張美英, 侯煒, 高坤
(1.中國中醫科學院廣安門醫院,北京 100053;2.中國中醫科學院望京醫院,北京 100053)
非小細胞肺癌(non-small cell lung cancer,NSCLC)是指源于支氣管黏膜上皮或者肺泡上皮的惡性腫瘤,是肺癌最常見的類型。隨著中醫藥學的發展,中醫在治療肺癌方面取得了顯著的成果。肺癌歸屬于中醫學“肺痿”的范疇,燥熱傷肺是肺癌的重要病機[1]。清燥救肺湯具有清燥潤肺、益氣養陰的功效,既往臨床和實驗研究表明,清燥救肺湯對肺癌有顯著的療效[2-5],但關于其具體作用機制仍不明確,因此,本研究以NSCLC細胞株H1299為研究對象,進一步觀察清燥救肺湯抗肺癌機制,以期為臨床治療提供實驗依據,現將研究結果報道如下。
1.1實驗細胞與動物人非小細胞肺癌(NSCLC)細胞株H1299,購自北京科瑞思搏生物科技有限公司。24只SPF級8周齡雄性SD大鼠,體質量180~200 g,購自北京華阜康生物科技股份有限公司,生產許可證號:SCXK(京)2019-0008。動物實驗于中國中醫科學院廣安門醫院實驗室[動物使用許可證號:SYXK(京)2014-0041]完成。實驗方案經中國中醫科學院廣安門醫院倫理委員會批準(批準號:2016-052-KY)。按照《實驗動物管理條例》規定進行實驗。
1.2試劑與儀器干擾素γ(IFN-γ)抗體、白細胞介素4(IL-4)抗體、胰島素樣生長因子1受體(IGF-1R)抗體、信號傳導與轉錄激活因子3(STAT3)抗體,購自沈陽萬類生物科技公司;RPMI 1640培養基,購自上海善然生物科技公司;Transwell小室,購自上海生博生物醫藥公司。蛋白電泳儀,購自北京科普爾科技公司;PCR儀,購自蘇州雅睿生物公司;高速離心機,購自武漢益普生物科技公司。
1.3藥物及制備清燥救肺湯組成:桑葉(霜)9 g,炙甘草3 g,麥冬10 g,枇杷葉9 g,生石膏12 g,黨參12 g,阿膠9 g,苦杏仁9 g。所有中藥材購自中國中醫科學院廣安門醫院中藥局。常規煎煮后,濃縮生藥含量1 g/mL,冷卻后4℃保存備用。
1.4含藥血清制備適應性喂養2周后,將24只大鼠隨機分為空白血清組和含藥血清組,每組12只,含藥血清組大鼠給予清燥救肺湯5.5 g/kg灌胃,空白血清組大鼠給予等體積生理鹽水灌胃,每日1次,干預2周[3]。末次灌胃后經大鼠尾部采血,離心,保留血清,56℃水浴滅活,除菌過濾后,-20℃密封冷藏備用。
1.5含藥血清干預及分組取第3代NSCLC細胞株H1299,用2.5 g/L胰蛋白酶消化后以1×106個/孔接種于6孔板,37℃、CO2培養箱中培養,細胞貼壁后更換新鮮的無血清RPMI 1640培養基繼續培養。培養1 d后,棄上清。實驗分為空白血清組及清燥救肺湯低、中、高濃度含藥血清組(簡稱清燥救肺湯低、中、高濃度組)??瞻籽褰M:NSCLC細胞+10%空白血清培養;清燥救肺湯低濃度組:NSCLC細胞+2.5%清燥救肺湯含藥血清+7.5%空白血清;清燥救肺湯中濃度組:NSCLC細胞+5%清燥救肺湯含藥血清+5%空白血清;清燥救肺湯高濃度組:NSCLC細胞+10%清燥救肺湯含藥血清。給藥后繼續培養24 h后進行后續實驗。
1.6觀察指標與方法
1.6.1 平板克隆形成實驗觀察NSCLC細胞增殖能力 給藥24 h后,取各組細胞制備細胞懸液接種于6孔板中常規培養7 d,結晶紫染色,顯微鏡下觀察,計算克隆形成率??寺⌒纬陕剩?)=形成的細胞克隆數/接種細胞數×100%。
1.6.2 Transwell細胞侵襲及遷移實驗Transwell小室包被基底膜(細胞侵襲實驗所需)。制備細胞懸液5×104個/mL,接種到Transwell小室中,繼續培養12~24 h。4%多聚甲醛固定,0.1%結晶紫染色,顯微鏡下隨機選取5個視野,計算侵襲、遷移細胞數,取平均值。
1.6.3 PCR法檢測NSCLC細胞Th1細胞表型因子IFN-γ及Th2細胞表型因子IL-4及IGF-1R/STAT3通路相關蛋白IGF-1R、STAT3的基因水平PCR反應條件:95℃預變性3 min;95℃變性5 s,58℃退火30 s,40個循環。以β-actin作為內參照,采用2-ΔΔCt法計算目的基因相對表達量。引物序列見表1。

