拮抗酵母結合水溶性殼聚糖對海紅果采后貯藏品質的影響

陳花，王建軍，王建武，艾銀婷

1(榆林學院 生命科學學院，陜西 榆林，719000) 2(榆林學院 能源工程學院，陜西 榆林，719000)

海紅果(MalusmicromalusMakino)為薔薇科蘋果屬滇池海棠系的西府海棠種，屬世界珍稀果品，在我國境內僅分布于秦、晉、蘇三省部分地區，陜西府谷為主產區，至今已有上千年的栽培歷史。據測定，海紅果營養豐富，鈣、黃酮、氨基酸等成分遠優于同屬果品，其藥用價值潛力巨大，發展前景廣闊。但海紅果在自然放置下易腐爛，使其經濟價值嚴重降低。目前海紅果貯藏方式基本以自然放置和冷藏為主，低溫保藏效果雖好，但耗資大，盈利少，限制了海紅果鮮品銷量。隨著海紅果產量以及市場認可度的提升，探尋一種綠色高效的海紅果貯藏技術已經勢在必行。

目前，利用微生物防治技術降低果蔬病害，提高貯藏品質成為了生物防治的研究熱點。而拮抗酵母以其遺傳穩定、抑菌效果明顯、安全性高以及能與多種物理和化學方法相結合等優點成為了果蔬采后病害防治的主要生防菌，因此拮抗酵母作為一種有效的生物防治劑，代替化學殺菌劑備受人們的關注[1-2]。其中，羅倫隱球酵母(Cryptococcuslaurentii)是國內外研究較多的一種拮抗酵母，對灰霉病[3-4]、青霉病[5-6]、軟腐病[7]、炭疽病[8]等病原菌具有抑制作用，且在蘋果[9]、櫻桃小番茄[4,10]、桃[7]、冬棗[11]、柑橘[6]、芒果[8]、梨[12]、葡萄[13]等水果的保鮮技術方面已有研究。殼聚糖(chitosan)作為一種生物保護劑，近年來被廣泛地應用于果蔬貯藏保鮮[14-16]。殼聚糖無味無毒無害，具有較強的附著性，吸附于物體表面后能迅速固化成膜，將其涂抹于采后果蔬表面，可限制空氣中豐富的O2進入，阻止CO2的排出，因此降低了果實的呼吸作用，減緩了其他有害物質的產生，在一定程度上延緩組織細胞的衰老，提高果蔬貯藏品質。其次，殼聚糖在果蔬表面形成的保護層，能有效阻止病原菌的入侵，降低果蔬的病害感染率。研究結果表明，酵母菌能有效抑制病原菌，但其無法使果蔬與病原菌完全隔離，果蔬貯藏后期由于營養流失嚴重，極易引起病原菌大量繁殖而加速腐爛。如果在果蔬表面涂抹一層水溶性殼聚糖(water soluble chitosan,WSC)，則在其表面將形成一層由殼聚糖構成的半透性保護膜，阻斷果蔬與自然環境的直接接觸，恰好能夠彌補拮抗酵母菌的不足，而拮抗酵母結合WSC對果蔬保鮮效果的研究報道甚少。本文以海紅果為試驗材料，研究羅倫隱球酵母結合WSC對海紅果常溫貯藏品質的影響，為開發海紅果保鮮技術提供參考依據。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

1.1.1 果實和菌株

海紅果(MalusmicromalusMakino),府谷縣麻鎮海紅果種植基地，采時果實應有的風味和香氣未表現，堅硬且有淀粉味，采后裝入內徑為440 mm×325 mm×225 mm的泡沫箱立即運回實驗室，4 ℃冰箱冷藏備用。

灰葡萄孢霉(Botrytiscinerea),北納創聯生物技術有限公司，產品編號BNCC 338228。

羅倫隱球酵母(Cryptococcuslaurentii),北納創聯生物技術有限公司，產品編號BNCC 189135。

1.1.2 主要儀器

HSX-160恒溫恒濕培養箱，常州邁科諾儀器有限公司；JY3002電子分析天平，上海良平儀器儀表有限公司；UV-1780分光光度計，日本島津公司；D-37520高速冷凍離心機，賽默飛世爾(蘇州)儀器有限公司；SKY-1102C恒溫培養震蕩器，上海蘇坤實業有限公司；MLR-352光照箱，上海創奕科教設備有限公司；手持糖量儀(0～32%)，上海力辰邦西儀器科技有限公司；MLS-3781L高壓蒸汽滅菌鍋，日本松下。

