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ShRNA靶向干擾BHRF1基因抑制鼻咽癌細胞增殖

2015-12-25 03:36:24張艷平,丁矢,李雪蘭
中國老年學雜志 2015年1期
關鍵詞:細胞增殖

ShRNA靶向干擾BHRF1基因抑制鼻咽癌細胞增殖

張艷平丁矢李雪蘭楊杰唐峰歐勇

(常德職業技術學院醫學系,湖南常德415100)

摘要〔〕目的針對ShRNA靶向干擾BHRF1基因抑制鼻咽癌細胞增殖以分析癌癥靶向治療的前景。方法通過基因測序法鑒定所構建的siRNA表達載體。用四唑鹽比色(MTT)法、流式細胞術評價轉染siRNA后對鼻咽癌細胞增殖、凋亡的影響。結果與NC-shRNA組相比,BHRF1-shRNA組細胞凋亡增加,凋亡率為(31.51±1.59)%。結論由慢病毒載體介導的shRNA表達載體進入細胞后,可以有效下調BHRF1基因表達水平,抑制細胞增殖,促進細胞凋亡。

關鍵詞〔〕慢病毒;ShRNA;靶向干擾;BHRF1基因;細胞增殖

中圖分類號〔〕R739.63〔

基金項目:2012年度湖南省高等學校科學研究項目(12C0968)

通訊作者:丁矢(1979-),女,講師,主要從事病理學研究。

第一作者:張艷平(1971-),女,副教授,主要從事醫學免疫學與病原學研究。

目前認為鼻咽癌的發生、發展與遺傳、環境和Epstein-Barr(EB)病毒感染等多因素有關,特別是與EB病毒(EBV)密切相關〔1〕。該疾病好發于中老年人群,具有較高的致殘、致死率。EBV早期基因BamHI-H右向讀碼框1(BHRF1)基因編碼的BHRF1蛋白是一種結構與功能都和細胞Bcl-2 同源的蛋白,很多研究〔2,3〕表明BHRF1 在EBV復制期可以抑制感染細胞的凋亡,延長細胞壽命,有利于病毒的成熟和擴散,但BHRF1基因編碼的蛋白最終是通過何種途徑抑制細胞凋亡的發生,從而導致細胞癌變的分子機制目前還未完全闡明。鑒于EBV BHRF1 基因與原癌基因bcl-2 同源,具有抑制細胞凋亡的作用,探討以BHRF1 為靶點對EBV 相關鼻咽癌進行治療的巨大潛在價值。

1資料與方法

1.1一般資料我院2010年1月至2013年12月老年鼻咽癌手術患者20例,男13例,女7例;平均年齡(65.32±3.78)歲,術中病理切片,并分離出人鼻咽癌CNE2細胞,將這些細胞分為兩組,一組為BHRF1 shRNA質粒載體轉染過的CNE2細胞(BHRF1-shRNA組),一組為未進行轉染的CNE2細胞(NC-shRNA組)。Trizol totalRNA試劑盒,BHRF1 shRNA序列,由Qiagen公司合成,構建靶向表達載體,應用體外轉染試劑轉染CNE2細胞。

1.2方法運用四唑鹽比色(MTT)法繪制生長曲線。選擇對數生長期細胞0.25%胰酶消化,懸浮計數,接種于96孔板,約500個/孔。慢病毒感染后置于37℃、5% CO2培養箱孵育10 h。每孔加入5 mg/ml MTT溶液,繼續細胞培養箱內培養4 h。移除培養液,每孔加入150 μl二甲基亞砜(DMSO),低速震蕩10 min,酶聯免疫檢測儀。570 nm處測量每孔吸光值光密度(OD)值,OD值表示細胞增殖能力大小。連續觀察7 d繪制細胞生長曲線。同時設置調零孔(培養基、MTT、DMSO),空白對照孔,每個樣本設3個復孔。

