朱建坡, 梁 冰
神經系統疾病常發生于中樞神經、周圍神經、植物神經系統,主要以運動、感覺和植物神經功能障礙為主要癥狀的疾病[1,2]。研究表明,絲裂原活化蛋白激酶(mitogen activated protein kinase,MAPK)信號通路與神經系統性疾病密切相關,抑制MAPK信號通路可以減少海馬神經元損傷和凋亡[3,4]。右美托咪定(dexmedetomidine,DEX)是一種α-2腎上腺素能受體激動劑,研究表明,DEX可減輕大鼠慢性神經病理性疼痛,抑制MAPK、磷酸化細胞外調節蛋白激酶(phosphoryltion of extracellular regulatory protein kinases,pERK)、磷酸化環磷腺苷效應元件結合蛋白(phosphoryltion of cAMP response element binding protein,pCREB)表達,推斷DEX通過調控MAPK/ERK-CREB通路對海馬神經元凋亡起保護作用[5]。本實驗通過對大鼠構建癲癇持續狀態(status epilepticus,SE)模型機構建立一種神經系統疾患,觀察DEX對SE大鼠行為及MAPK/ERK-CREB通路的影響,以初步探究DEX對SE大鼠海馬神經元凋亡保護作用。
1.1 實驗動物 健康Sprague-Dawley SPF級雄性大鼠40只,6~8周齡,體重200 g左右,由中國醫科大學附屬盛京醫院實驗動物中心提供,動物許可證號:2016PS260K。飼養條件:溫度(22±2)℃,濕度40%~70%,每籠5只,自由攝食飲水,常規飼養1 w進行實驗。本研究對于大鼠處理均符合實驗動物福利與倫理委員會原則。
1.2 試劑及儀器 DEX(國藥準字H20090248)購自江蘇恒瑞醫藥股份有限公司;Nissl染色試劑盒(貨號:WLA128)購自萬類生物有限公司,TUNEL試劑盒(貨號:C1086)購自碧云天生物技術研究所;GAPDH抗體(貨號:ab181602)、p-ERK抗體(貨號:ab79483)、p-CREB抗體(貨號:ab220798)、caspase-3抗體(貨號:ab13847)、Bax抗體(貨號:ab32509)、Bcl-2抗體(貨號:ab182858)均購自美國Abcam公司;毛果蕓香堿(貨號:MB5259)購自美侖生物有限公司;氯化鋰(貨號:L1110)、阿托品(貨號:AT100)購自美國Spectrum公司;地西泮(貨號:BZ2886)購自上海恪敏生物科技有限公司;辣根過氧化物酶標記的二抗(貨號:BHR101)購自北京博爾西科技有限公司;BCA蛋白濃度檢測試劑盒(貨號:P0010S)購自上海碧云天公司;蛋白電泳及電轉移裝置(型號:AU5800)購自北京市六一儀器廠;酶聯免疫分析儀(型號:EVO75)購自澳大利亞Techan公司;超低溫冰箱(型號:MDF-U32V)購自美國Thermo公司。
1.3 實驗方法