1.1.3 主要試劑

WSC(分析純)，上海滬震實業有限公司；甲硫氨酸(分析純)，天津市致遠化學試劑有限公司；氮藍四唑(nitro-blue tetrazolium，NBT)、核黃素(分析純)，上海藍劑；硫代巴比妥酸(分析純)，上海科豐化學試劑有限公司；三氯乙酸(分析純)，天津市科密歐化學試劑有限公司；乙二胺四乙酸二鈉(分析純)，成都市科龍化工試劑廠；愈創木酚(分析純)，福晨(天津)化學試劑有限公司。

1.2 實驗方法

1.2.1 微生物的活化及菌懸液的制備

1.2.1.1 灰葡萄孢霉

將灰葡萄孢病原菌接種到馬鈴薯葡萄糖瓊脂培養基(200 g馬鈴薯取其濾液、20 g葡萄糖、20 g瓊脂、1 L蒸餾水)上，在25～28 ℃下進行活化培養5～7 d后，用無菌生理鹽水沖洗孢子，之后用血球計數板調整其濃度為105spores/mL的孢子懸濁液，待用。

1.2.1.2 羅倫隱球酵母

將羅倫隱球酵母接種到5°Bé麥芽汁瓊脂培養基(5°Bé麥芽汁 1.0 L，瓊脂 15.0 g，自然pH)上,在25～28 ℃下活化培養3 d，用接種環刮取菌落于麥芽汁液體培養基(5°Bé麥芽汁 1.0 L，自然pH)，26 ℃，200 r/min搖床振蕩培養24 h，4 000 r/min離心10 min后收集菌體于無菌生理鹽水中，運用稀釋分離的方法和血球計數板調整濃度分別為105、106、107、108和109CFU/mL。

1.2.2 拮抗酵母菌生防效果最適濃度的篩選

1.2.2.1 果實處理

選取品質較優的海紅果6組，每組30個。用體積分數0.1% NaClO溶液消毒5 min后，用蒸餾水將消毒液沖洗干凈，通風處自然晾干。在海紅果果實的最大直徑處，用消毒后的打孔器對稱扎取直徑2 cm，深2 cm的孔洞，分別將濃度為105、106、107、108、109CFU/mL的20 μL拮抗酵母菌溶液接種在海紅果孔洞中，待菌液吸收2 h后，再接種105spores/mL灰葡萄孢孢子溶液20 μL保持2 h后，將處理后的6組果實分別放入托盤中，用聚乙烯保鮮膜包裹后置于常溫下(溫度22～24 ℃，相對濕度85%～90%)連續培養6 d，每2 d記錄病害發病率和病斑直徑。以不接種拮抗酵母菌溶液為對照組(CK)，每組重復3次。

1.2.2.2 指標測定

(1)發病率：當海紅果果實的初始接種孔處出現直徑大于2 cm的霉菌性病斑即記為發病孔。

(1)

(2)病斑直徑：用游標卡尺直接測定霉菌性病斑孔的直徑。

1.2.3 最適濃度的拮抗酵母結合WSC對海紅果采后貯藏品質的影響

1.2.3.1 果實處理

海紅果的選材和消毒方法同1.2.2小節，共計7組。消毒后果實取其1組用蒸餾水浸泡3 min，記CK1，作空白對照組。用配制好的107CFU/mL酵母懸菌液中浸泡其余6組果實2 min，取出后稍微晾干，取其中1組記CK2，作羅倫隱球酵母單菌對照組。其余5組分別放入質量濃度為5.00、7.50、10.00、12.50和15.00 g/L WSC溶液中浸泡2 min，取出后強通風冷卻晾干，晾干后的海紅果放入托盤用聚乙烯保鮮膜包裹后置于常溫(溫度22～24 ℃，相對濕度85%～90%)下連續培養15 d，每隔2 d指標測定，每組重復3次。

1.2.3.2 指標測定

(1)失重率：采用單個稱重法測定。

(2)

(2)腐爛率：當海紅果果實表面出現缺陷或水浸狀病斑作為腐爛果。

(3)

