大鼠在體腸吸收方法研究

摘要：目的 介紹大鼠在體及離體腸吸收的實驗方法及研究進展。方法 對有代表性的文章進行分析，歸納和整理。結果 綜述了藥物在體及離體腸吸收的操作及應用。結論 采用大鼠在體及離體模型對藥物腸道吸收行為作出科學的評價。

關鍵詞：大鼠；腸吸收；方法

1 大鼠在體模型

1.1單向灌流模型

1.1.1實驗方法[1，2] 將禁食大鼠，ip0.2g/ml烏拉坦溶液麻醉（5ml/kg），行固定設置，采取紅外燈保證試驗體溫在37℃，隨后按照腹部中心線切開腹腔3cm，將試驗段腸行兩端標準切開之后置入管道結扎。將生理鹽水（37℃）按照一定流速灌腸清潔，隨后完全排空生理鹽水，連接裝置，按照事先準備的使用藥液（37℃）進行供罐，統計記錄液體灌流時間，并收集不同時間段內外流積液，并精確量取流出液體積和供試液減少的體積數或重量。

1.1.2特點 通過直接測定灌入量和流出量的體積或重量變化，借以判斷某種物質的吸收情況。

廖正根等人運用單向灌流模型并采用HPLC法分別測定桂枝茯苓膠囊內容物的灌流液以及直接溶解有這3種成分的灌流液在腸灌流過程中的濃度變化[2]。結論：桂枝茯苓膠囊中3種有效成分在大鼠小腸主要以被動擴散方式吸收。

1.2循環灌流模型

1.2.1實驗方法[3，4] 將禁食大鼠ip戊巴比妥鈉40mg/kg，麻醉后固定。沿腹中線切開腹腔（約2.5cm），在實驗腸管兩端各切一小口，在上端小口處插入直徑為0.3cm的玻璃管，并用線扎緊。用注射器將37℃的生理鹽水緩緩注入腸管，洗去腸管內容物至凈。然后在實驗腸管下端小口處插入玻璃管，并用線扎緊。將腸管兩端的玻璃管與蠕動泵的膠管連接，形成回路，開動蠕動泵。先以一定流速循環10min后，將流速調為2.5ml/min，分別于回流后0.25、0.5、1.0、1.5、2.、2.5、3.0h取樣5ml，經0.45μm微孔濾膜濾過，分別用測定藥物的濃度。

1.2.2特點 循環一定時間后，分析腸管內，外液中物質濃度的變化，測定其運轉情況。宋洪濤等人采用大鼠在體腸段灌流實驗[4]，主要從藥物濃度、pH值、吸收部位等3方面對紅花黃色素的腸段吸收特性進行研究。結果：各腸段的吸收速率常數按空腸、十二指腸、回腸、結腸順序依次下降。

1.3腸襻法

1.3.1實驗方法[5] 將大鼠麻醉，開腹結扎腸腔，需做部位研究時，可分段結扎腸腔，將含有一定濃度的人工腸液諸如腸襻中，經過一定時間吸收后，取出腸襻，收集沖洗腸腔內腸液，測定藥物剩余量。

1.3.2特點[5] 通過測定藥物的剩余量，了解藥物的吸收情況，且該發較在體回流法操作簡單，但由于腸腔內容物存在，分析樣品處理較復雜。

2 大鼠離體模型

2.1外翻腸囊法

2.1.1實驗方法[6] 麻醉動物，取出小腸，一端插管注入生理鹽水排除內容物。用一細玻棒將其翻轉，使黏膜朝外漿膜朝內。腸一端節扎，另一端接一取樣器，注入一定體積臺氏液于腸囊內并將腸囊置于含有臺氏液（內含藥物）的瓶中，37℃孵育，充分供氧，定時取樣。

2.1.2特點[7] 首先將動物麻醉，或實驗前處死。這樣的小腸外翻后，腸漿膜表面所附著的液體很少，從而能較精確的了解吸收后漿膜側液體的容積和成分。它不僅是一個很好的觀察吸收的方法，而且還能用于研究生物膜的轉運機制。何盛江和欒立標[8]采用離體小腸翻轉腸囊實驗，考察了卵磷脂等對苦參堿小腸吸收的促進效果結果：在幾種促進劑中，以0.2%SDS對苦參堿的吸收促進作用最為明顯。李昊[9]等人對不同腸段（回腸和空腸）的腸管外翻模型進行考察。結果，Rg1在不同腸段的吸收良好，且無明顯差異。

