李 睿,辛力華,張 青,張瓊芳,王 芳,任 然,熊大遷
耐藥菌株的出現給抗感染治療帶來極大困擾,細菌一旦對抗生素產生耐藥性且未經及時治療和控制,可導致患者間及患者與醫務人員之間出現交叉感染,甚至暴發流行[1-3]。肺炎克雷伯菌在自然界土壤、水源中分布廣泛,同時亦是人類腸道菌群的重要組成部分。當人體免疫力降低時,肺炎克雷伯菌可作為條件致病菌引起肺炎、腸炎、泌尿系統炎癥、敗血癥等多種類型的感染。碳青霉烯類抗生素因具有抗菌譜廣、抗菌活性強、β-內酰胺酶穩定性高、副作用小等優勢,被廣泛用于多重耐藥腸桿菌科細菌引起的嚴重感染,導致了碳青霉烯類耐藥腸桿菌科細菌誕生,尤以碳青霉烯類耐藥肺炎克雷伯菌(KPC)最常見[4-5]。由于可供選擇的抗生素范圍有限,其預防和感染控制難度較大,患者預后差、病死率高,現已引起了WHO的廣泛關注[6]。本研究收集了我院臨床分離的31株KPC進行藥敏試驗及耐藥表型、基因型檢測、同源性分析,旨在了解KPC耐藥情況及耐藥基因特點,為臨床抗感染治療及院感防控提供理論依據。現報告如下。
1.1菌株來源 收集我院2016年7月—2017年4月臨床標本中分離出的31株KPC納入試驗范圍,質控菌株包括大腸埃希菌ATCC25922、金黃色葡萄球菌ATCC25923、銅綠假單胞菌ATCC27853、肺炎克雷伯ATCC700603、肺炎克雷伯ATCCBAA-1705,肺炎克雷伯ATCCBAA-1706。
1.2實驗儀器與試劑
1.2.1實驗儀器:生物梅里埃VITEK 2-Compact全自動微生物鑒定/藥敏分析儀、BACT/ALERT 3D 60/120血培養儀、二氧化碳培養箱,生物安全柜,比濁儀、伯樂PCR儀、伯樂電泳儀、北京六一照交儀。
1.2.2實驗試劑:①AST-GN13藥敏卡,包括環丙沙星、左氧氟沙星、頭孢唑林、頭孢曲松、頭孢他啶、頭孢吡肟、四環素、氨曲南、阿莫西林/克拉維酸、氨芐西林、慶大霉素、阿米卡星、美羅培南、亞胺培南、哌拉西林、復方新諾明16種抗生素。美國Thermo Fisher的細菌基因組提取試劑盒和PCR MIX。②血平板、麥康凱平板、嗜血巧克力平板、普通巧克力平板、血培養瓶均為生物梅里埃公司產品。藥敏紙片英國公司Oxoid公司生產。
1.3細菌鑒定與藥物敏感性試驗 分離鑒定及藥敏試驗按照《全國臨床檢驗操作規程》[7]進行操作,所有菌株經法國梅里埃公司全自動微生物鑒定藥敏分析系統(VITEK 2-Compact全自動微生物鑒定/藥敏分析儀)進行鑒定。藥敏結果判定符合美國臨床實驗室標準委員會(CLSI-M100-S26)標準[8]。
1.4產碳青霉烯酶表型 按CLSI標準進行Hodge試驗,將配置所得麥氏度0.5的標準大腸埃希菌ATCC25922經無菌生理鹽水以1∶10比例稀釋后均勻涂于M-H瓊脂平板上,干燥3 min以后,將10 μg/片的厄他培南或美羅培南藥敏紙片貼于平板中央,待測菌株從藥敏紙片邊緣向平板邊緣畫線,長度20~25 mm,操作過程嚴格遵循無菌操作原則,置于35℃溫箱孵育過夜。產碳青霉烯酶陽性判定標準:被測菌株畫線與大腸埃希菌抑菌ATCC25922圈交叉處見到大腸埃希菌向藥敏紙片方向生長增強。
1.5細菌DNA模板制備 選擇3~6個新鮮菌落,滴加400 μl雙蒸水后振蕩均勻,沸水浴15 min,冰浴2 min后,離心10 min(轉速15 000 r/min),取上清液為細菌DNA模板,置于4~8℃冰箱保存。
1.6細菌耐藥基因PCR檢測 引物設計參照文獻[9]。引物由生物工程公司(上海)合成。見表1。PCR反應體系共50 μl,包括 25 μl的Taq PCR Master Mix,2 μl的上、下游引物,1 μl的待測菌DNA模板,20 μl的雙蒸水。反應參數:94℃預變性5 min,變性94℃ 1 min →退火1 min→72℃ 90s,循環35個周期 →72℃延伸10min。取10μl PCR反應產物經含4S Red plus的20 g/L瓊脂糖凝膠電泳,經凝膠成像系統觀察分析并拍照保存。