表1 PCR引物序列Table 1 PCR primer sequences
1.6.4 蛋白免疫印跡(Western Blot)法檢測NSCLC細胞IFN-γ、IL-4、IGF-1R、STAT3蛋白表達 將H1299細胞裂解離心取上清液,十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)分離蛋白。IFN-γ(1∶1 000)、IL-4(1∶1 000)、IGF-1R(1∶1 500)、STAT3(1∶1 000)等一抗稀釋液4℃孵育過夜。辣根過氧化物酶標記的二抗(1∶2 000)稀釋液37℃反應1 h。電化學發光法(ECL)顯色,曝光,凝膠成像系統(JY-Clear)分析目標條帶的光密度值,結果以目的蛋白灰度值與內參蛋白(GAPDH)灰度值比值表示目的蛋白相對表達量。
1.7統計方法采用SPSS 21.0統計軟件進行數據的統計分析。計量資料以均數±標準差(±s)表示,多組間比較采用單因素方差分析或重復測量方差分析,兩組之間比較采用t檢驗。以P<0.05表示差異有統計學意義。
2.1各組NSCLC細胞克隆率比較空白血清組及清燥救肺湯低、中、高濃度組NSCLC細胞克隆率分別為(92.15±6.15)%、(83.11±4.16)%、(71.36±4.37)%、(52.31±5.02)%。4組組間比較,差異均有統計學意義(F=71.430,P<0.05)。與空白血清組比較,清燥救肺湯低、中、高濃度組NSCLC細胞克隆率減?。≒<0.05),呈濃度依賴性。各組細胞克隆情況見圖1。

圖1 各組NSCLC細胞平板克隆形成實驗結果Figure 1 Results of NSCLC cell plate clone formation assay
2.2各組NSCLC細胞侵襲能力比較空白血清組,清燥救肺湯低、中、高濃度組NSCLC細胞侵襲數分別為(148±17)、(111±15)、(84±13)、(62±10)個。4組組間比較,差異有統計學意義(F=42.080,P<0.05)。與空白血清組比較,清燥救肺湯低、中、高濃度組NSCLC細胞侵襲數量減少(P<0.05),且呈濃度依賴性。見圖2。

圖2 各組NSCLC細胞Transwell小室侵襲實驗結果(×400)Figure 2 Results of Transwell invasion assay of NSCLC cells(×400)
2.3各組NSCLC細胞遷移能力比較空白血清組,清燥救肺湯低、中、高濃度組NSCLC細胞遷移數量分別為(108.01±11.34)、(85.73±5.14)、(67.33±6.44)、(44.52±6.79)個。4組組間比較,差異有統計學意義(F=72.050,P<0.05)。與空白血清組比較,清燥救肺湯低、中、高濃度組NSCLC細胞遷移數量減少(P<0.05),且呈濃度依賴性。見圖3。

圖3 各組NSCLC細胞Transwell小室遷移實驗結果(×400)Figure 3 Results of Transwell migration assay of NSCLC cells(×400)
2.4各組NSCLC細胞中IFN-γ、IL-4、IGF-1R、STAT3的mRNA表達比較與空白血清組比較,清燥救肺湯低、中、高濃度組NSCLC細胞中IFN-γ mRNA表達水平升高,IL-4、IGF-1R、STAT3 mRNA表達水平降低(P<0.05),呈濃度依賴性。見表2。
表2 各組NSCLC細胞中IFN-γ、IL-4、IGF-1R、STAT3 mRNA表達比較Table 2 Comparison of mRNA expressions of IFN-γ,IL-4,IGF-1R,STAT3 in NSCLC cells of among various groups (±s,n=6)