運用異硫氰酸熒光素(FITC)-Annexin V/碘化丙啶(PI)雙染色法測定細胞凋亡。按FITC-Annexin V/PI試劑盒操作說明,取不同時間點細胞用不含乙二胺四乙酸(EDTA)的胰酶消化,1 000 r/min離心5 min,收集1×105~5×105細胞,用磷酸鹽緩沖液(PBS)洗滌細胞二次,1 000 r/min,離心5 min。加入500 μl的結合緩沖液,輕輕搖晃或者吹打,使細胞懸浮,先加入5 μl Annexin V-增強綠色熒光蛋白(EGFP)混勻后,再加入相同體積 Propidium Iodide混勻。在室溫下,避光環境中,反應5~15 min。1 h內,進行流式細胞儀上樣檢測,激發波長Ex=488 nm;發射波長Em=530 nm。Annexin V-EGFP 的綠色熒光通過FITC 通道(FL1)檢測;PI 紅色熒光通過PI 通道(FL2 或FL3)檢測。熒光補償調節:使用未經凋亡誘導處理的正常細胞,作為對照進行熒光補償調節去除光譜重疊和設定十字門的位置。以β-actin為內參,運用Western印跡法分析各感染組BHRF1基因蛋白表達情況,獲得各組BHRF1基因表達量,以相同觀察時間點空白組細胞BHRF1基因表達量為100%,利用公式:BHRF1表達率(%)=100%×(BHRF1-shRNA組或NC-shRNA組BHRF1基因蛋白表達量/空白組hTERT 表達量),計算各組細胞中BHRF1基因蛋白相對表達水平。酶標儀分析各組細胞,在570 nm處測量每孔吸光值OD,以空白組細胞OD值為100%,通過公式:100%×(處理組OD值/空白組OD值)。流式細胞分析選擇感染后48 h作為觀察時間點,流式細胞圖中,右下象限(FITC+/PI-)為早期凋亡細胞,而右上象限(FITC+/PI+)是晚期凋亡細胞,凋亡率=早期凋亡率+晚期凋亡率。

1.3統計學分析采用SPSS13.0軟件進行成組t檢驗。

2結果

2.1轉染后BHRF1基因蛋白表達情況空載體組與NC-shRNA組比較,感染后0、24、48、72 h,BHRF1表達量無改變(P值均>0.05);BHRF1-shRNA組與NC-shRNA組比較,感染后0 h,BHRF1蛋白表達量無改變(P>0.05),感染后24、48、72 h,BHRF1表達量明顯降低(P值均<0.05)。BHRF1-shRNA組表現明顯時間依賴性,隨著觀察時間的延長,后一個觀察時間點都較前一個觀察時間點細胞中BHRF1表達量出現明顯下降。見表1。

2.2MTT繪制生長曲線空載體組與NC-shRNA組比較,轉染細胞后1~7 d,細胞增殖出現減慢趨勢,但無統計學意義(P值均>0.05)。BHRF1-shRNA組與NC-shRNA組比較,感染后1 d就出現了增殖減慢趨勢,但差異不顯著(P>0.05),2 d后,增殖減慢作用逐漸增強(P值均<0.05)。見表2。

2.3流式細胞檢測BHRF1-shRNA對細胞凋亡的影響空載體組與NC-shRNA組凋亡率(9.68%±1.50% vs 10.53%±1.43%)差異不顯著(P>0.05)。BHRF1-shRNA組(31.51%±1.59%)與NC-shRNA組、空載體組比較,凋亡作用明顯增加(P<0.05)。

組別0h24h48h72h空載體組95.64±4.9096.58±3.7496.38±2.7494.59±4.52NC-shRNA組96.88±3.1396.32±2.5596.73±4.1897.46±2.14BHRF1-shRNA組96.02±2.8477.72±4.511)2)3)62.01±3.491)2)4)44.26±3.301)2)5)

與空載體組比較:1)P<0.05;與NC-shRNA組比較:2)P<0.05;與0 h比較:3)P<0.05;與24 h比較:4)P<0.05;與48 h比較:5)P<0.05;下表同

組別1d2d3d4d5d6d7d空載體組89.78±8.0583.72±9.8188.35±9.3587.26±7.9589.14±7.9788.57±6.8590.28±5.60NC-shRNA組87.16±9.2187.68±6.8588.14±9.2686.01±8.1587.16±7.8487.90±7.7188.01±8.62BHRF1-shRNA組82.58±9.2170.02±6.941)2)56.39±5.401)2)50.32±5.881)2)58.38±5.711)2)56.33±4.231)2)59.97±5.451)2)

3討論

已有研究〔4〕以端粒酶為研究切入點,試圖探索鼻咽癌新的治療靶點和新的治療模式。端粒酶與鼻咽癌發生發展的密切聯系已被許多研究學者證實。范才文等〔5〕使用端粒重復序列擴增法(TRAP)測定了136例原發性鼻咽癌的手術切除標本中端粒酶的活性,其中癌組織中端粒酶的活性陽性率為80.1%,而鄰近正常組織標本4.4%;其中小細胞鼻咽癌(SCLC)100%〔6〕。劉瑾等〔7〕首次運用meta分析結果顯示,端粒酶活性陽性(標本來源于肺)者患鼻咽癌的危險性是端粒酶陰性者的66.43倍;端粒酶陽性在鼻咽癌人群中出現的概率是非鼻咽癌人群的12.13倍;端粒酶陰性在鼻咽癌人群中出現的概率僅為非鼻咽癌人群的0.22倍〔7〕。Meta分析結果顯示端粒酶是一種高靈敏度和特異度的腫瘤標志物〔8〕。

