大花黃牡丹種子的質量評價及初步抗氧化活性研究

秦偉瀚，蘭小中，瞿顯友，樵星芳，劉 翔，徐元江，鄒佳佳，何 丹*

1重慶醫科大學藥學院，重慶 400016；2重慶市中藥研究院，重慶 400065；3西藏農牧學院，林芝 860000

大花黃牡丹(Paeonialudlowii)是我國芍藥科芍藥屬牡丹組(sect.MoutanDC.)中8個品種之一，為西藏特有植物，屬叢生落葉灌木，僅見于西藏東南部林芝地區[1,2]。大花黃牡丹花朵碩大，色彩絢麗，是極珍貴的牡丹觀賞品種，其根及花瓣均可入藥，具有一定食用、藥用價值[3]。雖然大花黃牡丹具有較高的育種價值和觀賞價值，卻由于分布狹窄，種群持續減少，被《中國物種紅色名錄》列為瀕危植物，已處于極危狀態[4]。牡丹的化學成分研究主要集中在根部，對其他部位研究很少。自1753年以來，已有共180多個的化合物被分離出來。其化學成分主要包括：單萜類、單萜苷類、三萜類、酚類、鞣酸類、黃酮類等[5,6]。棕櫚酸是生產蠟燭、肥皂、潤滑脂、軟化劑和合成洗滌劑的原料[7]。油酸有得天獨厚的抗氧化功能，是目前最安全的健康脂肪酸。油酸能調節血脂水平，降低膽固醇，防止記憶力下降；同時對代謝紊亂、皮膚損傷等都有很好的療效[8]。亞油酸可以軟化心腦血管，降低血壓與血脂，加快人體新陳代謝，能有效預防動脈硬化發生，能提高人體免疫力，促進骨骼發育，提高記憶力，也能延緩衰老[9]。亞麻酸是人體必需脂肪酸之一，能夠降解血栓，預防心腦血管病、抑制癌癥的發生和轉移、抑制過敏反應和抗炎作用、抑制衰老、增強智力和保護視力等[10]。

近年來大花黃牡丹的研究主要集中在植物分類、生境群落以及栽培繁殖等領域[11-16]；化學成分及活性評價的相關報道較少，僅Zeng等[17]采用GC-MS法分析大花黃牡丹種子中棕櫚酸、硬脂酸、油酸、亞油酸、亞麻酸的含量。Zhang等[18-20]在大花黃牡丹仁油中鑒定出了20種脂肪酸，而采用QAMS定量分析大花黃牡丹種仁中的棕櫚酸、油酸、亞油酸、亞麻酸則未見報道。本研究將一測多評與指紋圖譜相結合建立大花黃牡丹種子的質量評價方法，并通過DPPH法、Fe3+還原法對大花黃牡丹及油用牡丹種子的抗氧化活性進行對比評價。該實驗結果有助于后續大花黃牡丹籽油、種皮的新產品研發，為大花黃牡丹深入綜合開發利用提供科學依據，同時也為不同品種牡丹種子的質量評價提供有益思路。

1 材料與方法

1.1 儀器與設備

Agilent 6890N型氣相色譜儀(美國，安捷倫科技有限公司)；TSQ 8000 Evo型三重四級桿氣質聯用儀(美國，賽默飛世爾科技公司)；Infinte M200 Pro型酶標儀(中國，北京五洲東方科技發展有限公司)；BJ-100型超高速中藥粉碎機(中國，德清拜杰電器有限公司)；VGT-2013QT型超聲清洗機(中國，固特超聲公司)；BSA224S-CW型萬分之一分析天平(德國，賽多利斯公司)；UV-3600i型紫外分光光度計(日本，島津公司)；H3-18K型臺式高速離心機(中國，湖南可成儀器設備有限公司)；SG60-1型榨油機(中國，通雨機械設備有限公司)；普及型pH計(德國，賽多利斯公司)；BHW-09C型恒溫加熱器(中國，上海博通化學科技有限公司)；Milli-Q Integral5型純水儀(美國，Millipoer公司)。

