miRNA-138靶向調控細胞周期蛋白D3及波形蛋白影響肝癌細胞的增殖及遷移*

王保永，夏艷麗，肖鴻麗，閆一帆，趙巧飛，張 瑜，陳宏偉

(鄭州大學附屬洛陽中心醫院消化內科，河南洛陽 471000)

miRNA是一類短的(18～25核苷酸)非編碼RNA,可結合到靶基因并導致目標mRNA降解或翻譯抑制使靶蛋白的表達水平降低[1-2]。miR-138在膽囊癌[3]、食道癌[4]等腫瘤中發揮抑瘤作用。肝癌細胞中miR-138被證實可直接靶向波形蛋白mRNA上或下調細胞周期蛋白D3(CCND3)及波形蛋白[5-6]，提示其在肝癌發生和發展中可能起著重要作用，但miR-138如何影響肝癌細胞的遷移及入侵尚未明確。本試驗旨在研究miR-138如何通過波形蛋白和CCND3對肝癌細胞的遷移及增殖發揮作用，現將研究結果報道如下。

1 資料與方法

1.1一般資料

1.1.1研究材料 選取22例肝癌組織和癌旁組織作為研究材料，包括11例組織病理學確診的肝癌組織及11例相應的癌旁組織。其中，男7例，女5例，平均年齡57.3歲。標本保存于-80 ℃待用。所有患者術前未進行過放、化療等抗腫瘤治療，并簽署知情同意書。本研究已經通過了本院醫學倫理委員會的審批。肝癌細胞系HepG2、HHCC、HUH7、BEL-7402及正常肝細胞系HL-7702均從美國菌種保藏中心(ATCC)購買。

1.1.2試驗試劑及器材 研究中所使用的miR-138 RT-PCR引物委托上海生工生物有限公司進行合成。引物序列如下，miR-138：上游引物5′-ACACTCCAGCTGGGAGCTGGTGTTTGAATCA-3′，下游引物5′-CTCAACTGGTGTCGTGGAGTCGGCAATTCAGTTGAGC GGCCTG-3′。靶向miR-138的模擬物和抑制劑：委托廣州銳博生物公司進行設計并合成。序列如下,miR-138模擬物(mimics)：5′-AGCTGGTGTTGTGAATCAGGCCG-3′；miR-138抑制劑(inhibitor):5′-CGGCCUGAUUCACAACACCAGCU-3′。

主要試劑：SYBR Premix Ex TaqTMⅡ購自大連寶生物公司；RNeasy Plus Micro Kit購自美國QIAGEN公司；SuperScript?Ⅳ試劑盒、脂質體2000購自美國Invitrogen公司；二喹啉甲酸(BCA)蛋白定量試劑盒購自美國Thermo Fisher Scientific公司；聚偏二氟乙烯(PVDF)膜購自德國Millipore公司；抗CCND3一抗、抗波形蛋白一抗及goat anti-rabbit 免疫球蛋白G(IgG)-辣根過氧化物酶(HRP)二抗購自美國Abcam公司；ECL化學發光劑購自美國Thermo Fisher Scientific公司；Dulbecco′s Modified Eagle 細胞培養基、胎牛血清(FBS)購自美國Gibco公司。

1.2方法

1.2.1細胞培養及轉染 正常肝細胞系HL-7702及肝癌細胞系HepG2、HHCC、HUH7和BEL-7402均采用DMEM培養基培養，在培養基中添加10% FBS,100 U/mL青霉素及100 μg/mL鏈霉素，并將細胞置于含5%CO2,濕度為95%的細胞培養箱于37 ℃條件下培養。行轉染操作前24 h，將細胞覆蓋在不含抗生素的500 μL生長培養基上，從而使得細胞在進行轉染操作時達到30%～50%的融合；按照LipofectamineTM2000的說明書所述步驟進行操作。分別將空脂質體(作為對照)、模擬物及抑制劑轉染至HepG2肝癌細胞。

1.2.2RT-PCR 試驗應用RNeasy Plus Micro Kit試劑盒對癌旁肝組織、肝癌組織及細胞的總RNA進行提取。應用SuperScript?Ⅳ試劑盒將RNA進行反轉錄。反應條件：65 ℃ 5 min，50 ℃ 10 min，80 ℃ 10 min。1 μL RNA酶，37 ℃ 20 min孵育后,去除RNA。產物用于下一步PCR反應。采用SYBR Premix Ex TaqTMⅡ試劑盒行RT-PCR檢測miR-138的表達。反應條件：95 ℃ 5 min,95 ℃ 5 s,60 ℃ 60 s，4 ℃保溫，共進行40個循環。采用 2-ΔΔCt法分析各基因miR-138表達，反應設置3個無模板的陰性對照，計算循環閾值(Ct)，并以U6為內參計算標準化Ct值，即ΔCt=CtmiR-138-CtU6。為了方便計算，miR-138的表達水平以2-ΔΔCt計算。

