血紅素加氧酶-1對(duì)哮喘小鼠Treg細(xì)胞和Th17細(xì)胞平衡的影響

楊欣，張慶，張艷萍，魏曉曄，姬亞梅

(1.榆林市兒童醫(yī)院兒科，陜西 榆林 719000；2.榆林市星元醫(yī)院兒科，陜西 榆林 719000)

血紅素加氧酶-1對(duì)哮喘小鼠Treg細(xì)胞和Th17細(xì)胞平衡的影響

楊欣1，張慶2，張艷萍2，魏曉曄2，姬亞梅2

(1.榆林市兒童醫(yī)院兒科，陜西 榆林 719000；2.榆林市星元醫(yī)院兒科，陜西 榆林 719000)

目的探討血紅素加氧酶-1(HO-1)對(duì)哮喘小鼠Treg細(xì)胞和Th17細(xì)胞平衡的影響，闡述HO-1的免疫調(diào)節(jié)作用。方法60只雌性BALB/c小鼠按數(shù)字表法隨機(jī)分為正常組、哮喘組、高鐵氯化血紅素(Hemin)組、錫-原卟啉(SnPP)組、Hemin+siRNA scramble組和Hemin+siRNA HO-1組，每組10只。通過注射和霧化吸入雞卵蛋白(OVA)制備哮喘模型，正常組以生理鹽水代替致敏液。Hemin組和SnPP組分別腹腔注射Hemin或SnPP 75 μmol/kg，Hemin+ siRNA scramble組和Hemin+siRNA HO-1組分別在腹腔注射Hemin前轉(zhuǎn)染pSicoR-GFP-siRNA scramble或pSicoR-GFP-siRNA HO-1。末次激發(fā)后24 h內(nèi)，Western blot和比色法分別檢測(cè)各組小鼠肺部組織中HO-1蛋白表達(dá)和HO-1活性；HE染色觀察肺部組織病理變化；流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)外周血中Treg細(xì)胞、Th17細(xì)胞占CD4+T細(xì)胞的百分比，ELISA法檢測(cè)血清和支氣管肺泡灌洗液(BALF)中IL-10、IL-17的水平。結(jié)果與正常組相比，哮喘組小鼠肺部HO-1表達(dá)和活性有所增加，炎性反應(yīng)明顯，Treg/CD4+T細(xì)胞的百分比和IL-10水平顯著降低，Th17/CD4+T細(xì)胞的百分比和IL-17水平顯著升高，差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P＜0.05)。與哮喘組相比，Hemin組明顯增加HO-1表達(dá)和活性，減少肺部組織炎性反應(yīng)，增加Treg/CD4+T細(xì)胞的百分比和IL-10水平，降低Th17/CD4+T細(xì)胞的百分比和IL-17水平，而SnPP組沒有明顯變化。與Hemin組相比，Hemin+siRNA HOv1組肺部組織中HO-1表達(dá)和活性降低，炎性反應(yīng)增加，Treg/CD4+T細(xì)胞的百分比和IL-10水平降低，Th17/CD4+T細(xì)胞的百分比和IL-17水平增加，差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P＜0.05)。結(jié)論增加HO-1的表達(dá)和活性能夠明顯改善哮喘小鼠炎性反應(yīng)，增加Treg細(xì)胞的數(shù)目并促進(jìn)IL-10的產(chǎn)生，同時(shí)抑制Th17細(xì)胞的表達(dá)及IL-17的產(chǎn)生。