2.2外翻環法

2.2.1實驗方法[9] 先行將完全分離的一段小腸于一端應用手術線細扎，隨后應用玻璃桿經腸腔向結扎腸端口推動，并行翻轉。將小腸行橫切做環形狀分割。將腸環置于藥液且確保氧化環境充分的緩沖液內進行孵育。注意在孵育過程應置于水浴搖床之中，從而提升緩沖液溫度的控制以及加強攪動力度。最后將腸環置于冰冷緩沖液清潔，停止腸環對藥物的攝取。取小腸環、干燥處理、過秤計重，消化腸環，分析藥物含量。

2.2.2特點[6] 腸黏膜在孵育過程中可導致上皮細胞的損傷，更長時間的孵育可能導致上皮細胞的脫落。所以，外翻環的孵育時間最好控制在10min以內。在環制備的過程中保持在4℃，盡量減小孵育過程中組織的損傷程度。

2.3組織流動室法

2.3.1實驗方法 將離體腸段剪開形成一定面積的小腸塊，安裝于擴散池中。擴散池中裝入緩沖液。通入空氣攪動緩沖液來控制未攪動水層厚度，并且提供組織氧氣。藥物加入供應室，在接收室取樣測量藥物不同時間的累積量。剝離腸道的肌肉層以去除其對上皮細胞轉運功能的影響。通常向黏膜及漿膜緩沖液中加入谷酰胺或葡萄糖等作為能量源，使組織具有最大可能的存活能力。

2.3.2特點 ①可以改變供應室的化合物組成以研究離子、pH值及其它物質等對藥物轉運的影響。Uchiyama等用流動室模型研究了幾種促進劑對胰島素透膜吸收的影響[10]，并評價促進劑的腸道毒性作用。②通過從黏膜及漿膜側緩沖液中取樣，可以測定黏膜到漿膜或者反方向上的藥物流量，以確定藥物是被動擴散吸收還是以載體介導的轉運吸收。③可研究腸道對藥物的代謝作用。

3 結論

筆者認為，在體及離體都有各自的特點，需要根據自身需要選擇合適的方法。通過實驗模型和實驗結果對藥物的腸道吸收情況作出科學的判斷。

參考文獻：

[1]聶淑芳，潘衛三，楊星鋼，等.對大鼠在體腸單向灌流技術中重量法的評價[J].中國新藥雜志，2005，14（10）：1176-1179.

[2]廖正根，平其能，蕭偉，等.桂枝茯苓膠囊中有效成分的大鼠在體腸吸收研究[J].中國天然藥物，2005，3（5）：303-306.

[3]李蕓霞，蔣學華，周靜.大鼠在體吸收連翹苷的機理研究[J].華西藥學雜志，2005，20（5）：387-390.

[4]宋洪濤，張躍新，郭濤，等.紅花黃色素在大鼠體腸吸收動力學研究[J].解放軍藥學學報，2005，21（4）：245-247.

[5]梁桂賢，劉謙民.藥物腸吸收研究方法近況[J].國外醫藥-合成藥生化藥制劑分冊，1998，19（4）：251-253.

[6]李高，方超.藥物腸道吸收的生物學研究方法[J].中國藥學雜志，2002，37（10）：726-729.

[7]沈凱，王景田.藥物腸吸收實驗研究方法進展[J].中國新藥雜志，2003，12（12）：988-991.

[8]何盛江，欒立標.翻轉腸囊法研究吸收促進劑對小腸吸收苦參堿的作用[J].藥學進展實驗與研究，2004，28（3）：126-128.

[9]李昊，孫建國，謝海棠，等.大鼠腸管外翻模型對人參皂苷Rg1吸收機制的研究[J].中國臨床藥理學與治療學，2004，9（5）：510-514.

[10]Uchiyama T，Sugiyama T，Quan YS，et al.Enhanced permeability of insulinacross the ratintestinal membrane by various absorption enhancers：the irintestinalmucosal toxicity and absorption enhancing mechanism of nlauryl beta Dmaltopyranoside[J].J Pharm Pharmacol，1999，51：1241.

編輯/趙恒德