢，已經成為全世界致死率極高的疾病之一。因其病因復雜，與多種因素相關，在研究和治療糖尿病方面還有諸多問題亟待解決。與以往用的ob/ob小鼠相比，db/db小鼠糖尿病的發病進程與人類T2DM相似，病程長，病情穩定，“三多一少”合并肥胖癥狀明顯，是現在應用較為廣泛的一種糖尿病模型。而對于只是發生點突變的糖尿病小鼠模型的基因檢測，采用常規的基因測序和酶切法普遍存在耗時長，過程復雜，難以實現高通量需求等問題。HRM技術是近幾年興起的一種檢測技術，通過PCR擴增產物的溶解曲線，能分析檢測出基因序列之間的微小差異[8-9]。本實驗利用HRM技術建立了db/db小鼠的基因分型方法，減少了DNA提取樣品和試劑的消耗，并且通過對退火溫度的優化，使其準確度和穩定性更高。該方法省時省力、交叉污染小、結果準確度高，在批量進行db/db小鼠基因鑒定上值得大力推廣。

3.1 改良DNA提取方法，獲得純度較高的DNA產物

與以往的DNA提取方法相比，本實驗采用了改良后的DNA提取法。因酚保存時間短，容易造成DNA產量降低和DNA碎片，從而會影響后面的基因分型結果[7]。而改良后的方法操作簡便，大大減少了交叉污染的幾率，并且能夠得到高純度的DNA，提高基因分型的準確性，適用于提取大量樣品。

3.2 優化后的HRM方法鑒定db/db小鼠省時省力，準確度高

隨著對基因領域研究的不斷深入，傳統的測序和酶切方法操作繁瑣，耗時長，而近幾年興起的HRM技術能夠具有高通量，快速，準確度高，穩定性好的特點[10]。在臨床研究，疾病診斷方面受到了很多科學家的賞識。另外，Gene Scan是一種用途十分廣泛的DNA片段分析技術，是將熒光標記的DNA片段，如PCR產物，在測序儀上對其進行片段大小、拷貝數量分析檢測的過程。用HRM方法分析樣品時，需要用到Gene Scan對PCR擴增產物進行數據分析，以保證結果的準確性[11-12]。

本文以db/db小鼠為例，建立了qPCR-HRM基因分型方法，分型結果與DNA測序法結果高度一致，且分型結果與小鼠表型所體現出來的疾病狀態一致，說明該方法鑒定db/db小鼠基因型的可靠性。通過對HRM反應退火溫度進行優化，找到了最適的退火溫度，能夠更加準確清楚的分辨出三種基因型的熔解曲線。在減少了DNA模板的濃度和反應體系的體積之后，PCR擴增依然能達到平臺期，沒有發生非特異性擴增，效果好，在一定程度上減少了消耗。與DNA測序法相比，大大縮短了實驗時間，操作簡便，省時省力。整個擴增過程中為閉管操作，污染小，同時一次可分析大量樣品，可用于大批樣本的檢測。

4 結論

隨著市場對db/db糖尿病小鼠模型的需求增加，利用HRM方法能夠提高鑒定db/db小鼠基因型的效率，利于db/db小鼠大規模生產，并且也寄希望于進一步應用到其他與db/db小鼠相似的小鼠模型的基因鑒定當中去。