血紅素加氧酶-1；哮喘；CD4+CD25+調(diào)節(jié)性T細(xì)胞；Th17細(xì)胞

近年來，世界各國(guó)的支氣管哮喘(簡(jiǎn)稱哮喘)發(fā)病率均有顯著上升[1]，同時(shí)兒童的哮喘患病率也逐年攀升，嚴(yán)重影響兒童的健康成長(zhǎng)[2]。研究表明T細(xì)胞的免疫失衡參與了哮喘氣道炎癥的發(fā)生同時(shí)占據(jù)了重要作用[3]。CD4+CD25+調(diào)節(jié)性T細(xì)胞(regulatory T cells，Treg)以及Th17細(xì)胞是獨(dú)立的CD4+T細(xì)胞亞群，Treg細(xì)胞能夠維持機(jī)體免疫穩(wěn)態(tài)并且抑制針對(duì)自身抗原的異常免疫反應(yīng)，通過與其他細(xì)胞直接接觸和/或分泌一些抑制性的細(xì)胞因子如TGF-β、IL-10等發(fā)揮免疫負(fù)調(diào)控的作用[4]。Th17細(xì)胞分泌的IL-17在炎性反應(yīng)以及免疫調(diào)節(jié)中發(fā)揮著重要的作用[5]。Treg細(xì)胞和Th17細(xì)胞之間平衡紊亂已成為研究哮喘免疫損傷的新熱點(diǎn)，調(diào)節(jié)哮喘患者的免疫功能或?qū)⒊蔀橹委熛鼮橛行У陌l(fā)展方向。血紅素加氧酶-1(heme oxygenase-1，HO-1)是哺乳動(dòng)物和人體內(nèi)血紅素代謝途徑中的限速酶，在體內(nèi)免疫系統(tǒng)激活及免疫反應(yīng)中發(fā)揮重要作用[6]。因此，本研究通過建立哮喘小鼠動(dòng)物模型，探討Treg與Th17細(xì)胞在哮喘發(fā)病中的變化，并觀察HO-1對(duì)其平衡的影響。

1 材料與方法

1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 60只SPF級(jí)BALB/c雌性小鼠，6周齡，體質(zhì)量(20±2)g，購(gòu)于河南省實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心[許可證號(hào)：SCXK(豫)2010-0002]。采用隨機(jī)數(shù)字表示法分6組，每組10只，分籠飼養(yǎng)，給予不含致敏原的特殊飼料喂養(yǎng)。

1.2 實(shí)驗(yàn)試劑 卵清蛋白(ovalbumin，OVA)、高鐵氯化血紅素(hemin)和錫-原卟啉(tin protoporphyrin IX，SnPP)購(gòu)自美國(guó)Sigma公司；蘇木素伊紅(hematoxylin and eosin，HE)染色試劑盒和血紅素加氧酶-1活性比色法定量檢測(cè)試劑盒購(gòu)自南京金斯瑞生物科技有限公司；小鼠IL-17 ELISA試劑盒、小鼠IL-10 ELISA試劑盒購(gòu)自美國(guó)Biolegend公司；抗小鼠HO-1抗體、FITC-anti-CD4抗體、APC-anti-CD25抗體、PE-anti-Foxp3抗體和PE-Cy7-anti-IL-17抗體均購(gòu)自美國(guó)Invitrogen公司。

1.3 動(dòng)物模型制備與分組 按照數(shù)字表法隨機(jī)將60只SPF級(jí)BALB/c雌性小鼠均分為正常組、哮喘組、Hemin組、SnPP組、Hemin+siRNA scramble組和Hemin+siRNA HO-1組，每組10只。除正常組小鼠之外的每組小鼠分別于實(shí)驗(yàn)第1、8、15天腹腔注射0.2 mL雞卵蛋白和氫氧化鋁混合液(含雞卵蛋白100 μg，氫氧化鋁2 mg)；第22天開始，連續(xù)5 d，每天吸入2%雞卵蛋白進(jìn)行霧化30 min，制備哮喘模型；另外，Hemin組和SnPP組分別于第1次霧化致敏前連續(xù)2 d，每天1次腹腔注射Hemin或SnPP 75 μmol/kg，Hemin+siRNA scramble組和Hemin+siRNAHO-1組分別于腹腔注射Hemin前1 d經(jīng)尾靜脈注射200 μL已經(jīng)構(gòu)建并鑒定的慢病毒載體 pSicoR-GFP-siRNA scramble或 pSicoR-GFP-siRNA HO-1。正常組腹腔注射和霧化均以生理鹽水代替。

1.4 小鼠肺部組織HO-1表達(dá)檢測(cè) 采用Western blot檢測(cè)。分離各組小鼠200 μg左肺組織并提取總蛋白，采用BCA法定量蛋白濃度。每組各取樣本量30 μg，7.5%SDS-PAGE電泳分離蛋白并移至PVDF膜，置于新鮮配制的含5%BSA的TBST液中室溫封閉1 h，加入抗小鼠HO-1抗體(1:1 000)和兔抗大鼠β-actin抗體(1:1 000)，4°C反應(yīng)過夜；用TBST液洗膜3次，每次5 min，加入HRP標(biāo)記的山羊抗兔IgG二抗孵育；ECL顯影，BandScan 5.0凝膠電泳圖像分析軟件行條帶灰度掃描，以β-actin為內(nèi)參照對(duì)HO-1進(jìn)行灰度值半定量分析。重復(fù)3次，取均值。