1.2 材料與試劑

對照品棕櫚酸甲酯(批號：A12A6L17796，含量≥97%)、油酸甲酯(批號：S16M9B61466，含量≥98%)、亞油酸甲酯(批號：K25N10S101770，含量≥98%)、亞麻酸甲酯(批號：S09O11B126531，含量≥98%)、十七烷酸甲酯(批號：S15H18C146523，含量≥98%)均購自上海源葉生物科技有限公司；維生素C(批號：1353736)購自上海泰坦科技股份有限公司。正己烷為農殘級，三氟化硼、氫氧化鉀、二甲基亞砜、1,1-二苯基-2-三硝基苯肼、鐵氰化鉀、三氯乙酸、三氯化鐵、磷酸二氫鈉、磷酸氫二鈉、乙醇、甲醇均為分析級。高純氮氣、氫氣、氦氣和干燥空氣體積分數均為99.999%(重慶高德氣體有限公司)。本研究所收集樣品經重慶市中藥研究院生藥研究所劉翔副研究員鑒定為大花黃牡丹(PaeonialudlowiiD.Y.Hong)和油用牡丹(PaeoniasuffruticosaAndr.)的種子，樣品信息見表1。

表1 牡丹種子樣品信息表Table 1 Information of Peony seed sample

續表1(Continued Tab.1)

1.3 方法

1.3.1 GC-MS質譜條件

色譜柱采用Agilent DB-1701MS柱(0.25 mm×0.25 μm×30 m)；載氣為高純氦氣；不分流模式；程序升溫：起始溫度50 ℃，保持3 min，以10 ℃/min的升溫速率升至280 ℃，保持3 min；進樣口溫度250 ℃；傳輸線溫度280 ℃；離子源為EI源；離子源溫度300 ℃；質譜掃描范圍40～500 Da；溶劑峰切除時間4 min；進樣體積：1 μL。采用上述方法對甲酯化樣品進行定性分析，共鑒定出5個色譜峰(見圖1)，與其他幾個成分相比較，十八烷酸甲酯的峰面積過小，不適合作為一測多評的含量檢測指標。

圖1 甲酯化樣品的氣質聯用總離子流圖Fig.1 GC-MS total ion chromatogram of methyl esterified sample注：1.棕櫚酸甲酯；2.十八烷酸甲酯；3.油酸甲酯；4.亞油酸甲酯；5.亞麻酸甲酯。Note:1.Methyl palmitate;2.Methyl stearate;3.Methyl oleate;4.Methyl linoleate;5.Methyl linolenate.

1.3.2 GC色譜條件

色譜柱采用Agilent DB-FATWAX柱(0.25 mm×0.25 μm×30 m)；載氣為高純氮氣；分流模式，分流比為10∶1；程序升溫：起始溫度160 ℃，不保持，以5 ℃/min的升溫速率升至250 ℃，保持2 min；進樣口溫度270 ℃；氫火焰離子化檢測器，檢測器溫度270 ℃；進樣體積2 μL。

1.3.3 對照品溶液制備

精密稱取棕櫚酸甲酯、油酸甲酯、亞油酸甲酯、亞麻酸甲酯標準品適量于10 mL容量瓶中，加入正己烷溶解并定容至10 mL刻度線，混勻，即得質量濃度分別為2.01、1.97、1.99、1.95 mg/mL的混合溶液。再將上述混合對照品溶液以2倍體積逐級稀釋至質量濃度為0.13 mg/mL的混合溶液。

1.3.4 供試品溶液制備

1.3.4.1 質量評價用供試品溶液制備方法

甲酯化反應是氣相分析時常用的一種衍生化手段，是指在催化劑作用下使含羧基等沸點較高物質轉變為氣相可檢測的甲酯的化學方法。可以使脂肪酸類成分在氣相色譜中出峰更加對稱尖銳，并且有利于保護氣相色譜柱。

精密稱取牡丹種仁粉末樣品0.40 g于錐形瓶中，精密移入正己烷50 mL，稱定重量，超聲提取(功率300 W，頻率40 kHz)1 h，再次稱定重量，用正己烷補足減失重量，搖勻后過濾，取濾液4 mL于15 mL具塞玻璃試管中，精密加入2 mL氫氧化鉀甲醇溶液(2 mol/L)，渦旋1 min，再精密加入1 mL三氟化硼溶液，渦旋1 min，靜置5 min，取上層溶液，即得。

1.3.4.2 抗氧化活性評價用供試品溶液制備方法

牡丹種皮樣品：稱取10批次大花黃牡丹種皮各20.0 g，混合后于中藥高速粉碎機中粉碎成細末，過80目篩，作為大花黃牡丹抗氧化活性評價用樣品。稱取不同產地牡丹種皮各200.0 g，于中藥高速粉碎機中粉碎成細末，過80目篩，作為牡丹抗氧化活性評價用樣品。精密稱取上述牡丹種皮粉末0.5 g于具塞錐形瓶中，精密移入70%乙醇20 mL，稱定重量，超聲提取(功率300 W，頻率40 kHz)30 min，再次稱定重量，用70%乙醇補足減失重量，搖勻后以8 000 r/min離心5 min，取10 mL上清液于蒸發皿中，水浴揮干，用50%乙醇溶解定容至5 mL容量瓶，0.22 μm濾膜過濾，即得牡丹種皮樣品的乙醇溶液。