(3)可溶性固形物(total soluble solids，TSS)含量：采用糖量法，用手持糖量儀測定，結果以%表示。

(4)超氧化物歧化酶(superoxide dismutase，SOD)活性：采用NBT光化還原法[17]，以抑制NBT光化還原達50%所需的酶液量為1個酶活力單位(U)。

(5)過氧化物酶(peroxidase，POD)活性：采用愈創木酚法[17]，以每1 min的A470變化值表示酶活力。

(6)過氧化氫酶(catalase，CAT)活性：采用紫外吸收法[17]，以1 min內A240減少0.1的酶量為1個酶活力單位(U)。

(7)丙二醛(malondialdehyde，MDA)含量：采用硫代巴比妥酸法[17]。

(8)VC含量：采用分光光度計法[18]。

1.3 統計分析

采用Origin 2018軟件進行數據統計和繪圖，采用SPSS 22.0軟件在0.05水平下進行單因素方差分析和鄧肯氏多重比較。

2 結果與分析

2.1 拮抗酵母生防效果最佳濃度的篩選

發病率和病斑直徑直觀反映果實的抗病性能。由表1知，海紅果的發病率和病斑直徑隨貯藏時間的增加逐漸增大。與CK相比，處理組的海紅果發病率和病斑直徑均低于CK，達到顯著水平(P<0.05)。處理組之間相比，隨酵母菌濃度的增大，其對灰葡萄孢的抑菌作用呈先增大后降低的趨勢，當酵母菌懸液濃度達到107CFU/mL時的抑菌作用最大，該濃度下的發病率顯著低于其他處理組，病斑直徑也于貯藏第6天顯著低于其他處理組(P<0.05)。與CK相比，107CFU/mL酵母菌懸液處理下的果實在貯藏第2、4和6天發病率依次降低了94.33%、90.38%和87.70%，病斑直徑分別減小了67.86%、71.86%和73.04%。以上結果表明，拮抗酵母能顯著提高對灰葡萄孢的抑菌效果(P<0.05)，且酵母菌溶液的最適濃度為107CFU/mL，低于或高于最適濃度均會降低其對病原菌的抑制作用。說明拮抗酵母抑制病原菌具有群體效應，其濃度達到一定值后能在果實表面迅速定殖，成為優勢種群，致使病原菌繁殖被抑制。LAI等[3]研究結果表明，108CFU/mLC.Laurentii溶液能顯著降低梨由灰葡萄孢引發的灰霉病(P<0.05)。毛淑波等[19]研究結果也表明，采前噴施108CFU/mLC.Laurentii溶液能有效降低草莓灰霉病的發生。本文研究結果與前人研究結果相似，其抑菌機理是，現階段研究的生防酵母菌均分離于果蔬表面[20-21]，屬果蔬的益生菌群，與病原真菌相比，果實表面微環境更適合酵母菌的生長，使其會在果蔬表面迅速增殖，爭奪了病原菌的生存養料和空間，達到抑菌效果[3,22]。

表1 拮抗酵母對灰葡萄孢霉的抑菌成效Table 1 Antibacterial effect of antagonistic yeast on B.cinerea

2.2 海紅果貯藏過程中拮抗酵母結合WSC對其品質的影響

活體接種試驗表明，107CFU/mLC.Laurentii溶液能夠最大程度地抑制灰葡萄孢霉引起的灰霉病，為了提高拮抗酵母的生防效果，實驗選取了107CFU/mL拮抗酵母與不同質量濃度的WSC結合處理，研究其對貯藏中海紅果品質的影響。

2.2.1 失重率的影響

貯藏期果實失重的主要原因是水分的自然蒸發以及呼吸作用對有機物的分解代謝所致[23]，因此失重率是反映貯藏期果實品質的重要指標。由圖1所知,隨著貯藏時間的延長，海紅果失重率逐漸升高， CK1均顯著高于CK2(P<0.05)，表明拮抗酵母的單獨使用能顯著降低海紅果貯藏過程中水分和有機質的耗損。復合處理組的海紅果失重率均低于CK2，在貯藏第6天開始達到顯著水平(P< 0.05)。當WSC質量濃度為10.00 g/L時，海紅果失重率始終處于最低水平，尤其在貯藏第15天時，較CK2和CK1分別降低了33.61%和51.49%。整個貯藏期，復合處理組間的海紅果失重率差異不顯著(P> 0.05)，說明一定質量濃度范圍內的WSC對海紅果的失重率影響不大。以上結果表明,107CFU/mL拮抗酵母結合一定質量濃度的WSC能降低海紅果的失重率。與MENG等[13]研究結果相似，其機理主要歸因于果實經WSC浸泡后，可在其表面形成一層半透性保護膜，水分的蒸發被阻止，同時也減少了外部O2的進入，使果實表面形成了高CO2低O2的微環境，呼吸強度被減弱，從而減緩了海紅果貯藏過程中的水分丟失和有機質的分解[24-25]。

