超聲微泡介導Caprin?1?KO轉染對人肝癌HepG2細胞增殖、周期及cyclinD1、cyclinD2表達的影響

陳佳琳 林翠燕 賴美燕 林健如 張慧 過新民

暨南大學附屬廣州紅十字會醫院超聲醫學科（廣州510220）

超聲靶向微泡破壞（UTMD）是一種具有無創性介導基因定位釋放的新型基因遞送技術，可作為當前基因治療的有效方法之一。肝細胞性肝癌（HCC）在腫瘤中發病率位居第六位，是全球第四大癌癥死亡原因，目前治療方法逐步多樣化及綜合化，基因治療是當前研究的熱點［1-2］。近年來發現microRNA 等小分子可以通過抑制細胞周期蛋白，如CDK1、CDK2、cyclinD1 等影響HCC 的細胞增殖、周期等生物學特性［3］。Caprin?1 是一種廣泛表達的RNA 結合蛋白，不僅能通過控制相關基因的調節來影響細胞周期，其聚合物也可參與多種惡性腫瘤的發生發展，具有成為生物標志物和治療新靶標的潛力［4-5］。目前已有文獻報道Caprin?1 與HCC 的發生、預后及術后早期復發具有一定的相關性［6］，但Caprin?1 對HCC 的作用及機理研究均較少。本實驗擬構建并篩選Caprin?1 敲除質粒、觀察超聲微泡介導其轉染對人肝癌HepG2 細胞增殖、周期及cyclinD1 及cyclinD2 表達的影響，為進一步研究Caprin?1 表達異常在肝癌發病機理中的作用提供思路，為肝癌的靶向治療提供新的方法。

1 材料與方法

1.1 主要儀器與試劑pX330質粒載體系統（CRIS?PR/Cas 系統）（輝園苑公司，貨號：#HYY2001）、HepG2 人肝癌細胞（廣州輝園苑醫藥科技有限公司）、Bsmb1 內切酶（NEB 貨號：#R0580S）、T4 DNA連接酶（Thermo，貨號：EL0011）、Trans5a 感受態細胞（Transgene，貨號：CD201?02）、Anti?CAPRIN1抗體（abcam，貨號ab38859）、β?Actin 抗體（博士德，貨號BM0627）、兔抗羊IgG?HRP（博士德，貨號BA1060）、GAPDH 抗體（Proteintech，貨號10494?1?AP）、羊抗兔IgG?HRP（博士德，貨號BA1054）、羊抗小鼠IgG?HRP（博士德，貨號BA1050）、RNA pure總RNA快速提取試劑盒（離心柱型）（BIOTEKE，貨號：RP1201）、注射用六氟化硫微泡（聲諾維，Bracco Suisse SA，國藥準字J20130045）、CCK?8 試劑盒（BEYOTIME）、東芝超聲診斷儀（Apilo 500）。

1.2 實驗方法

1.2.1 Caprin?1 敲除載體構建設計測序引物JDsgRNA?R、Caprin?1敲除質粒KO?1及KO?2引物序列（表1），CRISPR/Cas載體用內切酶Bsmb1酶切，將KO?1 及KO?2 引物序列通過連接酶與酶切位點結合，采用Trans5a 感受態細胞進行轉化，篩選陽性菌株并通過引物JDsgRNA?R 測序鑒定，按試劑盒要求提取、純化質粒，跑膠鑒定質粒構建成功。

1.2.2 實驗分組（1）NC 組：微泡濃度（5%）+空載質粒（2 μg）+無血清培養基（DMEM）；（2）實驗組1：微泡濃度（5%）+Caprin?1?KO?1（2 μg）+無血清培養基（DMEM）；（3）實驗組2：微泡濃度（5%）+Caprin?1?KO?2（2 μg）+無血清培養基（DMEM）。

1.2.3 超聲輻照轉染采用課題組前期實驗成果，設置最佳轉染條件（頻率2.0 MHz，MI：0.37，時間：20 s）［7］，將適量耦合劑置于超聲診斷儀的探頭上后置于培養板底部，對三組細胞分別進行輻照處理，之后在37 ℃，5%CO2的培養箱中繼續培養。

表1 引物序列Tab.1 Primer sequence

1.2.4 Western blot 檢測Caprin?1 蛋白的表達和篩選最優質粒將收集三個組的細胞分別加入細胞裂解液。用聚丙烯酰胺凝膠電泳分離蛋白，轉移到PVDF 膜中并封閉膜。與一抗Caprin?1 和GAPDH 孵育，在4 ℃搖床過夜后，用TBST 洗膜，在室溫下再用二抗孵育1 h，繼續洗膜，ECL 化學發光法進行顯示、定影。用IPP6.0 軟件分析蛋白質條帶的IOD 值。