牡丹籽油樣品：稱取10批次大花黃牡丹種仁各100.0 g，混合后作為大花黃牡丹抗氧化活性評價用樣品。稱取不同產地牡丹種仁各1 000.0 g，作為牡丹抗氧化活性評價用樣品。將上述牡丹種仁勻速倒入榨油機中，在榨膛溫度為240 ℃條件下進行冷榨。將榨得的牡丹籽油在高速離心機中以8 000 r/min離心10 min。精密稱取上述牡丹籽油0.50 g，加入5 mL的二甲基亞砜(DMSO)溶液，混勻，即得牡丹籽油樣品的DMSO溶液。

1.3.5 抗氧化活性評價方法

1.3.5.1 DPPH自由基清除能力測定方法

精密吸取“1.3.4.2”項下供試品溶液(0.05 g/mL)60 μL和3.94 mL DPPH溶液(0.1 mmol/L)于10 mL的EP管中混勻，室溫避光孵育30 min后，取200 μL混合液于96孔板中，在517 nm處檢測其吸光值(A樣品)。以未加樣品的溶劑作為空白對照，同法操作，檢測空白對照的吸光值(A空白)，并取50 μL的維生素C(VC，0.60 g/mL)作參比，每組樣品重復試驗3次。牡丹籽樣品對DPPH自由基清除率的計算公式：清除率=[(A空白-A樣品)/A空白]×100%(A空白：空白對照組吸光度；A樣品：試驗組吸光度)。

1.3.5.2 Fe3+還原能力的測定方法

精密吸取“1.3.4.2”項下供試品溶液(0.10 g/mL)5 μL與2 mL 0.20 mol/L的磷酸鹽緩沖溶液(pH=6.6)于10 mL的EP管中混勻，再加入2 mL 0.03 mol/L K3Fe(CN)6溶液，混勻。在50 ℃下孵育20 min后，加入200 μL 0.60 mol/L的C2HCl3O2溶液，混勻，1 000 r/mim離心10 min。取35 μL上清液、115 μL超純水于96孔板中，混勻，再加100 mL 0.006 mol/L的FeCl3溶液，混勻后，在700 nm處檢測吸光度(A樣品)，以未加樣品的溶劑作為空白對照，同法操作，檢測空白對照的吸光值(A空白)，并取1 mL的丁基羥基茴香醚(BHA 600 μg/mL)作參比，每組樣品重復檢測3次。牡丹籽樣品對Fe3+還原能力的計算公式：Fe3+還原能力=A樣品-A空白(A樣品：試驗組吸光度，A空白：空白對照組吸光度)。

2 結果與分析

2.1 QAMS法測定牡丹種子中4種成分含量

2.1.1 外標法方法學考察

外標法方法學分別考察了線性、精密度、穩定性、重復性、回收率、檢測限和定量限，結果顯示(見表2)四個甲酯類成分在0.12～2.00 mg/mL濃度范圍內線性關系良好；連續進樣6次，所測成分RSD均小于1.5%，表明儀器精密度良好；樣品制備后分別于0、2、4、8、12、24 h進樣，所測成分RSD均小于2.0%，表明樣品在24 h內穩定；重復性和回收率的RSD均小于2.0%，表明樣品制備方法準確可靠。

表2 檢測成分的方法學考察結果Table 2 Methodological investigation results of detected components

2.1.2 相對校正因子確定

精密吸取“1.3.3”項下不同質量濃度的混合對照品溶液2 μL，采用“1.3.2”項下色譜條件進樣，記錄不同質量濃度對照品的峰面積，按公式fk/x=AkCx/(AxCk) 計算各成分的相對校正因子，其中Ak、Ck分別為內參物峰面積和濃度，Ax、Cx分別為待測成分對照品的峰面積和濃度。相較于其他幾個檢測物，油酸甲酯峰面積最大、分離度高且理論塔板數高，因此選擇以油酸甲酯為內參物，分別計算棕櫚酸甲酯、亞油酸甲酯、亞麻酸甲酯的相對校正因子，結果見表3。