圖1 拮抗酵母結合水溶性殼聚糖對海紅果貯藏期失重率的影響Fig.1 Effect of antagonistic yeast combined with WSC on weight loss of circassian fruit during storage注:不同小寫字母表示差異顯著,(P<0.05),下同

2.2.2 腐爛率的影響

由圖2可知，CK1和CK2海紅果于貯藏第6天出現了不同程度的腐爛，CK2腐爛率顯著低于CK1(P<0.05)。隨WSC質量濃度的不斷增大，復合處理組果實腐爛率呈先降低后增加的趨勢，且從貯藏12 d開始均顯著增加(P<0.05)。當WSC質量濃度為10.00 g/L時的果實腐爛率最低，且僅在貯藏的第15天出現了腐爛現象，腐爛率顯著低于其他組，較CK2提高88.42%，較CK1提高92.89%(P<0.05)；其次，果實腐爛率較低的是7.50 g/L WSC復合處理組，該組在貯藏12 d開始也顯著低于其他3個復合處理組(P<0.05)。以上結果表明，拮抗酵母的單獨使用，或與WSC結合使用，均能顯著抑制灰葡萄孢的侵染，進而降低果實的腐爛率，延長貯藏壽命，且結合處理組的抑菌效果更好。原因是C.laurentii能對多種引起水果腐爛的病原微生物產生抑制作用，但其不能隔離病原微生物，這一缺點剛好被WSC所彌補,WSC在水果表面形成的可食性保護膜隔離了病原微生物，使得C.laurentii迅速繁殖，成為優勢菌群后更好地抑制了病原菌滋生[26-27]。因此WSC和拮抗劑酵母在抑菌方面表現出了協同效應。當拮抗酵母結合5.00～10.00 g/L WSC時的抑菌效果呈上升趨勢，WSC質量濃度繼續升高時開始下降，其中107CFU/mL的拮抗酵母與10.00 g/L WSC結合后的抑菌效果最佳。分析原因可能是拮抗酵母均來源于果實表面，因此屬好氧或微好氧型真菌，WSC質量濃度太大，包裹于果實表面，嚴重地阻斷了酵母菌代謝對O2的需求，因此抑制了酵母菌的定殖和繁殖，反而減弱了對病原菌的拮抗作用。

圖2 拮抗酵母結合水溶性殼聚糖對海紅果貯藏期腐爛率的影響Fig.2 Effect of antagonistic yeast combined with WSC on decay rate of circassian fruit during storage

2.2.3 TSS含量的影響

TSS是指單糖、雙糖、有機酸等可溶性的有機物類小分子，能夠反映果實的成熟度，決定果實的口感，其含量高低也是決定果實貯藏品質的重要指標[28]。如圖3所示，TSS隨貯藏時間的延長，整體含量呈下降趨勢，且較為平緩。整個貯藏期，CK2海紅果TSS含量始終略高于CK1，差異均不顯著(P> 0.05)，這表明拮抗酵母單菌處理對海紅果TSS含量的影響作用不明顯。這與毛淑波等[19]研究顯示的采前噴施C.laurentii對草莓TSS含量以及WEI等[4]研究表明的采后噴施C.laurentii對圣女果TSS含量影響均不顯著的結果相同。復合組與CK2相比，TSS含量在貯藏后期(第12天開始)均顯著高于CK1和CK2，但復合組間的TSS含量差異不顯著(P> 0.05)，其中WSC質量濃度在10.00 g/L時的復合處理組TSS含量始終略高于其他組。說明拮抗酵母與WSC復合處理時對TSS含量的降低有一定的減緩作用，這種緩減作用在貯藏前期不明顯，后期顯著。WANG等[29]研究結果也表明，西柚采后貯藏的8 d內，從貯藏的第6天開始，羧甲基殼聚糖與C.laurentii的結合處理組TSS的含量顯著性高于C.laurentii單獨處理組，與本試驗結果類似。說明拮抗酵母與WSC的結合在一定程度上能夠使果實的口感較好的保持，該試驗中，當WSC質量濃度為10.00 g/L時的復合處理效果最好。

