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豬皮膠原肽的抗氧化活性研究△

2018-09-03 09:25:24李婷于海濤金玉翠劉曉美李圓圓王常瞵吳明澤代龍高鵬
中國現(xiàn)代中藥 2018年8期

李婷,于海濤,金玉翠,劉曉美,李圓圓,王常瞵,吳明澤,代龍,高鵬

(山東中醫(yī)藥大學(xué) 藥學(xué)院,山東 濟南 250355)

氧化是所有生物體中必不可少的反應(yīng),氧化代謝過程中自由基的形成也是不可避免的。幾種慢性疾病如糖尿病、心血管疾病、神經(jīng)變性疾病和癌癥的發(fā)生或進展可能與自由基的過量生成有關(guān)[1-2]。目前,許多蛋白質(zhì)水解物及其分離的肽,如大豆蛋白[3]、牛蛙皮[4]、魚皮明膠[5]、雞蛋蛋白[6]、水稻胚乳蛋白和油菜籽蛋白[7]等均已被發(fā)現(xiàn)具有抗氧化活性。抗氧化肽可以有效清除機體過剩的自由基,保護細胞和線粒體的正常結(jié)構(gòu)和功能,在預(yù)防和治療自由基誘發(fā)的一些慢性疾病和抗衰老方面有廣泛的應(yīng)用前景[8]。

豬皮中膠原蛋白含量達到29%[9]。通過酶解豬皮膠原蛋白得到的酶解產(chǎn)物中具有多種生理活性的肽,其中抗氧化活性多肽由于安全、高效等特點,被用于食品及化妝品中[10]。因此進行豬皮膠原肽抗氧化性的研究具有重要的現(xiàn)實意義。目前,從豬皮中提取豬皮膠原的方法已十分成熟,常用提取方法包括堿提取、酸提取、酶解提取、熱水提取[11]。本研究直接以本實驗室前期優(yōu)化的酶解條件[12]進行提取,對其進行超濾分離純化,得到不同分子量肽段的膠原肽酶解液,濃縮冷凍干燥得到凍干粉,上述各組分與熱水提取得到的膠原蛋白進行抗氧化能力比較,為從豬皮中提取抗氧化肽提供參考依據(jù)。

1 材料與儀器

1.1 材料與試劑

新鮮豬皮(購于濟南家家悅超市),胃蛋白酶(批號:090505,酶活力:3000 U·mg-1,上海藍季科技發(fā)展有限公司);胰蛋白酶(批號:091105,酶活力:1500 U·mg-1,上海藍季科技發(fā)展有限公司);牛血清白蛋白(批號:140626-200608,中國食品藥品檢定研究院)。

1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH,批號:G1612053)、抗血酸(Vc,批號:A103537)均購自阿拉丁試劑(上海)有限公司;焦性沒食子酸、氫氧化鈉、無水碳酸鈉、硫酸銅、酒石酸鉀鈉、鎢酸鈉、鉬酸鈉、硫酸鋰、鹽酸均為分析純。

1.2 儀器

卷式超濾膜(1 kDa、3 kDa,北京市旭邦膜設(shè)備有限責(zé)任公司);FA2204B萬分之一電子天平(上海佑科儀器儀表有限公司);BT300-2J蠕動泵(保定蘭格恒流泵有限公司);真空冷凍干燥機(北京博醫(yī)康實驗儀器有限公司);HH-S4數(shù)顯恒溫水浴鍋(常州國宇儀器制造有限公司);UV-1800紫外可見分光光度計[島津儀器(蘇州)有限公司];電滲析器(滄州市眾邦水處理技術(shù)有限公司);高速離心機(上海精密儀器有限公司)。

2 方法與結(jié)果

2.1 不同分子量豬皮膠原肽的制備

取鮮豬皮,刮去脂肪層及血、肉等雜質(zhì),以剪刀剪成直徑小于2 mm、長度小于2 cm的碎塊,先用8倍量2%碳酸鈉溶液脫脂4 h,濾去堿液,水洗至中性,加8倍量水加熱煮沸15 min,勻漿3 min,待冷至約40 ℃,以25%鹽酸調(diào)pH至1.5~2.0,加入1.5%胃蛋白酶(3000 U·g-1),40 ℃保溫酶解2 h,以25%氫氧化鈉溶液調(diào)pH至7.5~8.0,加入2%胰蛋白酶(1000~1500 U·g-1),40 ℃保溫酶解4 h,酶解液加熱煮沸15 min,冰箱冷藏過夜,離心,取上清液,控制操作電壓為 30 V,上樣流速為50 L·h-1進行電滲析脫鹽處理。取部分脫鹽后的酶解液減壓濃縮(60~65 ℃,-0.07~-0.08 MPa)至相對密度為1.10~1.15(60 ℃),冷凍干燥后即得豬皮酶解原液凍干粉;將剩余脫鹽后酶解液先后用不同分子截留量(3、1 kDa)的超濾膜進行分離,分別得到M>3 kDa組分、1 kDa3 kDa、1 kDa