1.3.1 大鼠SE模型構建[6]及分組 大鼠SE模型構建:大鼠腹腔注射3 mmol/kg 氯化鋰,24 h后同一部位注射50 mg/kg毛果蕓香堿,觀察大鼠行為,根據癲癇發作Racine分級進行判斷,大于4級,表明癲癇模型點燃成功。發作持續15 min后腹腔注射1 mg/kg阿托品,40 min后給予10 mg/kg地西泮腹腔注射直至發作終止從而進行控制。將大鼠隨機分為正常對照組、陽性對照組、SE組、SE+DEX組,每組各10只。SE模型構建成功后,SE+DEX組大鼠腹腔注射1 μmol/L DEX;SE組、正常對照組腹腔注射同量0.9%氯化鈉液;陽性對照組大鼠腹腔注射1 μmol/L苯巴比妥,藥物干預24 h后留取標本。根據改良后Racine分級[7]:正常狀態,0級;出現雙目緊閉,面部細纖維肌束發生顫動(如耳朵和胡須等部位),伴隨吸氣動作,1級;出現點頭頻率,面部肌束顫動明顯,2級;前肢單肢發生抽搐,3級;前肢均發生陣攣,身體無直立,3.5級;前肢均發生陣攣,身體直立,4級;身體強直,伴隨肢體倒向一側,4.5級;出現強直陣攣,身體直立且背部倒地,5級。
1.3.2 動物行為學觀察 給藥后,對所有大鼠按Racine評分標準分別進行評分,每20 min作為一個評分時間點,連續觀測,監測120 min,記錄并計算各組大鼠Racine評分。
1.3.3 樣品采集 給藥24 h后,每組隨機抽取5只腹腔注射1%戊巴比妥鈉麻醉后,采用20 ml生理鹽水和4%多聚甲醛40 ml經心臟灌注,取腦后采用4%多聚甲醛浸泡過夜,大腦標本在4%多聚甲醛固定24 h進行常規脫水、透明、石蠟包埋,制備海馬組織蠟塊置于4 ℃冰箱保存。用石蠟切片機作冠狀切面連續切片,切片厚度約為4 μm,主要用于Nissl法和TUNEL法檢測。另將每組剩余5只大鼠常規麻醉后,迅速斷頭取腦組織,在4 ℃條件下鈍性分離大鼠雙側海馬組織,迅速置于液氮罐中保存,用于Western blot檢測。
1.3.4 Nissl法檢測細胞損傷 將1.3.3中制備石蠟切片于二甲苯、不同濃度乙醇中浸泡,1%甲苯胺藍染色40 min,后分色,脫水至透明后,封片,最后于顯微鏡下觀察并對尼氏陽性的細胞進行計數。
1.3.5 TUNEL法檢測細胞凋亡 將1.3.3中制備的石蠟切片于二甲苯、不同濃度乙醇中浸泡5 min后,用蛋白酶K室溫消化1 h后,按TUNEL試劑盒說明書將切片進行染色、終止反應、封片等,于熒光顯微鏡下觀察細胞凋亡數目。經TUNEL染色的陽性細胞呈棕黃色或棕褐色。
1.3.6 Western blot法檢測大鼠海馬組織中MAPK/ERK-CREB通路相關蛋白、凋亡相關蛋白表達 從液氮罐中取出海馬組織,然后按照1∶5(wt/vol)加入500 μl細胞裂解液用玻璃研磨器研磨海馬組織,裂解30 min后提取組織蛋白,離心取上清液即總蛋白,用BCA法檢測蛋白濃度后,進行SDS聚丙烯酰胺凝膠電泳,轉膜后加入一抗(MAPK、pERK、pCREB、caspase-3、Bax、Bcl-2、GAPDH抗體,1∶1500),4 ℃孵育過夜,次日洗膜后加二抗(1∶5000)室溫孵育2 h,TBST洗膜,加ECL發光液,在凝膠成像系統中拍照。