1.5 小鼠肺部組織HO-1活性檢測(cè) 按照組織HO-1活性比色法定量檢測(cè)試劑盒說明書步驟檢測(cè)各組小鼠肺部組織中HO-1活性。

1.6 小鼠肺部組織HE染色 末次霧化激發(fā)結(jié)束后24 h內(nèi)各組小鼠以吸入乙醚進(jìn)行麻醉，開胸，分離肺動(dòng)脈，制備4 μm厚度切片。隨機(jī)選取每組小鼠肺組織3張石蠟切片，脫蠟后進(jìn)行HE染色，每張切片隨機(jī)選取5個(gè)以上高倍鏡視野觀察支氣管壁的形態(tài)學(xué)改變。

1.7 Treg細(xì)胞和Th17細(xì)胞檢測(cè) 采用流式細(xì)胞儀檢測(cè)。取各組小鼠100 μL外周血置于流式管中，依次加入4 mL紅細(xì)胞裂解液和4 mL磷酸鹽緩沖液(PBS)，離心去上清后計(jì)數(shù)。稀釋配制每管含1×106個(gè)細(xì)胞的細(xì)胞懸液，加入100 μL含F(xiàn)ITC-anti-CD4抗體和APC-anti-CD25抗體的流式染色液，混合均勻，4℃避光孵育30 min。洗滌，破膜，固定后每管加入100 μL含有PE-anti-Foxp3抗體的1×破膜液或者含有PECy7-anti-IL-17抗體的1×破膜液，4℃避光孵育30 min，加3 mL PBS，4℃條件下1 500 r/min離心5 min，棄上清，用500 μL 2%的多聚甲醛固定后分別檢測(cè)各組小鼠外周血Treg細(xì)胞和Th17細(xì)胞比例。

1.8 小鼠血清和支氣管肺泡灌洗液(BALF)中IL-17、IL-10水平檢測(cè) 采用ELISA檢測(cè)。末次霧化激發(fā)結(jié)束后24 h內(nèi)將各組小鼠以吸入乙醚麻醉處死，氣管切開后，留置針置入，縫線固定，以0.75 mL PBS灌洗，反復(fù)2次，回收率80%～90%，3 000 r/min離心5 min，收集其上清液，即為小鼠支氣管肺泡灌洗液(BALF)。采用ELISA試劑盒進(jìn)行各組小鼠血清和BALF中IL-17和IL-10水平檢測(cè)。

1.9 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 應(yīng)用SPSS17.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析，計(jì)量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示，多個(gè)樣本均數(shù)的比較采用單因素方差分析，組間數(shù)據(jù)兩兩比較采用LSD-t法，以P＜0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

2 結(jié)果

2.1 Hemin誘導(dǎo)小鼠肺部組織中HO-1表達(dá)以及活性 與正常組小鼠相比，哮喘組小鼠肺部組織中HO-1表達(dá)和活性升高，差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P＜0.05)；與哮喘組小鼠相比，Hemin組小鼠肺部組織中HO-1表達(dá)和活性顯著升高，差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P＜0.05)，SnPP組小鼠肺部組織中HO-1表達(dá)雖然顯著增多，但活性顯著受到抑制；與Hemin組小鼠相比，Hemin+siRNA HO-1組小鼠肺部組織中HO-1表達(dá)和活性顯著受到抑制，差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P＜0.05)，見圖1和圖2。

2.2 各組小鼠肺部組織病理學(xué)觀察 與正常組小鼠相比，哮喘組小鼠肺部組織氣道周圍分布有大量炎癥細(xì)胞，氣道上皮細(xì)胞脫落，分泌粘液增多，氣道管壁顯著增厚；與哮喘組小鼠相比，Hemin組小鼠氣道壁厚度明顯減小，炎癥細(xì)胞大量減少，SnPP組與哮喘組無明顯差異；與Hemin組小鼠相比，Hemin+siRNA HO-1組小鼠氣道壁厚度增加，炎癥細(xì)胞明顯較多，見圖3。

