雍 婕,高 晗,吳永堯,周海燕
(湖南農業大學 生物科學技術學院,湖南 長沙 410128)
甘露聚糖酶是一種被廣泛應用于醫藥、造紙、紡織印染、食品、飼料工業及石油開采等各個領域[1-6]的半纖維素酶。Man1602是本實驗室自行篩選獲得的高活力甘露聚糖酶,同時具有很強的纖維素降解能力,是具有良好應用價值的雙功能酶。為了提高Man1602的表達量,進一步提高其活力和穩定性,筆者試圖揭示與Man1602功能相關的結構特點,并從分子水平對Man1602進行改造。本研究擬分析色氨酸殘基與Man1602酶活力的關系,探討Man1602與底物結合的位點,旨在為尋找分子改造位點打下基礎。
甘露聚糖酶Man1602,由本實驗室制備;二甲基(2-羥基-5-硝基芐基)溴化锍、甘油、溴酚藍、甲醇、乙酸、氨水、檸檬酸、甲醛、NaOH 和 HCl,為國產分析純試劑;AgNO3、SDS、Tris、丙烯酰胺、甲叉雙丙烯酰胺、甘氨酸,為Sigma公司產品;DNA分子標樣及DNA片段克隆試劑盒,購自天根生化科技有限公司;QuikChange?定點突變試劑盒,購自MERCK公司;蛋白質marker、限制性內切酶和T4 DNA連接酶,均為TaKaRa公司產品;B.subtilisWB600,購自CICIM;引物合成通過上海生工完成;測序通過上海英駿生物技術有限公司完成。
培養基配置:spA,0.4 g/dL硫酸銨,2.8 g/dL磷酸氫二鉀,1.2 g/dL磷酸二氫鉀,0.2 g/dL檸檬酸鈉;spB,0.04 g/dL硫酸鎂;100*CAYE,2 g/dL酪氨酸,10 g/dL 酵母膏;sp1,9.8 mL spA,9.8 mL spB,200 μL葡萄糖(50%,質量體積比),200 μL 100*CAYE;sp2,5.88 mL sp1,60 μL 氯化鈣(250 mmol/L),60 μL氯化鎂(250 mmol/L)。
1.2.1 酶的熒光光譜分析 使用970CRT型熒光分光光度計,激發波長為280 nm,激發和發射光譜譜寬均為5 nm,發射波長掃描范圍為250~400 nm,測定甘露聚糖酶與底物結合前后的熒光光譜變化。催化反應底物為0.1 g/dL的葡甘聚糖,反應溫度30℃,反應時間10 min。
1.2.2 甘露聚糖酶Man1602的色氨酸修飾反應參照文獻[7]進行,用連四硫酸鈉將甘露聚糖酶的巰基氧化保護起來,再用二甲基(2-羥基-5-硝基芐基)溴化锍特異修飾甘露聚糖酶上的吲哚基,在反應結束后分離去除未反應的試劑并還原SH,并測定殘余活力。反應的緩沖系統為PBS pH 6.5,修飾劑最高濃度為2.5 mmol/L。
1.2.3 酶活力的測定 采用DNS法,參照文獻[8]進行,一個活力單位相當于測定條件下每分鐘釋放出1 μmol甘露糖的酶量。
1.2.4 測定化學修飾反應的動力學參數,對色氨酸與酶功能的關系作初步判斷 以終濃度為3.2、10、32、100、320、1000 μmol/L 的二甲基溴化锍在 30 ℃下分別與甘露聚糖酶作用 10、20、30、40 min 后,以色氨酸終止反應,并測定殘余酶活。然后以不加修飾劑的緩沖液作對照,計算相對酶活。相對酶活的對數對反應時間作圖所得直線的斜率為一級反應常數,由一級反應常數的對數對修飾劑濃度的對數作圖,所得直線的斜率為二級反應常數。
1.2.5 總DNA和質粒DNA的制備 具體方法參照文獻[9]。
1.2.6 目的基因的克隆、回收與純化以及與載體的連接和轉化 按照相應的試劑盒說明書進行。
1.2.7 Man1602基因表達質粒的構建 如圖1所示。用XbaI和SphI分別雙酶切目的基因,與表達載體pWB980形成粘性末端后將兩者連接。