2.1.3 校正因子重現性考察

精密吸取“1.3.3”項下不同質量濃度的混合對照品溶液2 μL，進樣分析；在2個實驗室分別考察了Agilent 6890N、Shimadzu GC2010兩種氣相色譜儀，分流比5∶1、20∶1，柱流速0.80、1.20 mL/min，對相對校正因子的影響，結果RSD均<2%，表明一測多評方法具有良好的重現性，結果見表4。

表3 相對校正因子計算結果Table 3 Results of relative correction factor

表4 校正因子重現性考察結果Table 4 Results of reproducibility investigation of correction factors

2.1.4 色譜峰定位

分別考察在“1.3.2”項中各色譜條件下，以油酸甲酯為內參物，分別計算棕櫚酸甲酯、亞油酸甲酯、亞麻酸甲酯組分相對保留時間的重現性，結果表明相對保留時間的RSD均<1%，可用于待測成分色譜峰的定位，結果見表5。

表5 相對保留時間考察結果Table 5 Results of relative retention time investigation

2.1.5 QAMS法與外標法結果比較

將產于西藏、山東、安徽、江蘇、河南的牡丹種子樣品，按照“1.3.4.1”項下方法制備供試品，按照“1.3.2”項下色譜條件采集峰面積，分別采用外標法和QAMS計算4種成分含量，結果見表6。將10個產地大花黃牡丹含測結果進行平均后，棕櫚酸、油酸、亞油酸、亞麻酸的含量分別為2.40%、13.65%、8.62%、8.10%；將4個主產區牡丹含測結果平均后，棕櫚酸、油酸、亞油酸、亞麻酸的含量分別為1.13%、10.85%、16.70%、18.96%。棕櫚酸為飽和脂肪酸，在大花黃牡丹種子中棕櫚酸的含量要超過牡丹約2倍，含量最高的是S2批，為2.61%，含量最低的是江蘇產牡丹，為1.01%。油酸為單不飽和脂肪酸，大花黃牡丹種子中油酸的含量要略高于牡丹，而其中S9批(米林縣丹娘鄉)含量為所有批次樣品中最低，達10.43%；牡丹中油酸含量最高的是河南產牡丹，為11.26%。亞油酸和亞麻酸同為多不飽和脂肪酸，牡丹含量約為大花黃牡丹含量的2倍，亞油酸含量最高的是山東產牡丹，為17.68%，最低的是S9批，為6.81%；而亞麻酸含量最高的是山東產牡丹，為19.37%，最低是S9批，為6.92%。

為確定QAMS的準確性，將兩種方法計算結果進行t檢驗(Microsoft Excel軟件；選擇T.TEST函數，在Array中選中一組數據，Tails選雙尾檢驗，Type選雙樣本等方差假設)，兩組結果的P值均>0.05，表明兩種方法計算的質量分數結果差異無統計學意義，可見QAMS法以亞油酸甲酯作為參比來準確測定牡丹種仁中其它3種成分含量是可行的。

表6 QAMS法與外標法的含量比較結果Table 6 Content comparison results of QAMS method and external standard

續表6(Continued Tab.6)

2.2 大花黃牡丹指紋圖譜研究

2.2.1 參照峰選擇

牡丹種仁樣品經過甲酯化后有5個共有峰，其中油酸甲酯色譜峰不僅分離度好，且峰面積較大，故選擇3號峰(油酸甲酯)作為內參峰，用以計算各共有峰的相對保留時間和相對峰面積。

2.2.2 精密度試驗

精密稱取牡丹種仁樣品(S1批)0.40 g，采用“1.3.4.1”項下方法制備供試品溶液，采用“1.3.2”項下色譜條件連續進樣6次，記錄色譜圖，分別計算相對峰面積與相對保留時間的RSD值。運用中藥色譜指紋圖譜相似度評價系統軟件(2004年A版)，計算不同產地樣品GC譜圖的相似度。結果各共有峰相對保留時間的RSD均<0.11%，相對峰面積的RSD均<0.27%，指紋圖譜的相似度均>0.99。表明儀器精密度良好。

2.2.3 穩定性試驗

精密稱取牡丹種仁樣品(S1批)0.40 g，采用“1.3.4.1”項下方法制備供試品溶液，采用“1.3.2”項下色譜條件分別于0、2、4、8、12、24 h進樣，記錄色譜圖，分別計算相對峰面積與相對保留時間的RSD值。結果各共有峰相對保留時間的RSD均<0.14%，相對峰面積的RSD均<1.17%，指紋圖譜的相似度均>0.99。表明該方法穩定性良好。

