成亞琳 趙怡心 張任飛 劉宏*
1. 綿陽市第三人民醫(yī)院/四川省精神衛(wèi)生中心,四川 綿陽 621000 2. 重慶醫(yī)科大學附屬第一醫(yī)院生殖健康與不孕癥中心,重慶 400016
絕經后骨質疏松癥(postmenopausal osteoporosis,PMOP)的高發(fā)生率、嚴重并發(fā)癥成為困擾人們的公共衛(wèi)生難題,其骨吸收超過骨形成,骨密度降低,骨組織結構完整性被破壞,骨骼變得脆弱,易于發(fā)生骨折[1]。長期以來,人們認為PMOP的發(fā)生與絕經后雌激素水平降低有關[2],但隨著研究[3]進展,也有人認為圍絕經期顯著升高的促卵泡激素(follicle-stimulating hormone,FSH)是引起PMOP的重要原因之一。
FSH是來源于腺垂體的促性腺激素[4],由特異性的β亞基通過非共價鍵連接非特異性的α亞基[5-7]組成二聚體,與卵巢或睪丸中的FSH受體(follicle-stimulating hormone receptor, FSHR)結合[8]調節(jié)性腺發(fā)育[4],其分泌受下丘腦、卵巢或睪丸等的調節(jié)。長久以來,人們對FSH生理作用的認識局限于生殖系統(tǒng),但隨著研究方法的多樣化,人們也開始關注其對生殖系統(tǒng)以外的影響[9]。
研究表明,FSHR廣泛分布于多種組織。胰腺[10]、前列腺[11]、胎盤[12]等均有FSH和FSHR存在,血糖[10]、血脂[13]調節(jié)、腫瘤轉移[14]、血管形成[12]等也有其參與。骨骼系統(tǒng)中,破骨細胞及其前體、成骨細胞前體[15]以及軟骨細胞[16]上均檢測到FSHR表達。在破骨細胞及其前體上,FSH與Giα偶聯的FSHR結合,促進破骨細胞形成,使骨吸收增加,因而認為絕經期升高的FSH是引起PMOP的原因之一[15]。Tourkova等[17]通過研究FSH對間充質干細胞的影響,發(fā)現FSH可以增加MSCs的增值,但對成骨分化并無顯著影響,甚至隨著時間延長會減少骨形成。此外,也有研究表明,FSHβ能增強BMP/Smad通路[18]和Notch通路[19]協(xié)同BMP9誘導MSCs成骨分化。那么,作為五大發(fā)育信號之一的Wnt通路是否也參與了FSH增強BMP9誘導的成骨分化呢?
Wnt信號龐大而復雜,最經典的是Wnt/β-catenin信號[20]。Wnt配體與受體結合后,抑制APC-Axin-GSK3β復合物的功能,胞質內β-catenin磷酸化水平降低,非磷酸化水平顯著升高,轉移至核內與TCF/LEF形成復合物,激活下游靶基因:cyclin D1、c-Myc、c-Jun、DPAGT1等的轉錄[21],調節(jié)細胞增殖和存活[22]。Wnt通路與多種信號網絡存在聯系,可通過β-catenin與Runx2相互作用,參與BMP9對MSCs的成骨調節(jié)[23]。因此,本課題在前期研究[18, 19]的基礎上探討了Wnt/β-catenin信號對FSHβ協(xié)同BMP9誘導MSCs成骨分化的影響。
PMOP引起的健康問題受到廣泛關注,有人期待以絕經期顯著升高的FSH為契機,尋找防治新方向。本課題使用從C3H小鼠胚胎中分離建立的具有多向分化潛能的間充質干細胞株C3H10T1/2為研究對象,以重組腺病毒為GFP、FSHβ和BMP9載體,將FSHβ與有較強成骨作用的BMP9相結合,探討FSHβ對BMP9誘導MSCs成骨的影響,為絕經后骨松的防治提供新思路。
本研究中使用的293T人胚腎細胞和C3H10T1/2細胞均從ATCC(American type culture collection)公司采購[19]。ALP顯色試劑盒從Beyotime Biotechnology公司采購。ARS染料從重慶賽米克生物科技有限公司采購。細胞總RNA快速抽提試劑盒(Trizol)為美國英杰(Invitrogen)公司生產。反轉錄試劑盒和qPCR檢測試劑盒從寶生物工程(大連)有限公司采購。XAV-939購買于MedChemExpress公司。
1.2.1細胞培養(yǎng):本研究中所有細胞均在含90 %高糖、10 %熱滅活胎牛血清(fetal calf serum, FCS)和1 %鏈霉(100 μg/mL)-青霉素(100 U/mL)的DMEM培養(yǎng)基中培養(yǎng),置5 % CO2、37 ℃細胞培養(yǎng)箱。
1.2.2重組腺病毒GFP、BMP9和FSHβ的構建與擴增:本研究使用的目標重組腺病毒GFP、BMP9和FSHβ(Ad-GFP、Ad-BMP9和Ad-FSHβ)均使用AdEasy系統(tǒng)[24]構建,表達綠色熒光,293T細胞擴增后凍存于-80 ℃。