圖3 拮抗酵母結合水溶性殼聚糖對海紅果貯藏期TSS含量的影響Fig.3 Effect of antagonistic yeast combined with WSC on TSS content of circassian fruit during storage

2.2.4 抗氧化酶活性的影響

2.2.4.1 SOD酶活性的影響

SOD屬于生物體內的抗氧化酶之一，保護生物組織免受活性氧損傷，該酶活性的高低反映了海紅果清除活性氧的能力。由圖4可知，海紅果貯藏期，SOD酶活性整體呈先增強后減弱的趨勢。CK1、CK2和15.00 g/L WSC復合處理組的SOD酶活性峰值在第9天出現，其他復合處理組的酶活性峰值均在第12天出現。整個貯藏期內，CK2組的SOD酶活性均顯著高于CK1(P<0.05)，表明單獨拮抗酵母菌處理海紅果能有效提高其SOD活性。與CK2相比，7.50 g/L WSC復合組的SOD酶活性均高于CK2，達到了顯著水平(P< 0.05)，且該處理組下的SOD酶活性始終處于最高水平，在貯藏第15天時，SOD酶活性是CK1的1.42倍，CK2的1.13倍；10.00 g/L和5.00 g/L WSC復合處理組的酶活性從貯藏第9天也顯著高于CK2(P<0.05)；12.50 g/L WSC復合處理組的SOD酶活性除在第12天顯著性高于CK2外，其他時間內均略高于CK2，差異不顯著(P> 0.05)；15.00 g/L WSC復合處理組與CK2相比，SOD酶活性整個貯藏期出現了負增長，差異不顯著(P> 0.05)。以上結果表明，與單獨拮抗酵母處理組相比，復合處理組中SOD酶活性受WSC質量濃度調控，其中，當WSC質量濃度為7.50 g/L時的果實SOD酶活性達到了最大。

圖4 拮抗酵母結合殼聚糖對海紅果貯藏期SOD酶活性的影響Fig.4 Effect of antagonistic yeast combined with chitosan on SOD activity of circassian fruit during storage

2.2.4.2 POD活性的影響

圖5 拮抗酵母結合殼聚糖對海紅果貯藏期POD活性的影響Fig.5 Effect of antagonistic yeast combined with chitosan on POD activity of circassian fruit during storage

2.2.4.3 CAT活性的影響

CAT功能和POD類似，可清除H2O2。由圖6可知，果實貯藏期CAT活性變化類似于SOD和POD，隨著貯藏時間的增加，也呈先增強后減弱趨勢，CK1酶活性峰值在第9天出現，其他組酶活性峰值均在第12天出現。整個貯藏期，CK2組CAT活性顯著高于CK1(P< 0.05)，說明拮抗酵母單獨處理能較好地提高海紅果CAT活性。復合處理組與CK2相比，WSC質量濃度在7.50 g/L和10.00 g/L時酶活性顯著高于CK2(P<0.05)，其中7.50 g/L WSC處理組的CAT活性最高，但與10.00 g/L WSC處理組相比差異不顯著(P>0.05)；5.00 g/L WSC處理組在貯藏第12天開始也顯著高于CK2(P<0.05)，當WSC質量濃度增高到12.50 g/L時的處理組與CK2相比，CAT活性略高于CK2，差異均不顯著(P>0.05)；當WSC質量濃度繼續升高到15.00 g/L時，處理組CAT酶活性較CK2出現了負增長，且從第6天開始較CK2顯著性降低。說明WSC質量濃度為7.50～10.00 g/L時，能有效誘導果實產生CAT酶，并維持其活性處于較高水平。

圖6 拮抗酵母結合殼聚糖對海紅果貯藏期CAT活性的影響Fig.6 Effect of antagonistic yeast combined with chitosan on CAT activity of circassian fruit during storage