2.1 各組大鼠的行為學觀察 與正常對照組相比,SE、陽性對照組、SE+DEX組大鼠Racine分值顯著增加(P<0.05),與SE組相比,陽性對照組、SE+DEX組大鼠Racine分值顯著降低(P<0.05)(見表1)。

表1 各組大鼠Racine分值
與正常對照組比較*P<0.05;與SE組比較#P<0.05
2.2 各組大鼠海馬神經元損傷及凋亡情況
2.2.1 細胞損傷結果 正常對照組大鼠海馬區神經元邊緣清晰,排列整齊,胞漿中可見尼氏小體;SE組大鼠海馬區神經元缺失嚴重、排列松散,胞漿深淺不一,核仁消失或不明顯;陽性對照組、SE+DEX組,神經元缺失減少,排列較規律(見圖1)。對大鼠海馬神經元計數分析結果顯示,與正常對照組相比,SE組、陽性對照組、SE+DEX組大鼠海馬神經元數顯著減少(P<0.05);與SE組相比,陽性對照組、SE+DEX組大鼠海馬神經元數顯著增加(P<0.05)(見表2)。
2.2.2 細胞凋亡結果 SE組、陽性對照組、SE+DEX組大鼠海馬區神經椎體細胞固縮。TUNEL陽性細胞計數分析結果顯示,與正常對照組相比,SE、陽性對照組、SE+DEX組大鼠海馬區棕褐色陽性細胞顯著增加(P<0.05);與SE組相比,陽性對照組、SE+DEX組大鼠海馬區棕褐色陽性細胞顯著減少(P<0.05)(見圖2、表3)。
2.3 各組大鼠海馬組織中MAPK/ERK-CREB通路相關蛋白表達結果比較 與正常對照組相比,SE、陽性對照組、SE+DEX組大鼠海馬組織中MAPK、p-ERK、p-CREB蛋白表達量顯著升高(P<0.05);與SE組相比,陽性對照組、SE+DEX組大鼠海馬組織中MAPK、p-ERK、p-CREB蛋白表達量顯著降低(P<0.05)(見圖3、表4)。
2.4 各組大鼠海馬組織中凋亡相關蛋白表達結果比較 與正常對照組相比,SE、陽性對照組、SE+DEX組大鼠海馬組織中caspase-3、Bax、Bax/Bcl-2蛋白表達量顯著升高(P<0.05),Bcl-2蛋白表達量顯著降低(P<0.05);與SE組相比,陽性對照組、SE+DEX組大鼠海馬組織中caspase-3、Bax、Bax/Bcl-2蛋白表達量顯著降低(P<0.05),Bcl-2蛋白表達量顯著升高(P<0.05)(見圖4、表5)。


組別例數海馬神經元數量(個)正常對照組SE組陽性對照組SE+DEX組5555145.32±5.1262.14±4.01*73.12±4.12*#76.45±3.98*#
與正常對照組比較*P<0.05;與SE組比較#P<0.05


組別例數海馬區凋亡細胞數量(個)正常對照組SE組陽性對照組SE+DEX組55551.32±0.0215.32±1.13*12.24±1.10*#11.86±1.08*#
與正常對照組比較*P<0.05;與SE組比較#P<0.05

