顏 偉 陳潭琇 王雅琦 王靈芝
據統計,全球每年有20~22萬人被診斷為卵巢癌,死亡人數每年10~14萬人[1]。盡管卵巢癌可采用手術切除、化療和放療等治療手段,但預后依然較差,其中最主要的原因是卵巢癌發病隱匿,臨床癥狀體征不典型,被發現時大部分患者已處晚期[2]。與其他腫瘤類似,卵巢癌的發病機制十分復雜,它的發生發展涉及腫瘤細胞增殖、遷移、侵襲、血管生成及趨化等[3]。S100A10屬于S100蛋白家族成員之一,有研究表明S100A10在多種腫瘤(包括乳腺癌,肺癌,胃癌,胰腺癌及結直腸癌等)中異常高表達,參與細胞增殖、分化、凋亡、炎癥、血管生成以及遷移侵襲的調控。然而,S100A10在卵巢癌中的作用目前報道較少[4]。本研究擬改變S100A10在卵巢癌細胞中的表達,通過體外實驗檢測S100A10對卵巢癌細胞周期的影響,探討S100A10在卵巢癌中的作用及分子機制。
山羊抗兔/小鼠的單克隆抗體購自北京中杉金橋生物技術有限公司;蛋白定量試劑盒及化學發光液購自美國Thermofisher公司;S100A10單克隆抗體購自美國Novus Biologicals公司,cyclinD1、CDK2及CDK4單克隆抗體購自Cell Signaling公司,β-actin單克隆抗體購自Sigma公司;轉染試劑盒購自美國Invitrogen公司;SKOV-3、A2780及HEK293T細胞購自ATCC細胞庫。
1.2.1 S100A10-shRNA的合成 S100A10-shRNA序列及對照序列shGFP均由上海生物工程股份有限公司合成,分別命名為shS100A10#1、shS100A10#2、shGFP。
1.2.2 細胞培養與轉染 用含10%胎牛血清的DMEM培養液培養HEK293T細胞,用含10%胎牛血清的RPMI-1640培養液培養SKOV-3和A2780細胞,置于37 ℃,5% CO2培養箱中培養。待HEK293T細胞達到70%~80%滿后,將合成的shGFP、shS100A10#1和shS100A10#2按照脂質體試劑說明操作經Lipofectamine2000轉入細胞中,48 h后,收集培養上清病毒液,800 g離心10 min,用0.45 μm濾器過濾,-80 ℃保存。將過濾后的病毒上清以1∶3的體積比加入SKOV-3和A2780細胞培養上清中,另外加入5 mg/ml的polybrene,轉染后細胞分別命名為shGFP組、shS100A10#1組、shS100A10#2組。
1.2.3 細胞周期實驗 用胰蛋白酶進行消化,收集細胞,棄上清,用70%預冷乙醇固定,用PI在4 ℃染色30 min,最后采用流式細胞儀檢測細胞周期,實驗重復3次。
1.2.4 Western Blot實驗 收集細胞,用細胞裂解液(1% Triton X-100;10 mM Tris-HCl,pH 7.4;150 mM NaCl;0.25% 去氧膽酸鈉;5 mM EDTA,pH 7.4)于冰上裂解20~30 min后,12 000 rpm離心15 min,收集蛋白上清,用BCA試劑盒測蛋白濃度,取等量蛋白15 μg進行SDS-PAGE電泳,轉至PVDF膜,用5%脫脂奶粉室溫封閉1 h,4 ℃一抗(1∶5000)或β-actin(1∶4000)抗體孵育過夜,TBS-T洗3次,室溫二抗(1∶5000)孵育1 h,化學發光顯影,最后曝光成像。
采用SPSS 22.0軟件分析,計量資料采用t檢驗。若P<0.05,認為差異有統計學意義。
本研究成功構建穩定的S100A10基因敲降的SKOV-3和A2780細胞系。為檢測轉染效率,采用Western Blot法檢測S100A10的蛋白表達水平,結果顯示轉染組(shS100A10#1、shS100A10#2轉染)SKOV-3和A2780細胞中S100A10蛋白的表達強度均明顯低于各自對照組(shGFP轉染)SKOV-3和A2780細胞。見圖1。該結果說明shRNA質粒構建有效,可以進行后續實驗。