另取鮮豬皮,切成碎塊,脫脂后,加10倍量水煎煮提取2 h,過濾,取上清液,按上述條件冷凍干燥,得到豬皮水提液凍干粉。

2.2 各組分肽含量的測定

2.2.1 溶液的配制 堿性銅的制備:取氫氧化鈉1 g,碳酸鈉5 g,加水40 mL使溶解,作為甲液;取酒石酸鉀0.5 g,加水50 mL使溶解,另取硫酸銅0.25 g,加水30 mL使溶解,將兩液混合作為乙液。臨用前,取甲液40 mL、乙液8 mL,并加水至50 mL。

對照品溶液的制備:取牛血清白蛋白對照品適量,精密稱定,加水制成每 1 mL含0.2 mg的溶液,即得。

供試品溶液的制備:分別精密量取2.1項下各組分凍干粉50 mg,置 100 mL量瓶中,加水定容至刻度,搖勻,即得。

2.2.2 標準曲線的制備 精密量取牛血清白蛋白對照品溶液0.0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mL,分別置10 mL試管中,各加水至1.0 mL,分別加入堿性銅試液1.0 mL,搖勻,再分別加入福林酚試液(取儲備液稀釋16倍)4.0 mL,立即混勻,置55 ℃水浴中反應(yīng)5 min,取出,置冷水浴中冷卻10 min,照紫外-可見分光光度法,以0號管為空白,在650 nm波長處測定吸光度。以牛血清白蛋白含量為橫坐標,吸光度為縱坐標,繪制標準曲線,并計算線性回歸方程為Y=2.490 1X+0.038 5,r=0.999 5。

2.2.3 供試品測定 精密量取供試品溶液1.0 mL,照標準曲線的制備項下自“加入堿性銅試液1.0 mL”起操作,依法測定吸光度,從回歸方程中計算各組分總肽的含量。豬皮各組分肽含量測定結(jié)果見表1。

2.3 不同分子量豬皮膠原肽體外抗氧化能力的測定

蛋白水解產(chǎn)物的分子量大小對其生理活性具有重要的意義,將2.1項下制備的樣品分別配制成質(zhì)量分數(shù)1%、0.8%、0.6%、0.4%、0.2%、0.1%的溶液,采用不同氧化機制測定不同分子量豬皮膠原肽的抗氧化能力,包括清除DPPH·活性、清除·OH活性、清除O2-·活性,分析抗氧化活性與分子量大小的關(guān)系。

2.3.1 不同分子量豬皮膠原肽組分對DPPH自由基清除能力測定 精確稱量4.10 mg DPPH,溶解到100 mL無水乙醇中,配制成濃度為6.5×10-5mol·L-1DPPH乙醇溶液。分別吸取2 mL樣液與2 mL DPPH的無水乙醇溶液置于試管中,搖勻,在室溫反應(yīng)30 min后在波長517 nm處測定吸光度(Ai);分別吸取2 mL樣液和無水乙醇于試管中,搖勻,室溫反應(yīng)30 min后在517 nm波長處測定吸光度(Aj);最后分別吸取2 mL DPPH無水乙醇溶液與無水乙醇于試管中,搖勻,在室溫反應(yīng)30 min后在517 nm波長處測定吸光度(Ac)[13]。按公式(1)計算DPPH自由基清除率,結(jié)果如圖1、2所示。

(1)

圖1 豬皮膠原肽各組分DPPH·自由基清除作用比較

圖2 豬皮膠原肽各組分清除DPPH·自由基能力的比較

從圖1不同分子量豬皮膠原肽對DPPH·自由基的清除率趨勢可以看出,在實驗范圍內(nèi)(0.3~6 mg·mL-1),不同分子量豬皮膠原肽對DPPH·自由基都有一定的清除作用,且隨豬皮膠原肽質(zhì)量濃度的增加,各組分對DPPH·自由基的清除率不斷增加,表明不同分子量豬皮膠原肽對DPPH·自由基的清除率具有量效關(guān)系;隨分子量增加豬皮膠原肽清除DPPH·自由基效果呈下降趨勢,通過比較IC50,各組分清除DPPH·自由基能力順序為:小于1 kDa組分>1 kDa~3 kDa組分>酶解原液組分>水提液組分>大于3 kDa組分,小于1 kDa組分對DPPH·自由基清除率最高,其IC50值為0.836 mg·mL-1,當質(zhì)量濃度增加到一定量時,清除DPPH·自由基能力接近Vc。起作用的主要是一些小分子量的肽,可能是由于許多功能性小肽多集中在這部分,這與一些文獻報道一致[14],說明超濾處理能夠富集豬皮膠原肽中對DPPH·自由基清除活性強的組分。