無論是采用何種方式制備shRNA,都需要考慮如何將shRNA高效地導入靶細胞,采用何種基因導入系統是基因治療的關鍵,這決定進入靶細胞的基因量,影響基因治療效果。雖然可以將體外化學合成的siRNA利用陽離子脂質體陽離子脂質體(如LipofectamineTM2000)直接轉染細胞,并能特異性抑制哺乳動物細胞內同源基因的表達。但雙鏈siRNA是帶負電的聚合物,難以直接通過疏水性的細胞膜〔9,10〕。且shRNA分子易被RNA酶降解。為了解決這些難題,而又不影響shRNA的生物活性,目前常采用的方法是將shRNA序列插入到質粒中,構建shRNA穩定表達載體,然后包裹在脂質體內運輸。相比之下,通過構建shRNA表達載體能在細胞內長時間、穩定地生成shRNA。

慢病毒載體本身以及NC-shRNA序列不影響靶基因及其表達蛋白的改變,但會使細胞增殖速度出現減慢趨勢,細胞生長受到一定程度的抑制,細胞凋亡率增加〔11,12〕。可見慢病毒顆粒對細胞有一定程度的毒性作用。針對mRNA設計的siRNA序列能特異性地與目的基因BHRF1-shRNA結合,并降解mRNA,進一步使CNE2 mRNA表達下降,引起細胞生長受到抑制,細胞增殖速度減慢,細胞凋亡增加。

4參考文獻

1Yang CF,Peng LX,Huang TJ,etal.Cancer stem-like cell characteristics induced by EB virus-encoded LMP1 contribute to radioresistance in nasopharyngeal carcinoma by suppressing the p53-mediated apoptosis pathway〔J〕.Cancer Lett,2014;344(2):260-71.

2Li Z,Chen X,Li L,etal.EBV encoded miR-BHRF1-1 potentiates viral lytic replication by downregulating host p53 in nasopharyngeal carcinoma〔J〕.Int J Biochem Cell Biol,2012;44(2):275-9.

3Kim dN,Lee SK.Biogenesis of Epstein-Barr virus microRNAs〔J〕.Mol Cell Biochem,2012;365(1-2):203-10.

4Jemal A,Bray F,Center MM,etal.Global cancer statistics〔J〕.CA Cancer J Clin,2011;61(2):69-90.

5范才文,田晶,王建紅,等.Stathmin表達抑制的鼻咽癌細胞系建立〔J〕.中國現代醫學雜志,2012;22(9):43-7.

6Yang F,Zhuo L,Ananda S,etal.Role of reactive oxygen species in triptolide-induced apoptosis of renal tubular cells and renal injury in rats〔J〕.J Huazhong Univ Sci Technolog Med Sci,2011;31(3):335-41.

7劉瑾,楊青,蘭亞佳,等.肺癌患者端粒酶表達的meta分析〔J〕.中國肺癌雜志,2001;4(4):299-302.

8宋玉姣,韓繼波,陳始明,等.腺病毒介導的shRNA沉默hTERT基因表達對鼻咽癌細胞增殖和凋亡的影響〔J〕.腫瘤防治研究,2011;38(12):1351-5.

9Fu Q,Jiang ZZ,Zhang LY.Impairment of triptolide on liver mitochondria in isolated liver mitochondria and HL7702 cell line〔J〕.Chin J Integr Med,2013;19(9):683-8.

10Borja-Cacho D,Yokoyama Y,Chugh RK,etal.TRAIL and triptolide:an effective combination that induces apoptosis in pancreatic cancer cells〔J〕.J Gastrointest Surg,2010;14(2):252-60.

11李剛,譚曉虹.RNA干擾survivin對口腔表皮樣癌細胞株KB生長的抑制作用〔J〕.腫瘤防治研究,2011;38(3):257-60.

12Yinjun L,Jie J,Yungui W.Triptolide inhibits transcription factor NF-kappaB and induces apoptosis of multiple myeloma cells〔J〕.Leukemia Res,2005;29(1):99-105.

〔2013-09-15修回〕

(編輯馮超)

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