圖1 S100A10敲降卵巢癌細胞S100A10蛋白表達水平
為了檢測S100A10表達水平對卵巢癌細胞增殖的影響,研究采用CCK8法檢測細胞增殖。實驗結果表明,S100A10表達下調,細胞增殖能力明顯減弱,差異具有統計學意義(P<0.001)。見圖2。

圖2 S100A10敲降對卵巢癌細胞增殖能力的影響
為了檢測S100A10表達水平對卵巢癌細胞周期的影響,本研究采用流式細胞術檢測細胞周期變化。實驗結果表明,抑制S100A10的表達后,SKOV-3細胞周期阻滯在G0/G1期,S期細胞數減少,差異具有統計學意義(P<0.05)。見圖3。

圖3 沉默S100A10表達水平對SKOV-3細胞周期的影響
CyclinD1、CDK2及CDK4是目前比較公認的可影響細胞周期的蛋白分子,在細胞從G1期進入S期過程中起著至關重要的作用。為了進一步確認S100A10可以影響卵巢癌細胞周期,采用Western Blot法檢測,結果發現S100A10敲降后,轉染組(shS100A10#1、shS100A10#2轉染)SKOV-3和A2780細胞CyclinD1、CDK2及CDK4表達水平明顯低于對照組(shGFP轉染),差異具有統計學意義(P<0.05)。見圖4。該結果說明S100A10敲降通過抑制CyclinD1、CDK2及CDK4蛋白的表達從而將細胞阻滯在G0/G1期,從而抑制細胞增殖。

圖4 S100A10敲降后卵巢癌細胞周期相關蛋白表達水平的變化
卵巢癌在女性常見腫瘤中發病率居第九位,病死率居第五位,嚴重影響女性健康。在我國,卵巢癌的發病率呈逐年上升趨勢,目前盡管外科手術切除、化療和放療已被證實有較好療效,但卵巢癌發現時大部分處于進展期或者已發生轉移。近二十年來,在提高卵巢癌患者生存期方面沒有實質的進展,預后依然較差[5]。因此,闡明參與卵巢癌進展的分子機制是臨床亟需解決的重要難題。
S100A10屬于S100家族成員之一,與其他20種已知的S100蛋白家族分子不同的是,S100A10一直處于活性狀態且對胞內Ca2+信號不敏感[6-7]。S100A10在胞質中可與Annexin A2相互作用形成異源復合體,從而使其從胞質轉運至細胞膜。目前,研究表明S100A10在多種細胞類型中表達,包括內皮細胞、巨噬細胞、成纖維細胞、上皮細胞以及多種腫瘤細胞,它被認為是癌基因,有多項研究探討S100A10表達水平與腫瘤發生發展的關系[8]。
癌細胞增殖能力增強是癌癥進展的主要原因之一,Ken Katono等報道S100A10在肺腺癌中高表達,且S100A10表達水平與預后相關。S100A10在球面鱗狀細胞癌中呈高表達,參與邊緣上皮細胞增殖和分化[9]。miR-590-5P過表達能夠有效降低S100A10的表達,從而抑制HepG2細胞增殖[10]。在本研究中,我們通過敲降SKOV-3和A2780細胞中S100A10的表達水平,以此檢測S100A10對SKOV-3和A2780細胞增殖的影響,結果發現S100A10敲降后,SKOV-3和A2780細胞的增殖能力明顯減弱,且細胞周期阻滯在G0/G1期。這與目前在其他腫瘤中的研究結果相似,由此提示S100A10在卵巢癌中可能是癌基因。
CyclinD1、CDK2及CDK4是影響細胞周期相關蛋白分子,在細胞從G1期進入S期過程中起著非常重要的作用[11]。本研究在改變了S100A10表達的SKOV-3和A2780細胞中應用了Western Blot法檢測了CyclinD1、CDK2及CDK4的表達水平,結果證明S100A10的表達與CyclinD1、CDK2及CDK4的表達水平一致,這與細胞周期實驗檢測結果相一致,同時也證明了S100A10在卵巢癌中是一個癌基因。
綜上所述,課題組通過細胞功能學實驗,發現S100A10敲降抑制SKOV-3和A2780細胞增殖并阻滯SKOV-3細胞處于G0/G1期,細胞周期相關蛋白CDK2、CDK4及CyclinD1表達下調,從而抑制卵巢癌細胞進入G2/M期,使其無法啟動有絲分裂,因此抑制了細胞增殖。本實驗初步揭示了S100A10表達水平對卵巢癌細胞增殖具有調節作用,為尋找卵巢癌臨床治療靶點提供了新思路。