圖1 各組小鼠肺部組織中HO-1蛋白表達(dá)量

圖2 各組小鼠肺組織中HO-1酶活性

圖3 各組小鼠肺部組織HE染色(×400)

2.3 各組小鼠外周血中Treg細(xì)胞和Th17細(xì)胞比例 與正常組小鼠相比，哮喘組小鼠Treg/CD4+T細(xì)胞的百分比顯著降低，Th17/CD4+T細(xì)胞的百分比顯著升高，差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P＜0.05)；與哮喘組小鼠相比，Hemin組小鼠Treg/CD4+T細(xì)胞的百分比明顯升高，Th17/CD4+T細(xì)胞的百分比顯著降低，差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P＜0.05)，SnPP組與哮喘組相比無明顯差異，不具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義；與Hemin組小鼠相比，Hemin+ siRNA HO-1組小鼠Treg/CD4+T細(xì)胞的百分比顯著降低，Th17/CD4+T細(xì)胞的百分比顯著升高，差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P＜0.05)，見表1、圖4和圖5。

表1 各組小鼠外周血Treg及Th17細(xì)胞數(shù)目(±s)

表1 各組小鼠外周血Treg及Th17細(xì)胞數(shù)目(±s)

注：與正常組比較，aP＜0.05；與哮喘組比較，bP＜0.05；與Hemin組比較，cP＜0.05。

組別Treg/CD4+(%)Th17/CD4+T(%)正常組(n=10)哮喘組(n=10) Hemin組(n=10) SnPP組(n=10) Hemin+siRNAscramble組(n=10) Hemin+siRNAHO-1組(n=10) F值P值4.98±0.36 3.01±0.29a4.78±0.43b3.09±0.15 4.82±0.23 3.28±0.21c1 423.846 0.000 2.86±0.44 4.23±0.51a2.64±0.45b4.19±0.36 2.61±0.39 4.10±0.35c1 328.107 0.000

圖4 各組小鼠外周血Treg細(xì)胞水平

圖5 各組小鼠外周血Th17細(xì)胞水平

2.4 各組小鼠血清和BALF中IL-17、IL-10的水平 與正常組小鼠相比，哮喘組小鼠血清和BALF中IL-10水平顯著降低，IL-17水平顯著升高，差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P＜0.05)；與哮喘組小鼠相比，Hemin組小鼠血清和BALF中IL-10水平明顯升高，IL-17水平明顯降低，差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P＜0.05)，SnPP組與哮喘組相比無明顯差異，不具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義；與Hemin組小鼠相比，Hemin+siRNA HO-1組小鼠血清和BALF中IL-10水平顯著降低，IL-17水平顯著升高，差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P＜0.05)，見表2。

表2 各組小鼠BALF和血清中IL-10、IL-17水平(±s，pg/mL)

表2 各組小鼠BALF和血清中IL-10、IL-17水平(±s，pg/mL)

注：與正常組比較，aP＜0.05；與哮喘組比較，bP＜0.05與Hemin組比較，cP＜0.05。

組別IL-10IL-17 BALF 血清BALF 血清正常組(n=10)哮喘組(n=10) Hemin組(n=10) SnPP組(n=10) Hemin+siRNAscramble組(n=10) Hemin+siRNAHO-1組(n=10) F值P值50.7±9.6 25.9±5.2a38.5±4.1b25.7±4.7 38.2±2.9 26.1±4.5c5 10.870 0.000 62.5±12.7 32.7±10.4a45.9±8.5b31.9±9.5 45.5±7.2 33.1±9.8c386.269 0.000 4.4±0.9 19.5±0.5a11.7±0.7b18.6±0.4 11.3±0.5 18.6±0.2c592.167 0.000 9.7±1.3 22.8±5.4a15.6±2.4b21.7±4.5 15.3±1.8 21.8±4.9b479.184 0.000