表4 各組大鼠海馬組織中MAPK/ERK-CREB通路相關蛋白表達結果
與正常對照組比較*P<0.05;與SE組比較#P<0.05

表5 各組大鼠海馬組織中凋亡相關蛋白表達結果
與正常對照組比較*P<0.05;與SE組比較#P<0.05

a:正常對照組;b:SE組;c:陽性對照組;d:SE+DEX組
圖1 各組大鼠海馬神經元Nissl染色圖

a:正常對照組;b:SE組;c:陽性對照組;d:SE+DEX組

a:正常對照組;b:SE組;c:陽性對照組;d:SE+DEX組
圖3 各組大鼠海馬組織中p-ERK、p-CREB蛋白表達圖

a:正常對照組;b:SE組;c:陽性對照組;d:SE+DEX組
圖4 各組大鼠海馬組織中凋亡相關蛋白表達圖
神經性疾病發生會引起患者癱瘓、共濟失調、肌萎縮側索硬化、頭痛、反射異常、肌萎縮、排尿、排糞、性功能障礙等癥狀。SE屬于神經性疾病,是由多種病因共同引起的一種慢性腦部疾病[8]。隨著社會發展、飲食習慣變化,神經性疾病的發病率逐年升高,嚴重影響人們的身體健康和生活質量[9]。臨床上對于神經性疾病治療,多以藥物控制為主,但目前藥物對智力、運動功能、情緒等方面造成嚴重的副作用,因此找尋找新的藥物對神經性疾病的治療具有重要意義。DEX主要是作用于中樞神經及周圍神經系統,有鎮靜、鎮痛、抑制交感神經活動等作用,臨床多與鎮靜、鎮痛藥物聯合使用進行麻醉[10],最近有研究表明DEX對SE有良好的治療作用[11]。本研究通過觀察各組大鼠的行為學發現,與正常對照組相比,SE、陽性對照組、SE+DEX組大鼠Racine分值顯著增加;與SE組相比,陽性對照組、SE+DEX組大鼠Racine分值顯著降低,提示SE大鼠模型構建成功,DEX對SE大鼠有一定治療作用。SE是一種以中樞神經功能障礙為特征的腦部疾病,由于海馬區的腦神經元過度興奮,持續頻繁的興奮會造成腦內神經遞質等化學物質發生病變所引起的。丁秀芳等[12]研究發現,SE可導致海馬區神經元損傷。本研究發現,與正常對照組相比,SE組、陽性對照組、SE+DEX組大鼠海馬區神經元缺失嚴重,核仁消失或不明顯,神經椎體細胞固縮,大鼠海馬神經元數顯著減少,海馬區棕褐色陽性細胞顯著增加,提示SE發生會引起海馬神經元數減少,海馬神經元凋亡增加。研究表明,DEX可以抑制海馬神經元損傷[13]。本研究發現,與SE組相比,陽性對照組、SE+DEX組大鼠海馬神經元數顯著增加,海馬區棕褐色陽性細胞顯著減少,提示DEX可以抑制海馬神經元數減少和海馬神經元凋亡。
caspase-3是一種剪切酶,在細胞凋亡中不可缺失,Bax屬于Bcl-2家族,是凋亡促進基因,Bcl-2是抗凋亡基因,Bax可以與Bcl-2形成二聚體結構[14]。早期研究發現,Bax/Bcl-2比例可以表明細胞凋亡的強弱,本研究發現,與正常對照組相比,SE、陽性對照組、SE+DEX組大鼠海馬組織中caspase-3、Bax、Bax/Bcl-2蛋白表達量顯著升高,Bcl-2蛋白表達量顯著降低,提示caspase-3、Bax、Bcl-2蛋白表達與細胞凋亡密切相關。研究表明,降低海馬區Bax、caspase-3表達,提高Bcl-2表達,DEX可以抑制AD大鼠海馬區內細胞凋亡[15,16]。本研究發現,與SE組相比,陽性對照組、SE+DEX組大鼠海馬組織中caspase-3、Bax、Bax/Bcl-2蛋白表達量顯著降低,Bcl-2蛋白表達量顯著升高,提示DEX可能通過抑制caspase-3、Bax表達,促進Bcl-2蛋白表達,抑制細胞凋亡。
MAPK家族主要作用是將細胞外信號傳導到細胞內部與ERK1/2在腦部海馬區發揮重要作用[17]。ERK通路可以激活CREB使其發生磷酸化,調控神經元發育、興奮、凋亡等過程[18]。本研究發現,與正常對照組相比,SE、陽性對照組、SE+DEX組大鼠海馬組織中MAPK、p-ERK、p-CREB蛋白表達量顯著升高,提示MAPK、p-ERK、p-CREB蛋白表達與SE發生密切相關。研究表明,抑制MAPK信號通路對海馬神經元毒性損傷起到一定的保護作用[19]。本研究發現,與SE組相比,陽性對照組、SE+DEX組大鼠海馬組織中MAPK、p-ERK、p-CREB蛋白表達量顯著降低,提示DEX可以抑制MAPK、p-ERK、p-CREB表達,推測DEX可能通過抑制MAPK/ERK-CREB通路抑制海馬神經元凋亡,對海馬神經元損傷發揮保護作用。
綜上所述,DEX可能通過抑制MAPK/ERK-CREB通路抑制海馬神經元凋亡,對其發揮保護作用。需進一步研究DEX調控MAPK/ERK-CREB通路治療神經性疾病有效性及其調控其他信號通路的可能作用機制。