1.2.3目標腺病毒滴度測定及藥物濃度測定:本研究設計為四組:Ad-GFP組(對照組)、Ad-BMP9組、Ad-FSHβ組和Ad-BMP9+Ad-FSHβ組(后三組為實驗組)。將C3H10T1/2細胞消化、離心、重懸后以適當密度接種于24孔板[19],待細胞貼壁后,取適量重組腺病毒原液按倍比稀釋法感染細胞,24 h后熒光顯微鏡下觀察細胞內各種腺病毒綠色熒光表達量,結合ALP顯色結果選擇重組腺病毒感染濃度進行研究。此外,將不同濃度的XAV-939加入Ad-BMP9+Ad-FSHβ實驗組,根據ALP染色結果選擇藥物濃度。每組實驗重復次數:n=3。
1.2.4ALP染色:將細胞接種于24孔板,根據測定的腺病毒或藥物濃度處理細胞,7 d后按ALP顯色試劑盒操作說明對細胞進行固定、清洗、染色、照相并記錄。每組實驗重復次數:n=3。
1.2.5目的基因檢測:將細胞接種于24孔板,重組腺病毒或藥物處理細胞,5 d后根據TRIzol、反轉錄試劑盒和qPCR檢測試劑盒使用說明提取細胞總RNA、合成cDNA并檢測目的基因表達。每組實驗重復次數:n=3。目的基因前、后引物序見表1。

表1 目的基因引物序列Table 1 Gene primers sequences
1.2.6ARS染色:將細胞接種到24孔板,重組腺病毒感染細胞后第3天用含10 mmol/L β-磷酸甘油和50 ng/mL維生素C的鈣鹽誘導培養(yǎng)基替代DMEM培養(yǎng)基,第28天移棄培養(yǎng)基后經多聚甲醛(4 %)固定、茜素紅S染色后顯微鏡下采集圖像信息。每組實驗重復次數:n=3。
ALP是一種糖蛋白,在骨組織中被認為是骨形成的早期生物學標志物[25]。另外,在MSCs向骨細胞分化的進程中,成骨細胞是一個重要的中間分化形態(tài),其重要的生物學特征是分泌細胞外基質(類骨質),導致磷酸鈣沉積,即礦化,茜素紅S染色后呈橘紅色。因此,鈣鹽小結被認為是其重要的晚期標志物之一。將測定滴度的目標腺病毒按實驗設計感染C3H10T1/2細胞,分別于7 d和28 d后檢測ALP和鈣鹽小結的表達。研究結果如圖1 A所示,較Ad-GFP對照組,Ad-FSHβ實驗組ALP的顯色無明顯差異,Ad-BMP9實驗組明顯加深,提示FSHβ對MSCs向成骨細胞的分化無顯著影響,BMP9則有較強的成骨誘導功能;而Ad-BMP9與Ad-FSHβ聯合實驗組ALP顯色較Ad-BMP9實驗組進一步加深,鈣鹽小結染色結果也呈現相似的顯色趨勢(圖1B),提示 FSHβ表達增強了BMP9誘導下MSCs成骨方向分化的能力。
本課題前期研究發(fā)現經典的BMP/Smad信號[18]和Notch信號[19]可能參與了FSHβ協(xié)同BMP9誘導MSCs成骨,因而,本研究探討了經典的Wnt/β-catenin信號是否也在其中發(fā)揮作用。檢測Wnt/β-catenin通路下游基因轉錄,在Ad-FSHβ實驗組,cyclin D1 mRNA的表達量與Ad-GFP對照組相比無顯著性差異, Ad-BMP9實驗組的表達量明顯升高(P<0.01),提示單獨用FSH處理MSCs不會引起Wnt/β-catenin信號的增強,而BMP9則可誘導經典的Wnt信號傳遞;此外,聯合使用Ad-BMP9和Ad-FSHβ處理MSCs,cyclin D1的轉錄較Ad-BMP9實驗組顯著增加(P<0.01),提示FSHβ增強了BMP9誘導的cyclin D1的轉錄(圖2),亦即FSHβ增強了BMP9誘導的Wnt/β-catenin信號傳遞。

圖1 FSHβ對BMP9誘導的MSCs成骨分化中ALP和鈣鹽小結的影響 A:ALP顯色結果顯示各組ALP表達情況(7 d);B:ARS染色后光學顯微鏡下各組鈣鹽小結沉積情況(28 d,100×)。Fig.1 The influences of FSH on ALP and calcium salt nodules of MSCs osteogenesis differentiation induced by BMP9 A:ALP chromogenic reaction showed the ALP expression in all groups (7 days); B:ARS staining results showed the calcium salt nodules deposition in each group with optical microscope dectection (28 days, 100×).

