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人細(xì)小病毒B19的環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增快速檢測方法的建立

2015-09-26 09:57:26張彥東姜振寧
關(guān)鍵詞:實(shí)驗(yàn)檢測方法

張彥東,鄔 巍,馬 寧,劉 濤,王 凱,姜振寧

(吉林大學(xué)第一醫(yī)院 風(fēng)濕免疫科,吉林 長春130021)

人微小病毒B19(Human Parvovirus B19,HPV B19)是一種DNA病毒,也是與人類最密切相關(guān)的微小病毒[1]。本病毒是由Yvonne Cossart等于1975年在標(biāo)記B19號HBsAg對照的血清中首次鑒定出一種微病毒顆粒。在實(shí)驗(yàn)室檢測中最早利用特異性血清學(xué)檢測,后又建立了PCR、熒光定量PCR[2]和基因芯片[3]等靈敏度較高的方法。

1 材料與方法

1.1 試劑 病毒基因組DNA提取試劑盒購自TIANGEN公司,DNA回收試劑盒和質(zhì)粒提取試劑盒購自Axygen公司、限制性內(nèi)切酶Hinf I、Dpn I和T4DNA連接酶均為TaKaRa公司產(chǎn)品,dNTPs、DL2000DNA Marker、甜菜堿(betaine)為Sigma公司產(chǎn)品;Bst DNA聚合酶大片段為NEB公司產(chǎn)品。

1.2 病毒DNA的抽提 參照DNA提取試劑盒的說明書進(jìn)行病毒DNA的抽提。

1.3 引物的設(shè)計(jì)與合成 利用LAMP引物在線設(shè)計(jì)軟件Primer explorer,根據(jù)登陸在GenBank中B19的VP2進(jìn)行比較,選擇基因保守區(qū)域,設(shè)計(jì)引物,篩選后選擇2對引物,F(xiàn)3/B3為外游引物,F(xiàn)IP/BIP為內(nèi)游引物。同時(shí)利用oligo軟件設(shè)計(jì)1對PCR引物,上游為upper,下游為lower。各引物序列為:

所有序列由深圳華大生物技術(shù)有限公司合成。

1.4 PCR方法 按照說明書進(jìn)行常規(guī)PCR方法對病毒DNA鑒定。

1.5 LAMP檢測方法 對25μl反應(yīng)體系中的MgSO4(25mmol/L)以及反應(yīng)時(shí)間進(jìn)行優(yōu)化。調(diào)整試驗(yàn)中 MgSO4(25mmol/L)的用量,MgSO4(25 mmol/L)則為6μl,7μl,8μl;并且優(yōu)化 LAMP的反應(yīng)時(shí)間,分別調(diào)整為60min,90min,120min。反應(yīng)體系中其他用量為:2μl的DNA樣品、2.5μl的Bst DNA 聚合酶緩沖液(10×)、2μl dNTPs(10 mmol/L),1μl的 Bst DNA 聚合酶8U、Betaine(5 mol/L)、對應(yīng)于VP2基因的4條引物各濃度F3/B3為pmol/μl、BIP/FIP為40pmol/μl,加 H2O 補(bǔ)足至25μl?;靹颍?5℃,1-2h后80℃,2min,水浴。1.0%瓊脂糖凝膠電泳,觀察試驗(yàn)結(jié)果。

1.6 LAMP產(chǎn)物的酶切鑒定和序列測定 將LAMP產(chǎn)物采用限制性內(nèi)切酶BanII進(jìn)行酶切鑒定,并以此為模板進(jìn)行普通PCR擴(kuò)增。擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)回收、連接、轉(zhuǎn)化,得到陽性克隆,并且送深圳華大公司基因測序。方法參照試劑盒說明書。

1.7 LAMP的靈敏性與特異性評價(jià) 將抽提所得的總DNA 10倍稀釋至10-5.并使用紫外分光光度計(jì)測定稀釋后各個梯度的DNA濃度,分別為100 ng、10ng、1ng、100pg、10pg、1pg。對上述各濃度DNA用LAMP方法進(jìn)行檢測,并用PCR方法同時(shí)擴(kuò)增進(jìn)行靈敏性的比較。

按照與B19病毒相同的條件對乙型肝炎病毒(HBV),巨細(xì)胞病毒(HCMV)進(jìn)行DNA的提取,以及優(yōu)化后的LAMP檢測。

2 結(jié)果

2.1 B19病毒的PCR結(jié)果 PCR結(jié)果可見在100 bp與250bp之間有一條陽性條帶(圖1),與設(shè)計(jì)的198bp產(chǎn)物片段符合。

2.2 MgSO4以及反應(yīng)時(shí)間的優(yōu)化結(jié)果 根據(jù)瓊脂糖凝膠電泳結(jié)果表明 MgSO4(25mmol/L)為6μl(圖2),最適反應(yīng)時(shí)間為60min(圖3)。

2.3 酶切鑒定及測序結(jié)果 用Hinf I和Dpn I限制性內(nèi)切酶對LAMP產(chǎn)物進(jìn)行雙酶切鑒定,結(jié)果表明,本實(shí)驗(yàn)中的LAMP產(chǎn)物片段大小與理論值相符。