2.2.5 MDA含量的影響

MDA是膜脂過氧化的產物，其含量的高低反映了海紅果在貯藏期組織細胞的衰老程度。由圖7可知，隨貯藏時間的延長，各組MDA含量均呈先降后升趨勢，在第9天時最低，之后逐漸上升。與CK1相比，CK2和復合組的MDA含量均顯著性降低(P<0.05)。復合組相比，在相同時間內，隨WSC質量濃度的增加，MDA含量呈先下降后升高的趨勢，當WSC質量濃度為7.50 g/L時，各處理組的MDA含量最低，該處理下的MDA含量在整個貯藏期均顯著低于其他處理組(P<0.05)。5.00 g/L和10.00 g/L WSC處理組的MDA含量在整個貯藏期也顯著低于CK2(P<0.05)，12.50和15.00 g/L WSC處理組分別在貯藏第9和12天開始顯著低于CK2(P<0.05)。以上結果表明，拮抗酵母單獨處理以及結合WSC復合處理均能顯著降低貯藏期海紅果的MDA含量(P<0.05)，當WSC質量濃度為7.50 g/L時，和拮抗酵母結合處理對延緩海紅果MDA積累的效果最佳。MDA 含量是毒性作用和保護作用的綜合反映[33]，充分地說明了7.50 g/L WSC復合處理組下的海紅果組織細胞內的綜合抗氧化能力很高，減少了MDA的累積。說明適度的WSC協同拮抗酵母，能夠較好地抑制膜脂過氧化的發生，減輕果實體內遭受逆境的傷害程度，從而延緩了果實的衰老，提高貯藏品質。

圖7 拮抗酵母結合殼聚糖對海紅果貯藏期MDA含量的影響Fig.7 Effect of antagonistic yeast combined with chitosan on MDA content of circassian fruit during storage

2.2.6 VC含量的影響

VC是一種抗氧化劑，可以清除果實體內活性氧和自由基，但其自身也很容易氧化。由圖8可知，隨貯藏時間的增加，VC含量整體呈下降趨勢。在海紅果貯藏前6 d，各組VC含量均無顯著性差異(P>0.05)。與CK1相比，CK2的海紅果VC含量在貯藏9 d之內略高于CK1，在第12和15天時，分別提高了1.27和1.17倍，達到了顯著水平(P< 0.05)，說明拮抗酵母單獨處理海紅果，使其在貯藏后期(第12天開始)仍能維持較高含量的VC。復合處理組的VC含量均不同程度地高于CK2，當WSC質量濃度為7.50～12.50 g/L時，貯藏的第9天開始VC含量均顯著高于CK2(P< 0.05)，5.00和15.00 g/L WSC處理組分別于第12和第15 天開始顯著(P< 0.05)性高于CK2。以上結果表明，拮抗酵母單獨處理和與WSC復合處理均能延緩海紅果VC的氧化速率，且復合處理的效果優于單獨處理，當WSC質量濃度在7.50～12.50 g/L時的復合處理對海紅果VC的降解有明顯的緩解作用。原因為較低質量濃度的WSC成膜過薄，對O2的隔離效果差，高質量濃度的WSC成膜過厚，完全阻隔了有氧呼吸，適宜質量濃度的WSC通過影響氣體交換，從而改變呼吸作用，提高果實的抗氧化能力，保持VC含量[34]。

圖8 拮抗酵母結合殼聚糖對海紅果貯藏期VC含量的影響Fig.8 Effect of antagonistic yeast combined with chitosan on VC content of circassian fruit during storage

3 結論

拮抗酵母能顯著降低采后海紅果果實內人工活體接種的灰葡萄孢霉引發的發病率和病斑直徑，其中，107CFU/mL是其最適濃度；107CFU/mLC.laurentii結合WSC處理采后海紅果，通過降低果實的發霉率、失重率和MDA含量，提高SOD、POD、CAT活性和VC含量來提升其貯藏品質，且單獨C.laurentii處理的效果遠不及其與WSC復合處理的效果好，其中，WSC質量濃度在7.50～10.00 g/L時的復合處理效果好，如果將其商業化應用，考慮盡量降低生產成本，因此建議采用WSC的質量濃度為質量7.50 g/L。以上表明，在C.laurentii的基礎上，結合適宜質量濃度的WSC，能有效提升海紅果對病害的防御性能，延緩果實的后熟衰老，增強果實的耐受性，提高果實的貯藏品質。