1.2.5 CCK?8 法檢測細胞增殖取經轉染后的對照組及實驗組細胞，經0.25%胰酶消化后制成細胞懸液，以200 μL/孔接種在96 孔板中，并做好標記，各組重復三次。放入培養箱（37℃，5% CO2）中預培養。將20 μL/孔CCK?8 溶液加入到各組中，將培養板在培養箱內孵育，待4 h 后使用酶標儀測定在波長為450 nm 處的吸光度值（OD值）。繼續培養，分別于24、48 及72 h 時測定吸光度。

1.2.6 FCM 檢測細胞周期取經轉染后培養的HEPG2?KO?CAPRIN1 組及HEPG2?KO?NC 組細胞，離心后收集細胞，PBS 清洗細胞2 次。加入70%預冷乙醇中使細胞重懸，吹散后于4℃固定1 ～2 h。繼續離心，用PBS 清洗細胞1 次，加入500 μL PBS，避光在4℃下孵育30 min。用流式細胞儀檢測。

1.2.7 qPCR 法測定細胞中cyclinD1和cyclinD2的表達量取經轉染處理后的實驗組（HEPG2?KO?CAPRIN1）及對照組細胞（HEPG2?KO?NC），按試劑盒要求，先利用RNA pure 快速提取試劑盒提取總RNA、再對總RNA 進行反轉錄，最后按照qPCR 試劑盒說明進行qPCR 反應并跑膠驗證，基因相對表達變化量采用2?△△CT（Livak）方法計算。

1.3 統計學方法采用SPSS 22.0 統計軟件進行分析，數據為計量資料時以均數±標準差表示，兩樣本比較用t檢驗，組間比較用單因素方差分析，P＜0.05 為差異有統計學意義。

2 結果

2.1 Caprin?1?KO 構建結果質粒Caprin?1?KO?1與Caprin?1?KO?2 的結構圖譜分別見圖1、2。選取0.5 μg 質粒進行酶切鑒定質粒質量，結果見圖3、4，條帶大小符合預期。進一步將構建的質粒送公司測序，圖5、6 所示測定序列與原設計相符，表明質粒構建成功。

圖1 Caprin?1?KO?1 的質粒結構圖譜Fig.1 Plasmid structure map of Caprin?1?KO?1

圖2 Caprin?1?KO?2 的質粒結構圖譜Fig.2 Plasmid structure map of Caprin?1?KO?2

圖3 Caprin?1?KO?1 質粒進行酶切鑒定結果Fig.3 The result of restriction digestion of Caprin?1?KO?1 plasmid

圖4 Caprin?1?KO?2 質粒進行酶切鑒定結果Fig.4 The result of restriction digestion of Caprin?1?KO?2 plasmid

圖5 Caprin?1?KO?1 質粒測序結果Fig.5 Sequencing results of Caprin?1?KO?1 plasmid

圖6 Caprin?1?KO?2 質粒測序結果Fig.6 Sequencing results of Caprin?1?KO?2 plasmid

2.2 Western blot 法鑒定轉染后HepG2 細胞中Caprin?1 的IOD 值根據圖7、8 結果示，與NC 組及KO?1 組相比，KO?2 組轉染后Caprin?1 相對表達量IOD 值明顯最低（P ＜0.05）。這表明用于后續細胞學研究的最優質粒為KO?2 組（稍后命名為Caprin?1?KO）。

圖7 不同質粒Caprin?1 蛋白鑒定結果Fig.7 Caprin?1 protein identification results of different plasmids

圖8 不同質粒在最優轉染條件下Caprin?1 蛋白的相對表達量Fig.8 The relative expression of Caprin?1 protein of different plasmids under optimal transfection conditions

2.3 CCK?8 法檢測Caprin?1?KO 表達對HepG2細胞增殖抑制的影響見圖9，在4 h 時，實驗組與對照組細胞的OD值差異無統計學意義；當培養時間點在24、48 和72 h 時，HEPG2?KO?NC 組細胞OD值明顯高于HEPG2?KO?CAPRIN1 組，且隨著時間的推移，OD值的差異增大（P＜0.05），這表明Caprin?1 為HepG2 細胞的促癌基因，Caprin?1?KO被轉染后，細胞活性減弱，可抑制細胞增殖。

圖9 不同時間培養人肝癌HepG2 細胞增殖的OD 值情況Fig.9 The OD value of the proliferation of human liver cancer HepG2 cells cultured at different times

2.4 FCM檢測Caprin?1?KO表達對細胞周期阻滯的影響見圖10、11，細胞周期各期均有統計學意義，在G0/G1 期，HEPG2?KO?CAPRIN1 組的HepG2細胞數量較HEPG2?KO?NC 組明顯增多，S 期及G2/M 期數量則明顯下降。這說明Caprin?1?KO 可使人肝癌HepG2 細胞的細胞周期阻滯于G0/G1 期。