2.4 LAMP的靈敏性和特異性結(jié)果 常規(guī)PCR產(chǎn)物稀釋至10pg時(shí),PCR無結(jié)果,LAMP結(jié)果為陽性(圖4),證明其靈敏性高于普通PCR。對HBV和HCMV進(jìn)行特異性判斷,LAMP檢測結(jié)果HBV和HCMV是陰性(圖4),B19病毒為陽性,證明LAMP檢測方法具有特異性。

圖1 b19病毒PCR產(chǎn)物的瓊脂糖凝膠電泳結(jié)果

圖2 不同濃度Mg2+離子的LAMP檢測結(jié)果

圖3 不同反應(yīng)時(shí)間的LAMP檢測結(jié)果

圖4 b19病毒的瓊脂糖凝膠電泳結(jié)果

3 討論

3.1 人類細(xì)小病毒B19是一種DNA病毒,體積最小、結(jié)構(gòu)簡單,有報(bào)道該病毒與感染致過敏性紫癜、川崎?。?]、系統(tǒng)性紅斑狼瘡[5]、結(jié)節(jié)性多動脈炎、韋格納肉芽腫病和關(guān)節(jié)炎等均相關(guān)。但由于人類細(xì)小病毒B19很難在常規(guī)細(xì)胞系中繁殖,也無法在建立動物模型中復(fù)制,因此對該病毒的研究有一定的限制。臨床上通常根據(jù)其抗體的檢測來判斷患者是否感染過B19病毒,對于抗原的檢測最常見的方法就是聚合酶鏈反應(yīng)(PCR),但該方法需要特殊的儀器、摸索適合PCR條件以及較長的循環(huán)時(shí)間,并不適用于臨床檢測。近年來,各種等溫檢測技術(shù)被廣泛應(yīng)用[6]。本實(shí)驗(yàn)利用2000年日本Notomi博士發(fā)明的環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)(LAMP),在國內(nèi)首次建立人B19病毒LAMP檢測方法,實(shí)驗(yàn)僅需要一臺恒溫水浴鍋就可以在60min內(nèi)完成整個檢測過程,并且實(shí)驗(yàn)證明其敏感性高于普通PCR方法。真正達(dá)到了簡單、高效的診斷檢測。

3.2 LAMP檢測方法中引物設(shè)計(jì)是其核心部分,也是技術(shù)關(guān)鍵 此方法是用4種不同的特異性引物識別靶基因的6個特定區(qū)域。實(shí)驗(yàn)的條件是60-65℃,此溫度是雙鏈DNA復(fù)性及延伸的中間溫度,DNA在65℃左右處于動態(tài)平衡狀態(tài),依靠一種高活性鏈置換DNA聚合酶,使得鏈置換DNA合成在不停地自我循環(huán)。另外,很多文獻(xiàn)報(bào)道因?yàn)長AMP檢測方法的靈敏度過高,實(shí)驗(yàn)中很容易出現(xiàn)假陽性。本實(shí)驗(yàn)中為避免此狀況,將進(jìn)行擴(kuò)增的空間與進(jìn)行電泳的空間嚴(yán)格隔離,并酶切鑒定結(jié)果的特異性。如果在臨床上應(yīng)用,則可以添置濁度儀或加入熒光染料就可避免此問題。

[1]Torok TJ.Parvovlru8B19and Human disease[J].Adv Intern Med,1992,37:431.

[2]趙國強(qiáng),胡 軍,冷 弘,等.熒光定量PCR檢測B19病毒方法的建立[J].鄭州大學(xué)學(xué)報(bào),2005,5:380.

[3]Lu liang,MA Wen-li,WANG Hong-min,et al.Quick preparations of human parvovirus B19micro array probes using PCR[J].第一軍醫(yī)大學(xué)學(xué)報(bào),2003,23(11):1121.

[4]鄭 巖.40例川崎病患兒微小病毒B19感染的近期分析[J].中國實(shí)驗(yàn)診斷學(xué),2008,6:789.

[5]魯智勇,沈小雁,薛 峰,等.細(xì)小病毒B19感染與系統(tǒng)性紅斑狼瘡相關(guān)性研究[J].中華風(fēng)濕病學(xué)雜志,2006,10(7):430.

[6]張福明,李 凡,張淑芹.網(wǎng)狀分枝擴(kuò)增法檢測EB病毒基因及臨床應(yīng)用研究[J].中國實(shí)驗(yàn)診斷學(xué),2006,3:221.

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