2.2.4 重復性試驗

精密稱取牡丹種仁樣品(S1批)0.40 g，采用“1.3.4.1”項下方法平行制備六份供試品溶液，采用“1.3.2”項下色譜條件進樣，記錄色譜圖，分別計算相對峰面積與相對保留時間的RSD值。結果各共有峰相對保留時間的RSD均<0.08%，相對峰面積的RSD均<0.51%，指紋圖譜的相似度均>0.99。表明該方法重復性良好。

2.2.5 指紋圖譜建立

將10批不同產地的大花黃牡丹樣品按照 “1.3.4.1”項下方法制備供試品溶液，按照“1.3.2”項下色譜條件進行測定，將樣品圖譜中各共有峰積分后生成AIA格式文件，并導入《中藥色譜指紋圖譜相似度評價系統》(2004年A版)，通過設參照譜、多點校正、自動匹配、生成對照等功能進行自動擬合，生成大花黃牡丹種子的指紋圖譜(見圖2)。

圖2 大花黃牡丹種仁的GC指紋圖譜Fig.2 GC fingerprints of seed kernel of P.ludlowii

共有峰相對保留時間的RSD均<0.14%，相對峰面積的RSD均<1.28%。以標準指紋圖譜R為對照對樣品圖譜進行相似度評價，相似度結果見表7。相似度范圍為0.999～1，表明不同產地大花黃牡丹種子相似度良好。

表7 相似度計算結果Table 7 Resultsof similarity calculation

2.2.6 共有峰歸屬指認

將油酸甲酯、亞油酸甲酯、十八烷酸甲酯等標準品采用“1.3.3”項下方法制備標準品溶液。精密稱取S1批樣品0.40 g，采用“1.3.4.1”項下方法制備供試品溶液。采用“1.3.2”項下色譜條件進樣，記錄色譜圖，通過比較樣品與標準品各色譜峰的保留時間，對共有峰進行成分歸屬，結果見圖3。

圖3 指紋圖譜共有峰Fig.3 Fingerprint chromatogram of common peak注：1.棕櫚酸甲酯；2.十八烷酸甲酯；3.油酸甲酯；4.亞油酸甲酯；5.亞麻酸甲酯。Note:1.Methyl palmitate;2.Methyl stearate;3.Methyl oleate;4.Methyl linoleate;5.Methyl linolenate.

2.2.7 主成分分析(PCA)

將牡丹樣品的氣相色譜數據導入SIMCA-P軟件(版本號：14.1)，通過Score Scatter Plot分析(見圖4)發現，大花黃牡丹樣品(II類)與牡丹樣品(I類)分別聚類，表明西藏的大花黃牡丹種仁中主要成分含量與牡丹有較大差異，這與定量分析結果一致。大花黃牡丹第九批(S9)樣品的數據點遠離聚類中心，可能與該批樣品采自米林縣丹娘鄉有關；這也表明，大花黃牡丹雖然產自西藏林芝地區，但海拔、土壤、氣候等地理環境的變化仍然可以較大影響其種子中化學成分。

2.3 牡丹種子抗氧化活性評價

2.3.1 DPPH自由基清除能力測定

DP是一種早期合成的有機自由基，常用來評估抗氧化物的供氫能力，它在有機溶劑中非常穩定，呈紫色，而且在處有一個特征吸收峰，當遇到自由基清除劑時，DPPH的孤對電子被配對而使其退色，也就是在最大吸收波長處的吸光值變小。因此，可通過測定吸光值的變化來評價樣品對DPPH自由基的清除效果。

按照“1.3.5.1”項下方法進行實驗，DPPH實驗結果見表8。由結果可知，籽油清除率最高的是江蘇產牡丹，為37.56%，大花黃牡丹籽油清除率(30.14%)雖然要低于江蘇產牡丹，但要高于河南產牡丹(27.33%)、山東產牡丹(17.27%)和安徽產牡丹(18.27%)。而大花黃牡丹種皮的清除率最高，為63.62%，要明顯高于牡丹樣品。表明大花黃牡丹種皮有較強的自由基清除能力，即抗氧化活性強。