表1 引物序列及目的產物長度
1.7PCR產物測序分析 PCR產物提純后送生物工程公司(上海)測序,測序結果在NCBI網站用BLAST比對,確定基因型。
1.8ERIC-PCR同源性分析 PCR反應體系共25 μl,包括 0.4 μl 的5 U/μl Exp Tap,2.5 μl 的10×buffer,2 μl 的2.5 mmol/L dNTP,2μl上、下游引物,2μl待測菌DNA模板, 雙蒸水補足至25 μl。反應參數:94℃預變性3 min,變性94℃ 1 min →55℃ 1 min→72℃ 90 s,循環35個周期 →72℃延伸10 min。引物序列:R-ATGTAAGCTCCTGGGGATTCAC,F-AAGTAAGTGACTGGGGTGAGCG。擴增產物經瓊脂糖凝膠電泳45 min(90V),紫外凝膠成像儀拍照。統一基因型:擴增條帶完全相同;亞型:主條帶相同,副帶相差1或2條;不同基因型:條帶相差2條以上。
2.1菌株分布 31株KPC主要來源于重癥監護室,共19株,占61.29%;急診科6株,占19.35%;呼吸內科3株,占9.68%;腎內科、心內科、康復科各1株,占3.23%。
2.2藥敏試驗結果 所測KPC菌株對β-內酰胺類藥物100%耐藥,僅部分菌株對四環素、慶大霉素、阿米卡星、復方磺胺甲口惡唑表現敏感,敏感率分別為3.23%、9.68%、90.32%、67.74%。見表2。

表2 31株KPC藥敏試驗結果
2.3改良Hodge試驗結果 改良Hodge試驗結果發現31株KPC中29株均為陽性。
2.4PCR擴增結果及序列分析 30株肺炎克雷伯菌以KPC引物擴增出目的條帶,經測序及NCBI網站BLAST比對證實為blaKPC-2基因型;1株肺炎克雷伯菌以IMP11引物擴增出目的條帶,經測序及NCBI網站BLAST比對證實為blaIMP-1基因型。電泳結果見圖1。
2.5ERIC-PCR結果 ERIC-PCR擴增條帶2~4條,31株KPC可分為30株A1型(包含KPC-2基因)及1株A2型(包含IMP-1基因)。電泳結果見圖2。

圖1部分碳青霉烯類耐藥肺炎克雷伯菌PCR擴增產物電泳圖
M為Marker DNA2000,1~6為產blaIMP-1的肺炎克雷伯菌

圖2部分碳青霉烯類耐藥肺炎克雷伯菌ERIC-PCR擴增產物電泳圖
M為Marker DNA2000,1~17為碳青霉烯類耐藥肺炎克雷伯菌菌株
碳青霉烯類抗生素系治療多重耐藥菌感染的臨床常用β-內酰胺類抗生素,上世界90年代末碳青霉烯類抗生素進入國內市場,使用量迅速增長,但同時也導致了KPC的產生,給臨床疾病的治療帶來更大威脅。目前認為KPC產生機制與膜孔蛋白表達質/量的缺失合并及產碳青霉烯酶相關[10-11]。現已發現KPC1~17等16種亞型(KPC-1與KPC-2被證實為相同類型),其中以KPC-2及KPC-3最為常見[12-13]。本研究中31株肺炎克雷伯菌共有30株(96.77%)經測序證實為KPC-2,提示我院目前主要流行KPC-2,與國內外報道[14-16]的流行趨勢一致。本研究還發現KPC菌株主要集中于重癥監護室,提示該科室患者為KPC菌株感染高危人群,可能存在耐藥菌株,在一定條件下易導致院內傳播,應引起臨床重視,重點防控。
改良Hodge試驗結果是CLSI推薦的KPC基因型碳青霉烯酶篩查方法,本研究檢測結果與PCR檢測結果具有較高一致性,敏感性高達93.55%,2株KPC-2基因型Hodge試驗呈現出假陰性,其原因可能與被測菌株耐藥基因丟失或低水平表達相關。黃峰等[17]采用改良Hodge試驗與KPC基因檢測結果的符合率高達100%,提示改良Hodge試驗具有較高靈敏度,可用于疑似產碳青霉烯酶細菌的表型監測。李軻等[18]發現碳青霉烯酶肺炎克雷伯菌對大多數抗生素耐藥,僅氨基糖苷類、氟喹諾酮類、黏菌素等抗生素可在體外發揮抗菌效果。本研究藥敏試驗結果顯示,KPC菌株對環丙沙星、左氧氟沙星、頭孢唑林、頭孢曲松、頭孢他啶、頭孢吡肟、氨曲南、阿莫西林/克拉維酸、氨芐西林、美羅培南、亞胺培南、哌拉西林等β-內酰胺類藥物均100%耐藥,僅部分菌株對四環素、慶大霉素、阿米卡星、復方新諾明存在活性,這給臨床治療帶來極大困難,進一步探究發現這些細菌均源于ICU標本,疑有高度同源性。
ERIC-PCR方法操作簡單便捷,可作為實驗室大量菌株初步分型檢測的常用方法,同時本研究結果還可顯示我院存在克隆菌株流行趨勢。因此,臨床醫師應謹慎合理的選擇抗菌藥物的使用,加強KPC-2型碳青霉烯酶肺炎克雷伯菌的監測,防止耐藥性傳播。臨床科室做好醫院環境的消毒隔離,強化醫護人員無菌操作培訓教育,提高多重耐藥菌醫院感染控制的重視,減少醫院內交叉感染,有效防止耐藥菌株進一步蔓延擴散。
綜上所述,產KPC-2型碳青霉烯酶肺炎克雷伯菌耐藥程度較高,臨床治療較為棘手,感染患者預后差,應采取積極防控措施遏制其流行趨勢。