圖10 抑制Caprin?1 表達后對人肝癌HepG2 細胞周期影響結果Fig.10 The result of inhibiting Caprin?1 expression on the cell cycle of human liver cancer HepG2

2.5 qPCR 法檢測Caprin?1 對細胞cyclinD1 和cy?clinD2 的表達量的影響見圖12，在HEPG2?KO?CARPIN1 組中細胞的cyclinD1 和cyclinD2 均表達下調，差異具有統計學意義（P＜0.05）。表明Cap?rin?1 敲除后細胞周期受到阻滯，抑制肝癌細胞的增殖。

3 討論

圖11 兩組周期結果圖Fig.11 Cell cycle result of the two group

目前，對肝細胞性肝癌（HCC）治療的研究已經到達分子生物學水平，該治療方式對早期診斷無癥狀的HCC、預測肝癌患者手術治療后復發及轉移的能力，從而改善患者的預后十分重要［8-9］。分子生物標志物如高爾基體蛋白73（GP73），磷脂酰肌醇聚糖3（GPC?3），甲胎蛋白異質體3（AFP?L3）等［11-12］，與傳統的臨床病理學指標相比具有更強的預測能力［10］。但對于晚期患者來說其臨床應用效果仍然不理想。因此，發現HCC 的新預后生物標志物仍然很重要，有利于患者的治療和改善患者預后。

圖12 HEPG2?KO?CAPRIN1 細胞中cyclinD1，cyclinD2 的表達量Fig.12 The expression levels of cyclinD1 and cyclinD2 in HEPG2?KO?CAPRIN1 cells

Caprin?1 是脊椎動物中普遍表達、高度保守的細胞質磷蛋白，由709 個氨基酸組成，含有RNA 結合蛋白特有的RGG 序列［4］。其與細胞增殖密切相關，缺乏Caprin?1 可能會阻滯細胞周期內G1 期至S期的進展［13］。Caprin?1 與多種惡性腫瘤密切相關，在不同的腫瘤細胞中，Caprin?1 及其相關蛋白可通過多種信號轉導路徑影響疾病進展。Caprin?1 在乳腺癌細胞中是miR?223的靶標，通過調控Caprin?1 miRNA 的3′非翻譯區（3′UTR）抑制癌細胞的增殖及侵襲［14］。Caprin?1 在骨肉瘤細胞中可通過激活ERK1/2 及Akt 通路參與細胞增殖，凋亡和轉移［15］。在結腸癌中，miR?193a 高表達可抑制Caprin?1/G3BP?1/c?MYC/Cyclin D2 表達，并可引起細胞周期G1 期停滯從而使細胞增殖受到抑制，表明Caprin?1可能對結腸癌的診療有潛在的應用價值［16］。在HCC中，TAN等［17］發現Caprin?1高表達與HCC 總生存率存在顯著負相關，可獨立預測HCC 患者的預后，這表明Caprin?1可能與與HCC疾病的發生發展有一定的聯系。在本研究中，通過UTMD 法將構建的質粒Caprin?1?KO 轉染入人肝癌HepG2 細胞，用于抑制培養細胞中Caprin?1 的表達。研究結果表明，抑制Caprin?1 表達后，cyclinD1 和cyclinD2 均表達下調，cyclinD1 和cyclinD2 為細胞周期蛋白家族的成員，參與細胞周期進程的調節，以使G1 轉變為S 期［18］，與細胞生長密切相關。進一步實驗發現抑制Caprin?1 表達后，細胞增殖受到抑制，細胞周期阻滯細胞在G0/G1 期。細胞周期的有序進行依賴于細胞周期檢查點蛋白的質量控制，G1?S 檢查點決定細胞的增殖，當細胞周期受到阻滯時，說明了DNA 出現了損傷，阻滯是為了給細胞提供修復損傷的時間，從而減少突變，避免腫瘤發生［19］。本研究并未進一步探索Caprin?1 與cyclinD1、cy?clinD2 的相互關系，Caprin?1 作用于cyclinD1/D2 mRNA 是否可激活細胞內相關調節通路來影響細胞增殖有待進一步探索。

綜上，Caprin?1 為HCC 的促癌基因，超聲微泡介導Caprin?1 敲除質粒轉染人肝癌HepG2 細胞，cyclinD1 和cyclinD2 表達下降，細胞增殖受到抑制，周期發生阻滯，表明Caprin?1 可能通過調節cy?clinD1 和cyclinD2 的表達對細胞增殖、周期產生影響，從而與HCC 疾病的進展相聯系，這為進一步研究Caprin?1 表達在肝癌發病機理中的作用提供思路。