2.3.2 不同分子量豬皮膠原肽組分對O2-·活性清除能力測定

2.3.2.1 鄰苯三酚自氧化速率的測定 取4.5 mL 50 mmol·L-1Tris-HCl緩沖溶液(pH=8.2)、加4.2 mL蒸餾水于10 mL試管中,混勻后在37 ℃水浴中保溫20 min,取出后立即加入0.3 mL在37 ℃預(yù)熱過的4.5 mmol·L-1的鄰苯三酚,空白管用10 mmol·L-1鹽酸代替鄰苯三酚的鹽酸溶液,迅速混勻后倒入比色皿中,322 nm下每隔30 s測定吸光度,連續(xù)記錄4 min內(nèi)吸光度的增加,以10 mmol·L-1HCl溶液配制空白管作為對照,記錄結(jié)果[15]。

2.3.2.2 不同分子量豬皮膠原肽抑制鄰苯三酚自氧化速率的測定 按上述步驟加入pH=8.2緩沖液4.7 mL,然后分別加入肽質(zhì)量濃度為15 mg·mL-1的豬皮膠原肽溶液0.1、0.2、0.4、0.8、1.2 mL,蒸餾水補至4.2 mL,加入0.3 mL鄰苯三酚迅速搖勻,同樣以10 mmol·L-1鹽酸溶液作為空白管,同上測定。按公式(2)計算加入豬皮膠原肽后鄰苯三酚的自氧化速率,按公式(3)計算清除率。

(2)

(3)

式中:A3為30 s時的吸光度;A4為4 min時的吸光度;△A0為鄰苯三酚自氧化速率,△A為加入豬皮膠原肽溶液后鄰苯三酚的自氧化速率。

不同分子量豬皮膠原肽對O2-·的清除作用見圖3、4。在實驗范圍內(nèi)(0.1~1.2 mg·mL-1),不同分子量豬皮膠原肽對O2-·均有一定清除作用,與未酶解的水提膠原肽相比,豬皮膠原蛋白酶解物具有較高的清除O2-·的能力,隨著豬皮膠原肽質(zhì)量濃度的增加,對O2-·的清除率不斷增加,通過比較IC50值,各組分清除能力順序為:小于1 kDa組分>酶解原液組分>1 kDa~3 kDa組分>大于3 kDa組分>水提液組分,結(jié)果顯示小于1 kDa組分對O2-·的清除力最強,其IC50值為0.42 mg·mL-1。

圖3 豬皮膠原肽各組分對O2-·清除作用比較

圖4 豬皮膠原肽各組分清除O2-·自由基能力比較

2.3.3 不同分子量豬皮膠原肽組分對·OH的清除能力測定 精密量取150 mmol·L-1pH=7.4磷酸鹽緩沖液2.0 mL、7.5 mmo1·L-1鄰二氮菲0.2 mL、7.5 mmol·L-1硫酸亞鐵溶液0.2 mL、不同豬皮膠原肽組分試樣0.4 mL、蒸餾水0.8 mL、體積分數(shù)0.1%過氧化氫0.4 mL于試管中,混勻做試樣組,將各試管同時于37 ℃恒溫放置1 h,在536 nm處測定吸光度。空白組以蒸餾水代替樣品,其余步驟同試樣組;空白對照組以蒸餾水分別代替試樣和雙氧水,其余步驟同試樣組,按公式(4)計算·OH清除率。

(4)

式中:A試樣為試樣組的吸光度值,A0為空白組的吸光度值,A空白對照為空白對照組的吸光度值。

豬皮膠原肽不同分子量組分對·OH的清除作用見圖5、6。在實驗范圍內(nèi)(0.3~6 mg·mL-1),不同分子量豬皮膠原肽酶解組分對·OH均有一定清除作用,且隨濃度的增加清除能力也增加,不同分子量豬皮膠原蛋白肽組分對·OH的清除能力不同,通過比較IC50,各組分清除能力順序為:小于1 kDa組分>1 kDa~3 kDa組分>酶解原液組分>大于3 kDa組分>水提液組分,結(jié)果顯示小于1 kDa組分對·OH的清除力最強,其IC50值為2.195 mg·mL-1。

圖5 豬皮膠原肽各組分對·OH清除作用比較

圖6 豬皮膠原肽各組分清除·OH自由基能力比較

3 討論

本實驗采用仿生酶解技術(shù)酶解新鮮豬皮得到酶解原液,酶解原液經(jīng)超濾得到M<1 kDa、1 kDa3 kDa 3個不同分子量肽段,豬皮經(jīng)水提取得到豬皮水提液,上述5組分分別凍干,得到凍干粉。對豬皮膠原肽5組分進行抗氧化性研究,包括對DPPH·自由基、O2-·自由基及·OH自由基的清除實驗。結(jié)果表明,不同分子量的豬皮膠原肽組分均有一定的抗氧化活性,其中M<1 kDa組分的清除活性最強,這一結(jié)果印證了Guillen等[16]研究得出的分子量大小也會影響肽抗氧化活性的結(jié)論。

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