圖2 qPCR技術檢測各組cyclin D1的轉錄水平(5 d,n=3,Student’s t-test)注:與Ad-GFP組比較,**P<0.01;與 Ad-BMP9組比較,&&P<0.01。Fig.2 qPCR technology assayed the transcription levels of cyclin D1 in each group(5 days, n=3, Student’s t-test)
本研究使用Wnt信號抑制劑XAV-939進一步驗證筆者的猜想。XAV-939可結合ADP-核糖基化酶催化域穩(wěn)定Axin,降低β-catenin穩(wěn)定性,因此在該通路中起阻滯劑功能。首先,本研究檢測了XAV-939處理后各研究組中Wnt/β-catenin下游基因的轉錄。和預期一樣(圖3),XAV-939處理后,降低了細胞中BMP9誘導的cyclin D1的轉錄水平(P<0.01),也降低了Ad-BMP9與XAV-939聯合實驗組中cyclin D1的轉錄水平(P<0.05),提示XAV-939降低了FSHβ增強BMP9誘導的Wnt/β-catenin信號轉導。另外,顯色實驗顯示各研究組中ALP的表達和cyclin D1轉錄有相似的變化,提示XAV-939抑制了FSHβ協(xié)同BMP9誘導成骨的作用。
PMOP的高發(fā)生率已引起各國的重視,其病因、發(fā)病機制、診治方法、預防策略等都是廣泛關注的問題。隨著組織工程學的發(fā)展,具有成骨分化潛能的MSCs有望在PMOP的防治中發(fā)揮作用,但由于其多向分化特性,其在成骨中的實際應用受到限制。
研究發(fā)現,FSH除調節(jié)生殖系統(tǒng)外,對骨骼系統(tǒng)也存在影響。FSH對骨形成負調控,FSHβ亞基的多克隆抗體不僅阻斷FSH對破骨細胞的作用,還能刺激骨形成,增加成骨細胞數量[26]。但利用轉基因技術在雌鼠高表達FSH[27]卻能增加脛骨和椎體小梁骨體積;另外,不同的FSHR基因型(AA rs 6166和GG rs 6166)對骨代謝也可產生不同影響[28]。由此,FSH對骨骼系統(tǒng)影響復雜。PMOP表現為骨丟失超過骨形成,而破骨細胞前體和成骨細胞前體上均有FSHR存在,那么是否有因子能與之協(xié)作后逆轉FSH的破骨能力,向成骨方向發(fā)展,成為筆者的研究目標。
很多因子都與FSH存在聯系,BMPs家族即是其中之一。BMP7能增加人卵巢顆粒細胞FSHR表達,調節(jié)卵泡成熟[29];在未分化的顆粒細胞里,BMP2卻能誘導Smad1/5/8磷酸化阻斷FSH誘導的FSHR表達,從而抑制FSH應答[30]。BMP9被證實有較強誘導成骨分化的作用[31],本課題推測FSH也能調節(jié)BMP9誘導MSCs向成骨細胞分化。

圖3 XAV-939(1 μmol/L)處理后各組中cyclin D1 mRNA和ALP的表達檢測 A:qPCR檢測各組中cyclin D1 的轉錄(5 d,n=3,Student’s t-test。與Ad-GFP組相比,**P<0.01;與Ad-BMP9組相比, ##P<0.01;與Ad-BMP9組相比,&&P<0.01;與AdBMP9+Ad-FSHβ組相比,@P<0.05);B:ALP顯色實驗檢測各組ALP的表達(7 d)。Fig.3 The expressions detection of cyclin D1 mRNA and ALP in all groups with XAV-939 (1 μmol/L) treatment
研究以C3H10T1/2為間充質干細胞代表,用重組腺病毒攜帶BMP9和FSHβ基因體外表達驗證筆者的猜想。研究結果顯示,FSH能增強BMP9成骨誘導效應,表現為BMP9與FSHβ共同實驗組ALP、鈣鹽小結表達比BMP9實驗組更高,這與本課題前期研究相符[18-19]。另外,前期研究也證實BMP/Smad信號[18]和Notch信號[19]參與了此過程。因此,本研究接下來檢測了Wnt/β-catenin通路的變化。利用qPCR技術檢測到FSHβ增加了BMP9誘導的cyclin D1的轉錄水平,而單獨的FSH作用對其并無影響,在使用通路抑制劑XAV-939的情況下該作用受到部分抑制,表現為BMP9、FSHβ與XAV-939共同實驗組cyclin D1的轉錄表達水平降低,這種改變在ALP檢測中也得到相似的變化趨勢,因此反向驗證當兩種因子共同作用也增加了Wnt/β-catenin的傳遞。
因此,本研究結果提示BMP9誘導的MSCs成骨分化可受到FSHβ亞基的增強,Wnt/β-catenin通路可能參與其中。然而,其中涉及的具體作用機制仍需進一步深入研究。另外,結合本課題的早期研究,三種信號通路以外是否還有其他的信號參與,以及三者之間是否有相互聯系都是本課題接下來的研究內容,以期為絕經后骨病的防治提供合理的依據。
致謝:感謝重慶醫(yī)科大學生命科學院骨發(fā)育與再生平臺為本研究提供的技術支持與幫助。