狂犬病毒PV-2061株免疫熒光檢測方法的可行性

李爽 田威 (通訊作者) 謝花 李鶴

（沈陽藥科大學 遼寧 沈陽 110016）

狂犬病是一種人獸共患急性傳染病，由狂犬病毒引起的，可導致嚴重的中樞系統疾病，又稱恐水癥，是死亡率高達100%的急性傳染病，被傳染病防治法列為乙類傳染病。狂犬病至今仍無特效的治療方法，實施疫苗免疫是預防和控制狂犬病發病最有效的措施[1]。為保證狂犬疫苗免疫的有效性，開展對RV毒力的檢測十分必要。本文旨在建立簡單、快速、特異性好、敏感度高的免疫熒光的檢測方法，對狂犬病毒PV-2061株進行檢測。

1.材料和方法

1.1 主要材料

狂犬病毒PV-2061株：原始毒株來源于ATCC；Vero細胞：來源于中科院上海細胞庫。FITC標記的抗狂犬病病毒特異性熒光抗體：購自美國Novus公司，濃度0.75mg/ml。

1.2 熒光抗體最佳工作濃度的確定

1.2.1 熒光抗體稀釋：用PBS將熒光抗體2倍系列稀釋，取50×、100×、200×、400×、800×、1600×共6個稀釋度。

1.2.2 細胞培養：將Vero細胞稀釋成1×105個/ml，加入到96孔細胞培養板中，100μl/孔，放二氧化碳培養箱中培養。

1.2.3 加毒：取一批狂犬病毒樣品，稀釋成濃度為1×10-3。加入到已制備好的單層96孔板中，100μl/孔，放培養箱繼續培養48h。

1.2.4 固定：取出96孔板，棄培養基，PBS洗板3次，加冷丙酮，-4℃固定30分鐘。棄丙酮，風干。

1.2.5 加熒光抗體：加入2倍倍比稀釋的熒光抗體，每個稀釋度加一列8孔，50μl/孔。37℃濕育1h，PBS洗板3次，置熒光顯微鏡下觀察。記錄熒光病灶數，以出現“++++”的抗體最大稀釋濃度為其最佳工作濃度。

1.3 免疫熒光測定法

1.3.1 病毒稀釋：將16批狂犬病毒樣品10倍稀釋，取6個稀釋度（10-3、10-4、10-5、10-6、10-7、10-8），接種到制備好的96孔板中，100μL/孔，每個稀釋度加每列6孔，剩余2孔加培養基作為空白對照孔，培養48h。

1.3.2 按1.2.4固定。

1.3.3 熒光染色：加入最佳工作濃度的熒光抗體，50μL/孔。37℃濕育1h，洗板，鏡下觀察。記錄熒光灶數，細胞漿內有綠色熒光顆粒者為陽性，正常細胞對照無特異性熒光為陰性，以Reed-Muench法計算病毒滴度。

1.4 小鼠測定法

將16批病毒樣品10倍稀釋，取10-4、10-5、10-6、10-7四個稀釋度，腦內接種小鼠，6只/稀釋度，0.03ml/只。觀察14d，計算結果。

1.5 重復性實驗

采用兩名實驗人員在相同的條件下，分別用免疫熒光法和小鼠法檢測同一批病毒滴度，每人檢測3次，每個樣品重復檢測6次。

2.結果

2.1 免疫熒光抗體最佳工作濃度的確定，結果見表1

以熒光抗體清晰的顯示特異性熒光，且熒光閃亮，空白對照的非特異染色弱的最大稀釋比例為最佳工作濃度，本文選擇100倍為最終的熒光抗體稀釋倍數。

表1 熒光抗體工作濃度

2.2 病毒樣品的檢測結果

16批病毒液樣品用免疫熒光法及小鼠腦內滴定法測定病毒滴度，結果見表2。兩種方法檢測的結果趨勢相同，見圖1。免疫熒光法與小鼠法進行比較，顯示差異無統計學意義（P值為0.187，P＞0.05），相關系數為0.629，說明兩種方法呈良好的正相關性。

表2 16批狂犬病毒滴度的結果

重復性實驗，同一份病毒樣本分別用免疫熒光法和小鼠法檢測6次，結果見表3。免疫熒光法測得的結果平均值為6.81，數據與平均值的最大差值為0.19，變異系數為1.69%；小鼠法測得的結果平均值為6.95，數據與平均值最大差值為0.43，變異系數為3.31%，因此說明免疫熒光法有更好的重復性，精密度更高。

圖1 16批病毒樣品的滴度結果

表3 重復性實驗兩種方法測得的病毒滴度

3.討論

近年來隨著科技的發展，針對病毒滴度的生物學檢測方法

越來越先進，但也有優勢和局限性。小鼠法是《中華人民共和國藥典》三部（2015版）[2]規定狂犬病毒的經典檢測方法，但因其檢測周期較長，動物個體差異影響實驗結果等缺點，被細胞法取代是必然趨勢。免疫熒光法是將熒光色素標記技術的靈敏性，再加上抗原抗體反應的特異性，兩者結合的一種免疫檢測技術。另外該法可精確計數被病毒感染的細胞個數，因此敏感性也很好。目前，國內也已經開始采用免疫熒光法控制狂犬病疫苗的生產過程[3]。本文采用兩種方法檢測狂犬病毒毒力，趨勢相同，相比之下變異系數更小，且重復性和精密度更好。因此，免疫熒光法作為狂犬病毒滴度的定量測定是可行的，值得推廣。