圖4 主成分分析結果Fig.4 Results of PCA

表8 大花黃牡丹與牡丹樣品的DPPH自由基清除率Table 8 DPPH radical scavenging rate of P.ludlowii and

2.3.2 Fe3+還原能力的測定

還原力的測定是檢驗樣品是否是良好的電子供體的方法，還原力強的樣品應該是良好的電子供應者，它供應的電子不僅能使Fe3+還原為Fe2+，也可以與自由基反應。還原力的測定是用來評價抗氧化劑活性的常用方法。

按照“1.3.5.2”項下方法進行實驗，Fe3+還原能力實驗結果見表9。由結果可知，相較于牡丹樣品，大花黃牡丹籽油和種皮的Fe3+還原能力均為最高，分別為0.24 Abs和1.01 Abs，但種皮的Fe3+還原能力是BHA對照的兩倍，而籽油則僅為BHA對照的一半，表明大花黃牡丹種皮的抗氧化能力更為明顯。

表9 大花黃牡丹與牡丹樣品的Fe3+還原能力Table 9 Fe3+ reduction ability of P.ludlowii and

續表9(Continued Tab.9)

3 討論與結論

經課題組實地考察和查閱文獻可知，大花黃牡丹僅分布于西藏的林芝市。由指紋圖譜結果可以看出，10個批次大花黃牡丹樣品的相似度均高于0.99，說明林芝地區所產的大花黃牡丹相似度較高。結合相似度結果表明大花黃牡丹分布集中且變異較小；通過PCA分析結果可以看出，大花黃牡丹與其他幾個產地的牡丹樣品區分明顯。QAMS法計算結果和外標法計算結果基本一致，說明QAMS法可以用于牡丹種仁中多成分的定量分析，同時也為全國其他品種牡丹籽的質量控制提供了一種新的可靠方法。由含量結果可以看出，山東、河南、安徽、江蘇產牡丹種仁樣品中4種成分含量接近，而大花黃牡丹與四個產地牡丹種仁中4種成分含量差異較大；大花黃牡丹樣品中棕櫚酸和油酸含量為四產區牡丹樣品的2倍，而亞油酸、亞麻酸含量僅為牡丹樣品的一半。亞油酸、亞麻酸屬于不飽和脂肪酸，是評價成品油質量的重要影響因素，大花黃牡丹樣品中不飽和脂肪酸含量較低，是否說明其籽油的質量低于牡丹品種，還有待進一步考證。

經DPPH自由基清除率測定和Fe3+還原能力測定，大花黃牡丹種皮的抗氧化活性要明顯高于其他幾個產地牡丹樣品。大花黃牡丹生長在高海拔地區，其紫外線較內地要強，是否在種皮中產生了大量能夠抵御強紫外線的活性成分，如黃酮類、花青素類、芪類等，這些成分所具有的抗氧化作用或許是造成大花黃牡丹種皮抗氧化活性高的原因。大花黃牡丹籽油的自由基清除率為30.14%，河南產牡丹與之接近為27.33%，山東產牡丹和安徽產牡丹的清除率不足20.00%，僅江蘇產牡丹的清除率(37.56%)高于大花黃牡丹；而Fe3+還原能力測定結果表明，大花黃牡丹籽油的還原能力雖然最高，為0.24 Abs，但與其他幾個產地牡丹樣品測定結果相差不大，由此可見大花黃牡丹籽油的抗氧化活性與牡丹相較并不明顯。

牡丹籽油無急性毒性、遺傳性毒性和亞急性毒性，食用安全性高。因此，牡丹籽油被營養學家稱為“世界上最好的油”。亞麻酸是人體所需的重要營養物質，牡丹籽油富含亞麻酸，有廣闊的發展前景。牡丹籽油中維生素E和角鯊烯具有較強抗氧化作用，而功能性脂肪酸和甾醇等活性物質也具有清除自由基作用，以上成分或是牡丹籽油抗氧化活性的來源[21]。研究發現，牡丹籽油極易被皮膚吸收，可廣泛應用于食品化妝品領域，具有抗衰老、防紫外線、消炎等功能[22]；牡丹籽油的生產過程中還會產生大量副產品，如蛋白質和藥用成分含量較高的牡丹籽餅。目前，已將其深加工為牡丹蛋白質粉、牡丹營養棒和牡丹休閑食品等。而籽餅中所含亞麻酸、亞油酸、牡丹酚和牡丹皂甙等藥用成分，經過純化后可作為醫藥原料。牡丹種皮具有較好的抗氧化功效，其制品已應用于藥品、保健品和化妝品領域[23]。由此可見，將大花黃牡丹種子進一步加工成有長期經濟效益的高附加值產品，必將產生良好的經濟效益和社會效益。