3 討論

HO-1是一種具有廣泛調(diào)節(jié)作用的蛋白，參與各種免疫相關(guān)性人類疾病和動(dòng)物模型中免疫保護(hù)作用[7]。通常情況下，HO-1在大多數(shù)組織細(xì)胞中呈現(xiàn)低水平表達(dá)，但在應(yīng)激情況下HO-1的表達(dá)顯著升高[8]。在本研究中發(fā)現(xiàn)，哮喘組小鼠肺部組織中HO-1較正常組略微升高，推測(cè)該現(xiàn)象可能是機(jī)體防止過度炎癥對(duì)機(jī)體傷害而產(chǎn)生的免疫保護(hù)作用。Hemin是HO-1的底物，能顯著誘導(dǎo)HO-1蛋白表達(dá)并增強(qiáng)其活性；SnPP則是HO-1的競(jìng)爭(zhēng)性抑制劑，雖能誘導(dǎo)HO-1蛋白表達(dá)但是同時(shí)抑制其活性。因此Western blot和比色法結(jié)果顯示Hemin明顯上調(diào)HO-1的表達(dá)和活性，而SnPP僅僅誘導(dǎo)HO-1的表達(dá)并不增加HO-1活性。同時(shí)HE染色結(jié)果顯示，上調(diào)HO-1表達(dá)并增強(qiáng)其活性的Hemin處理哮喘小鼠明顯改善了小鼠肺部組織炎癥反應(yīng)，僅誘導(dǎo)HO-1高表達(dá)的SnPP對(duì)哮喘小鼠肺部組織炎癥反應(yīng)無抗炎效應(yīng)，然而Hemin+siRNA HO-1組抑制HO-1表達(dá)的同時(shí)逆轉(zhuǎn)Hemin對(duì)哮喘小鼠肺部組織的抗炎效應(yīng)。這表明Hemin能夠特異性誘導(dǎo)HO-1表達(dá)并增強(qiáng)其活性，從而發(fā)揮對(duì)哮喘小鼠氣道炎癥反應(yīng)的抗炎作用，也可以推測(cè)HO-1在抵抗哮喘小鼠氣道炎癥反應(yīng)中占據(jù)重要作用。

Treg細(xì)胞和Th17細(xì)胞是共同來源于初始CD4+T細(xì)胞的新亞類，參與哮喘和過敏性疾病的發(fā)生和發(fā)展[5,9]。Treg細(xì)胞是維持外周免疫耐受的關(guān)鍵細(xì)胞，分泌抑制性細(xì)胞因子IL-10、轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子-β(TGF-β)并能介導(dǎo)自身抗原誘導(dǎo)的免疫耐受，抑制炎性反應(yīng)[10-11]。Th17細(xì)胞能夠促進(jìn)炎性細(xì)胞因子IL-17、IL-22、IL-6以及腫瘤壞死因子-α(TNF-α)的釋放[12]，還可在氣道炎性反應(yīng)過程中招募中性粒細(xì)胞，進(jìn)一步促進(jìn)多種炎癥細(xì)胞釋放炎性因子，加重氣道的阻塞和氣道的高反應(yīng)性，擴(kuò)大炎性反應(yīng)[13-14]。此外，Treg細(xì)胞與Th17細(xì)胞之間在分化上互相影響、在功能上相互拮抗，共同維持機(jī)體免疫狀態(tài)的相對(duì)穩(wěn)定，使機(jī)體處于復(fù)雜的免疫平衡狀態(tài)。因此，Treg細(xì)胞和Th17細(xì)胞之間的平衡在免疫反應(yīng)相關(guān)疾病的發(fā)生發(fā)展中起著重要作用。本研究中發(fā)現(xiàn)哮喘組小鼠外周血中Th17細(xì)胞占CD4+T細(xì)胞的百分率顯著高于正常組，Treg/CD4+T細(xì)胞百分比顯著降低，BALF、血清中IL-17表達(dá)水平明顯升高，提示Th17細(xì)胞及其分泌的細(xì)胞因子IL-17可能參與了哮喘的免疫調(diào)節(jié)作用，其機(jī)體Treg/Th17的失衡可能是哮喘發(fā)生、發(fā)展或急性加重的原因之一。與哮喘組相比，Hemin組明顯上調(diào)Treg細(xì)胞及IL-10表達(dá)，下調(diào)Th17細(xì)胞數(shù)量及降低IL-17的表達(dá)，糾正機(jī)體Treg/Th17的免疫失衡狀態(tài)，減輕氣道炎性反應(yīng)，從而減輕哮喘的癥狀。與Hemin組相比，Hemin+siRNA HO-1組中HO-1表達(dá)受到抑制后，逆轉(zhuǎn)Hemin對(duì)Treg細(xì)胞和Th17細(xì)胞平衡的影響，削弱了Hemin對(duì)哮喘小鼠炎性反應(yīng)的抑制作用，進(jìn)一步證實(shí)HO-1參與哮喘模型中Treg細(xì)胞和Th17細(xì)胞平衡的調(diào)節(jié)，減輕氣道炎性反應(yīng)。