1.2.3Western blot 采用Western blot的方法檢測波形蛋白 和 CCND3的表達。離心收集細胞，在細胞中加入RIPA buffer細胞裂解液，反復離心收集上清液。利用牛血清清蛋白(BCA)試劑盒對所得上清液中總蛋白水平進行測定。行BSA蛋白標準曲線構建及樣品蛋白濃度測定；通過十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺(SDS-PAGE)凝膠電泳分離蛋白后轉移至硝酸纖維素膜上，轉膜及抗體孵育后，按照ECL化學發光試劑盒說明書對PVDF膜進行發光顯色。

1.2.4細胞增殖活性檢測 向96孔反應板中注入細胞懸浮液(每孔100 μL)。將孔板置入潮濕環境中(37 ℃,5%CO2)進行預培養?？装逯懈骺滋砑?0 μL CCK-8溶液并孵育1～4 h。使用酶標儀測定各樣品的光密度值(OD值，450 nm)。利用EdU試劑盒對細胞活力進行測定。種適當數量細胞，用DMEM完全細胞培養基培養過夜，并用DMEM細胞培養液稀釋EdU溶液(1∶1 000)。按照試劑盒說明書測試并行熒光顯微鏡觀察。

1.2.5細胞創傷愈合試驗 將一定密度的細胞接種至24孔細胞培養板并培養24 h直至達到70%～80%融合度，運用滅菌的200 μL移液槍槍頭在培養基表面劃痕。沖洗脫落細胞，孔板添加新鮮培養基并培養細胞48 h。磷酸鹽緩沖液(PBS)清洗細胞2次，固定后顯微鏡觀察不同視野的單層細胞，拍照后劃痕距離應用ImagJ軟件進行測量并計算均值及方差。

1.2.6細胞遷移試驗 將傳代2～3次且80%融合的細胞在適宜的無血漿培養基中培養18～24 h，使用無菌PBS清洗細胞2次。進行離心操作并獲得細胞沉淀(1 500 r/min,10 min)。重懸細胞并進行細胞計數，使得細胞數量為(0.5～1.0)×106/mL。用鉗子夾取Transwell小室，往Transwell小室中添加300 mL上述細胞懸浮液，下室中則加入500 mL不含血漿的培養基，37 ℃條件下在5%CO2培養室培養24 h。用移液槍從上室中剩余的細胞懸浮液吸出，將Transwell小室移入含400 μL 細胞染色液的潔凈孔板內，室溫培養20 min，多次漂洗Transwell小室，用1根棉簽拭子將Transwell小室里側的非滲移性細胞層輕輕擦除。將染色的Transwell小室轉入內含200 μL 提取緩沖液的清潔孔板內，輕輕搖晃傾斜Transwell小室，重復10次，盡量將染色的細胞從其底部取出，并將Transwell小室從孔板內移出。100 μL 細胞懸液轉入適于比色測定的96孔微量滴定板中，在顯微鏡的明亮視野中對陽性細胞進行觀察計數。

2 結 果

2.1miR-138 mRNA在肝癌組織及癌旁組織中的表達 RT-PCR檢測肝癌組織及癌旁組織中miR-138表達顯示，與癌旁組織相比，miR-138的mRNA在肝癌組織中的表達水平明顯降低(P<0.01)，見圖1。

2.2miR-138 mRNA在正常肝細胞系及肝癌細胞系中的表達 與正常肝細胞系HL-7702相比，miR-138的mRNA表達水平在肝癌細胞系HepG2、HUH7、HHCC及 BEL-7402中均明顯降低(P<0.01)，見圖2。

圖2 正常肝細胞系及肝癌細胞系中的miR-138 mRNA表達水平

圖3 miR-138 mimics和inhibitor干擾后miR-138的表達水平

圖4 CCK-8法檢測干擾miR-138后的肝癌細胞活力

2.3miR-138 mimics及inhibitor對肝癌細胞系miR-138的表達的影響 與對照相比，當轉染miR-138 inhibitor，miR-138的表達顯著降低(P<0.01)；轉染miR-138 mimics時miR-138的表達顯著升高(P<0.01)，見圖3。

A：各組細胞創傷愈合能力比較；B:各組細胞遷移能力比較

圖6 干擾miR-138的肝癌細胞遷的柱狀圖

A：Western blot蛋白圖；B:各組波形蛋白和CCND3的蛋白表達量柱狀圖

圖7 Western blot檢測結果

2.4CCK-8法檢測干擾miR-138的肝癌細胞活力 當類似物轉染72 h后，相較于對照，HepG2細胞的增殖能力降低(P<0.01)；當miR-138 inhibitor轉染72 h后，HepG2細胞的增殖能力升高(P<0.01)，見圖4。

2.5干擾miR-138對肝癌細胞遷移的影響 當miR-138 mimics 轉染HepG2細胞，相較于對照，HepG2細胞的創傷愈合能力較弱，遷移能力明顯降低(P<0.01)；當miR-138 inhibitor 轉染HepG2細胞，相較于對照，HepG2細胞的創傷愈合能力增強，遷移能力明顯升高(P<0.01)，見圖5、6。

2.6干擾miR-138的miR-138相關靶蛋白的表達水平比較 Western blot結果表明，當miR-138 mimics轉染HepG2細胞，相較于對照，波形蛋白和CCND3的表達水平降低(P<0.01)；當miR-138 inhibitor 轉染時，波形蛋白和 CCND3的表達水平升高(P<0.01)，見圖7。