圖1 pWB980-man表達質粒的構建圖Fig.1 Construction spectrum of pWB980-man
1.2.8 枯草桿菌感受態細胞制備 參照文獻[10]進行。適量單菌落過夜培養物轉接于5 mL的sp1培養基中,37℃,200 r/min培養5 h,達到對數生長末期,取200 μL轉接于2 mL的sp2培養基中,37℃,150 r/min培養 1.5 h,加入 20 mL的 EDTA(pH 8.0),37 ℃,100 r/min培養 10 min,然后加入適量的重組質粒,37℃,200 r/min培養1.5 h,于篩選平板培養基上進行鑒定。
1.2.9 甘露聚糖酶的定點突變的測定 參照QuikChange?定點突變試劑盒說明書進行。設計的6對正反向引物序列分別為:
P15’-AATGAACGGCGAGCATTTCTGGTGG GGGC-3’
P25’-GCCCCCACCAGAAATGCTCGCCGTTC ATT-3’
P35’-AATGAACGGCGAGGCCTTCTGGTGG GGGC-3’
P45’-GCCCCCACCAGAAGGCCTCGCCGTTC ATT-3’
P55’-CGGCGAGTGGTTCCATTGGGGGCTGA CAG-3’
P65’-CTGTCAGCCCCCAATGGAACCACTCG CCG-3’
P75’-CGGCGAGTGGTTCGCCTGGGGGCTG ACAG-3’
P85’-CTGTCAGCCCCCAGGCGAACCACTCG CCG-3’
P95’-CGAGTGGTTCTGGCATGGGCTGACAG GCT-3’
P105’-AGCCTGTCAGCCCATGCCAGAACCA CTCG-3’
P115’-CGAGTGGTTCTGGGCCGGGCTGACA GGCT-3’
P125’-AGCCTGTCAGCCCGGCCCAGAACCA CTCG-3’
—:突變位點
克隆得到的突變質粒分別為 Man(W196H)、Man(W196A)、Man(W198H)、Man(W198A)、Man(W199H)和 Man(W199A)。
1.2.10 表達產物的SDS電泳檢測 參照文獻[11]進行,濃縮膠3 g/dL,分離膠7.5 g/dL,銀染法染色。
天然狀態Man1602的發射光譜圖顯示最大峰值位于336 nm處,光譜特征表現為色氨酸的特征,當與底物結合后,光譜峰藍移至330 nm處,且熒光強度略增強(圖2),說明色氨酸是活性必需氨基酸,且位于酶蛋白分子內部的疏水區域。

圖2 Man1602的熒光光譜Fig.2 Fluorescence spectrogram of Man1602
在二甲基溴化锍的修飾反應中,當修飾劑濃度達到最高時,酶的活力降低了近90%,可見二甲基溴化锍對該酶活性具強烈的抑制作用(圖3)。與底物保護組結果對比顯示加入底物對酶有良好的保護效果,酶活僅降低了不到10%。

圖3 二甲基溴化锍修飾對酶活的影響Fig.3 Effect of Dimethyl-sulfonium bromide on Man1602 activity
用不同濃度的二甲基溴化锍修飾甘露聚糖酶,一定時間后測定相對酶活,做酶反應的動力學分析,以相對酶活的對數對時間作圖并計算一級反應常數(圖4(a)),一級反應常數對二甲基溴化锍濃度雙對數作圖并計算二級反應常數(圖4(b))。
色氨酸殘基在0~20 min內的修飾反應過程為一級反應階段,此階段曲線的斜率對二甲基溴化锍濃度的雙對數圖中的曲線斜率為1.98,表明該酶中有2個色氨酸為活性必需基團。

圖4 二甲基溴化锍修飾反應動力參數關系Fig.4 Parameters of modified reaction of Dimethylsulfonium bromide
根據Man1602氨基酸序列的比對情況來看,有3個位點的色氨酸具有較高的保守性,它們是W196、W198和W199。為了確定哪個是酶活性的必需氨基酸,對這3個位點進行了定點突變,因前者和色氨酸疏水常數相近,而側鏈結構相差很大,其中同一位點分別突變為丙氨酸和組氨酸;后者則為帶電性的氨基酸,可以通過比較這2種突變體,發現色氨酸的疏水性和側鏈結構哪個是酶活性的主導因素。
在重組質粒pWB980-man中引入突變后,用XbaI和SphI進行雙酶切,電泳檢測后送出測序,結果顯示點突變被成功引入(圖5)。
各種突變體都能表達分子量約40×103的目的蛋白(圖6),對表達產物進行活力測定,與未引入突變的重組酶相比,196和199位的色氨酸被其他殘基取代后酶的活力幾乎喪失,而198位的色氨酸則對酶活力影響不太明顯,但是殘基疏水常數的改變可以導致酶活的明顯差異(圖7)。

圖5 突變體質粒的酶切片段電泳圖及突變位點基因序列Fig.5 Electrophoretogram of mutant plasma digested and genic sequence of mutation site

圖6 甘露聚糖酶Man1602點突變體的SDS-PAGEFig.6 SDS-PAGE of site-directed mutant enzyme Man1602
W196和W199的突變造成Man1602活力幾乎喪失,可以推斷兩者為Man1602的活性中心氨基酸,W198雖然不會使酶完全失活,但它是保持活性中心疏水環境的重要殘基,將W198突變為A和突變為H所導致的酶活下降程度不同,丙氨酸的疏水常數與色氨酸接近,而組氨酸則為極性氨基酸,會使活性中心附近的結構發生微小變化,造成酶活力的損失。

圖7 甘露聚糖酶Man1602突變體的活力比較Fig.7 Comparison of mutant Man1602 activity
色氨酸是在酶活性中心出現頻率較高的殘基之一,經常作為活性中心的底物結合位點,在不少多糖水解酶的研究中都發現色氨酸與酶活密切相關[12-14]。
Man1602的熒光光譜特征表現為色氨酸,屬于B型蛋白,本研究中利用定點突變法確定W196和W199是酶活性中心的殘基,均位于分子內部的疏水區,從改變W198位點的極性會使酶活力大幅度下降這一現象來看,活性中心周圍的疏水基團對酶的穩定性具有重要作用,如果將活性中心附近的極性基團突變為疏水基團可能有利于Man1602的穩定。
Man1602中的W196和W199與E191在空間結構上相互靠近,形成酶的活性中心,此中心區域的附近還有一個絕對保守的殘基G194,與活性部位的柔性密切相關,此研究結果將另文報道。