表2 各組NSCLC細胞中IFN-γ、IL-4、IGF-1R、STAT3 mRNA表達比較Table 2 Comparison of mRNA expressions of IFN-γ,IL-4,IGF-1R,STAT3 in NSCLC cells of among various groups (±s,n=6)
注:①P<0.05,與空白血清組比較;②P<0.05,與清燥救肺湯低濃度組比較;③P<0.05,與清燥救肺湯中濃度組比較
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2.5各組NSCLC細胞中IFN-γ、IL-4、IGF-1R、STAT3蛋白表達比較與空白血清組比較,清燥救肺湯低、中、高濃度組NSCLC細胞中IFN-γ蛋白表達水平升高,IGF-1R、STAT3、IL-4蛋白表達水平降低(P<0.05),呈濃度依賴性。見表3、圖4。

圖4 各組NSCLC細胞中IFN-γ、IL-4、IGF-1R、STAT3的Western Blot電泳圖Figure 4 Western Blot electrophoretogram of IFN-γ,IL-4,IGF-1R,STAT3 in NSCLC cells
表3 各組NSCLC細胞中IFN-γ、IL-4、IGF-1R、STAT3蛋白表達比較Table 3 Comparison of protein expressions of IFN-γ,IL-4,IGF-1R and STAT3 in NSCLC cells among various groups (±s,n=6)

表3 各組NSCLC細胞中IFN-γ、IL-4、IGF-1R、STAT3蛋白表達比較Table 3 Comparison of protein expressions of IFN-γ,IL-4,IGF-1R and STAT3 in NSCLC cells among various groups (±s,n=6)
注:①P<0.05,與空白血清組比較;②P<0.05,與清燥救肺湯低濃度組比較;③P<0.05,與清燥救肺湯中濃度組比較
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腫瘤的發生是由于多種因素作用導致的,易發生侵襲和轉移,而肺癌在所有腫瘤類型中,發生侵襲和轉移的概率最高[6]。本研究結果顯示,經過清燥救肺湯干預后,NSCLC細胞克隆、侵襲及遷移能力降低,提示清燥救肺湯可抑制肺癌細胞的生長及轉移。
腫瘤的發生發展與機體免疫密切相關,機體的抗腫瘤免疫功能主要體現在細胞免疫。T細胞介導的細胞免疫在抗腫瘤免疫中至關重要。Th1細胞表型因子IFN-γ參與細胞毒性T細胞介導的細胞免疫,具有重要的抗腫瘤作用,可誘導NK細胞增強抗腫瘤活性;Th2細胞表型因子IL-4參與速發型超敏反應,通過抑制IFN-γ的產生,防止NK細胞活化,抑制細胞免疫的抗腫瘤效應,促進腫瘤細胞的生長[7-9]。本研究結果顯示,經過清燥救肺湯干預后,NSCLC細胞IFN-γ表達升高、IL-4表達降低,提示清燥救肺湯可上調NSCLC細胞IFN-γ表達并抑制IL-4表達,促進Th細胞向Th1型細胞分化,發揮抗腫瘤作用。
IGF-1R/STAT3通路參與多種腫瘤的產生及發展。IGF-1R是一種廣泛表達于多種類型細胞表面的酪氨酸激酶跨膜蛋白,主要介導IGF-1和IGF-2的生物學作用,參與機體物質代謝調節及胚胎發育等生物學過程,同時還能刺激腫瘤細胞增殖[10]。已有研究證實,IGF-1R信號通路影響腫瘤細胞的發生、發展、凋亡、各種途徑的轉移[11-12]。STAT3是IGF-1R/STAT3通路的成員,屬于STAT家族成員。有研究[13]表明,STAT3的激活可以促進肺癌發生和腫瘤血管形成,與肺癌的進展和預后密切相關。在相關細胞的作用下,炎癥因子通過激活STAT3的表達使其磷酸化后,可特異性地結合在相關因子的基因啟動子區,通過啟動相關基因的表達促進Th1細胞的分化[14-15]。本研究結果顯示,給予清燥救肺湯干預后,NSCLC細胞STAT3、IGF-1R表達隨著濃度的增加而降低,提示清燥救肺湯可抑制NSCLC細胞IGF-1R/STAT3通路的活化,發揮抗腫瘤的作用。
綜上所述,清燥救肺湯可能通過促進IFN-γ表達,抑制IL-4表達,介導T細胞分化以調節免疫功能,同時抑制IGF-1R/STAT3通路活化,從而抑制NSCLC細胞的惡性行為。