3 討 論

miRNA是具有內源性、進化保守性，天然大量存在且相對穩定的短鏈(約22個核苷酸)非編碼RNA分子，在多數生物學及病理學過程中的后轉錄階段發揮了基因調控的作用[7]。研究表明，大約30%的蛋白質的編碼基因受miRNA的調控，通過堿基互補原則結合到目的mRNA上或通過結合到5′端非翻譯區(3′UTR)的非互補位點上并進行進一步的調控，從而在翻譯水平上控制基因的表達[7]。據統計，超過45 000個miRNA結合位點存在于人類的3′UTR，并且超過60%的人類蛋白質編碼基因可能受多個miRNA調控[8]。miRNA在細胞核中被RNA聚合酶Ⅱ或Ⅲ轉錄成為長鏈的、加帽的聚腺苷酸前體，被稱之為初級微小RNA(pri-miRNA)。核輸出受體輸出蛋白5/Ran GTP將miRNA前體運輸到細胞質中[9],然后被RNase Ⅲ內切酶Dicer沿著轉錄活性相應的RNA結合蛋白(TRBP)進行進一步加工，成為22個核苷酸雙鏈RNA結構[9]。這個miRNA復合體被解離為成熟的單鏈形式，結合到RNA誘導的沉默復合體(RISC)上，該復合體可引導與目的mRNA的互補3′UTR端結合而發揮作用。

miR-138作為miRNA前體家族之一，可在多種癌癥中起抑瘤作用，比如喉癌[10]、口腔細胞癌[11]、結腸癌[12]、非小細胞肺癌[13]等。研究表明，在肝癌中miR-138表達下調并作用于CCND3，可誘導細胞周期停滯[5]，但其詳細的生物學機制尚未被完全闡明，miR-138影響肝細胞肝癌增殖、遷移和入侵機制仍需要繼續探索。本試驗結果提示，與癌旁組織及正常肝細胞系相比，miR-138表達在肝癌中和肝癌細胞系中明顯降低。當miR-138 mimics轉染肝癌細胞后，HepG2細胞的活力降低，創傷愈合能力較弱，遷移能力明顯降低，經Western blot檢測，波形蛋白和CCND3的表達水平降低。轉染miR-138 inhibitor后，HepG2細胞的增殖升高，肝癌細胞的創傷愈合能力和遷移能力提升，與此同時，波形蛋白和CCND3的表達水平升高。本試驗證實了通過調控miR-138在HepG2細胞中的表達可以調控肝癌細胞的增殖、遷移能力及創傷愈合能力，并進一步調節miR-138介導的信號通路，即miR-138通過調節其相關靶蛋白波形蛋白和CCND3的表達來達到調控肝癌細胞的增殖及遷移能力的目的。

波形蛋白是細胞骨架的主要組成成分，甚至被視為癌變過程中進行上皮間質轉化細胞的標記。在波形蛋白mRNA序列中可鑒定出3段miR-138的靶向序列。有研究表明，應用熒光素酶報告基因試驗證實了miR-138可直接靶向波形蛋白mRNA上[6]。細胞周期受細胞周期素依賴性激酶(CDK)家族和其活性分子(細胞周期素)的調控。細胞從G1到S期的相變最初受細胞周期素D家族成員(CCND1,CCND2和CCND3)與CDK4/CDK6復合體和細胞周期素E家族成員(CCNE1和CCNE2)與CDK2復合體的調控。已有兩項研究發現在鼻咽癌和HCC中miR-138可分別靶向CCND1及CCND3[5,14]，且發現在鼻咽癌和肝癌中miR-138的表達頻繁下調，CCND1和CCND3的表達與miR-138的表達成反比，并在進一步的試驗中證實了miR-138可直接特異靶向結合CCND3 mRNA[5]，以上研究均提示波形蛋白和CCND3在腫瘤細胞增殖中發揮重要的作用。本試驗證實，通過調節miR-138的表達，可調節波形蛋白和CCND3的表達，而波形蛋白與CCND3在細胞增殖活性發揮重要的作用，推測miR-138通過波形蛋白及CCND3進一步調節肝癌的進展。本試驗結果也證實了在調節miR-138表達后，肝癌細胞的增殖活性、細胞遷移能力發生了改變，該結果與推測一致，提示miR-138通過其靶基因波形蛋白和CCND3，可調節HepG2細胞的增殖活力及遷移能力。也有類似的研究表明DBH-AS1經由細胞內黏著斑激酶(FAK)/Src/細胞外信號調節蛋白激酶(ERK)途徑靶向miR-138促進肝癌的發生[15]。miR-138同時也可在學習記憶、心肌保護及骨生長等機制中發揮重要的作用[16-18]。

綜上所述，本研究果證實了miR-138是通過何種靶基因來達到對肝癌細胞的增殖、遷移、入侵的影響，結果提示miR-138可能是一個多功能的調節子，在HCC發展中起主要作用。因此，miR-138可能成為治療肝癌的靶基因位點，可抑制肝癌的侵襲。