綜上所述，Hemin特異性誘導(dǎo)HO-1表達(dá)和活性增強(qiáng)，調(diào)節(jié)哮喘小鼠外周血中Treg細(xì)胞和Th17細(xì)胞平衡，抑制炎性因子釋放，從而能有效改善哮喘氣道炎性反應(yīng)。從而證實(shí)了HO-1在哮喘炎性反應(yīng)以及Treg細(xì)胞和Th17細(xì)胞平衡中具有重要意義。由此推測(cè)在今后的臨床工作中，若對(duì)具有患哮喘高風(fēng)險(xiǎn)因素的兒童進(jìn)行有效的早期免疫干預(yù)，可能會(huì)起到避免哮喘的發(fā)病或減輕哮喘癥狀的目的。

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Effect of Heme Oxygenase-1 on the balance of Treg cells and Th17 cells in asthmatic mice.

YANG Xin1,ZHANG Qing2,ZHANG Yan-ping2,WEI Xiao-ye2,JI Ya-mei2.1.Department of Paediatrics,YuLin Children's Hospital,Yulin 719000,Shaanxi,CHINA;2.Department of Paediatrics,Xingyuan Hosptial of Yulin,Yulin 719000,Shaanxi,CHINA

ObjectiveTo investigate the effect of Heme Oxygenase-1(HO-1)on the balance of Treg cells and Th17 cells in asthmatic mice,and to explain the immunomodulatory effect of HO-1.MethodsSixty female BALB/c mice were randomly divided into six groups according to random number table:normal control group,asthma group,Hemin group,tin-protoporphyrin(SnPP)group,Hemin+siRNA scramble group and Hemin+siRNA HO-1 group,with 10 mice in each group.Asthmatic mouse model was established by intraperitoneal injection and aerosol inhalation of ovalbumin(OVA),while mice in the normal control group were given normal saline instead.Hemin group and SnPP group were intraperitoneally injected with Hemin or 75 μmol/kg SnPP,respectively.Hemin+siRNA scramble group and Hemin+siRNA HO-1 group were transfected with pSicoR-GFP-siRNA scramble or pSicoR-GFP-siRNA HO-1 before intraperitoneal injection with Hemin.All mice were sacrificed at 24 hours after the last excitation.Western blot and HO-1 activity quantitative Kit were respectively used to measure the expression and activity of HO-1 in lung tissues.The hematoxylin-eosin staining was used to observe the airway structural changes.Flow cytometry was used to measure the percentages of Treg cells and T helper(Th17)cells in CD4+T cells in peripheral blood,while enzyme-linked immunosorbent assay(ELISA)was used to measure the levels of interleukin(IL)-10 and IL-17 in serum and bronchoalveolar lavage fluid.ResultsCompared with the normal control group,asthma group showed an increase in the expression and activity of HO-1,and inflammatory reaction was obvious.The percentage of Treg/CD4+T cells and the level of IL-10 were significantly decreased,and percentage of Th17/CD4+T cells and the level of IL-17 were significantly increased, with statistically significant differences(P＜0.05).Compared with the asthma group,Hemin group had significantly increased expression and activity of HO-1,inhibited inflammatory reaction in lung tissue,increased percentage of Treg cells and I-10 level,decreased percentage of Th17 cells and IL-17 level.However,there was no significant change in the SnPP group.Compared with the Hemin group,Hemin+siRNA HO-1 group showed an obvious decrease in the ex-pression and activity of HO-1,percentage of Treg cells and IL-10 level,and an increase in inflammatory reaction,percentage of Th17 cells,and IL-17 level.The differences were statistically significant(P＜0.05).ConclusionIncreasing the expression and activity of HO-1 could significantly improve the inflammatory reaction,increase the number of Treg cells and promote the production of IL-10,and meanwhile inhibit the generation of Th17 cells and production of IL-17 in asthmatic mice.

Heme oxygenase-l;Asthma;CD4+CD25+regulatory T cell;T helper cell(Th17)cell

R-332

A

1003—6350（2017）01—0009—06

2016-07-27)

姬亞梅。E-mail：lijieyulin@163.com

10.3969/j.issn.1003-6350.2017.01.003