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我國(guó)藥用植物原生質(zhì)體培養(yǎng)的研究進(jìn)展

2015-07-31 12:18:29尹紅新雷秀娟宋娟等
江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2015年3期
關(guān)鍵詞:研究進(jìn)展培養(yǎng)

尹紅新 雷秀娟 宋娟等

摘要:對(duì)近年來(lái)藥用植物原生質(zhì)體的制備、培養(yǎng)、融合以及植株再生進(jìn)行了綜述,闡明了起始材料、酶解條件、培養(yǎng)方法等對(duì)原生質(zhì)體培養(yǎng)的影響,并對(duì)今后藥用植物原生質(zhì)體的重點(diǎn)研究方向作了討論。

關(guān)鍵詞:藥用植物;原生質(zhì)體;酶解條件;培養(yǎng);研究進(jìn)展

中圖分類號(hào):Q942 文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A

文章編號(hào):1002-1302(2015)03-0243-03

原生質(zhì)體(protoplast)是指植物細(xì)胞中除去細(xì)胞壁后有生命活性的部分,除去細(xì)胞壁的原生質(zhì)體能夠直接攝入外源的細(xì)胞器、DNA、病毒、質(zhì)粒等,是進(jìn)行遺傳轉(zhuǎn)化研究的理想受體,對(duì)其進(jìn)行細(xì)胞融合可獲得雜種細(xì)胞[1]。因此,植物原生質(zhì)體在品種改良和生物學(xué)基礎(chǔ)理論研究中有廣泛的應(yīng)用前景,備受國(guó)內(nèi)外研究學(xué)者的關(guān)注。1892年,Klercker首次用機(jī)械法進(jìn)行原生質(zhì)體的分離研究,但是原生質(zhì)體獲得量很少[2]。1960年,Cocking采用酶解法從高等植物細(xì)胞中分離獲得原生質(zhì)體[3]。隨著纖維素酶和果膠酶的推行,植物原生質(zhì)體培養(yǎng)逐漸成為一個(gè)熱門話題[4]。1971年,Takebe等首次從煙草葉片中分離出原生質(zhì)體并獲得再生植株,原生質(zhì)體的培養(yǎng)進(jìn)入一個(gè)新的階段[5]。在此基礎(chǔ)上,藥用植物原生質(zhì)體的培養(yǎng)也有了一定的發(fā)展。目前,藥用植物原生質(zhì)體的培養(yǎng)已經(jīng)擴(kuò)展到夾竹桃科、五加科、紫草科、菊科、龍膽科、葫蘆科、茄科、玄參科、天南星科等數(shù)十科。本文就近年來(lái)藥用植物原生質(zhì)體的制備、培養(yǎng)、融合以及植株再生進(jìn)行綜述,為今后藥用植物原生質(zhì)體培養(yǎng)的研究尋求切入點(diǎn)和突破點(diǎn),提供新的研究方法和有力的論證依據(jù)。

1 原生質(zhì)體的分離

原生質(zhì)體分離是進(jìn)行原生質(zhì)體培養(yǎng)的第1步,直接影響原生質(zhì)體培養(yǎng)能否成功。其中,原始材料的生理狀態(tài),原生質(zhì)體的分離、預(yù)處理方法以及游離純化方法等都是影響原生質(zhì)體分離的重要因素。原生質(zhì)體的分離方法主要有機(jī)械法和酶解法2種。機(jī)械法存在產(chǎn)量低等缺陷,因此多采用酶解法進(jìn)行原生質(zhì)體的分離。

1.1 原始材料的選擇

原始材料及其生理狀態(tài)對(duì)原生質(zhì)體的制備及其活力有很大的影響[6]。生長(zhǎng)旺盛、生命力強(qiáng)的組織和細(xì)胞是獲得高活性原生質(zhì)體的關(guān)鍵,并對(duì)原生質(zhì)體的復(fù)壁、愈傷組織的形成以及植株再生有重要的影響。原生質(zhì)體分離的原始材料有很多,只要選用的酶類型及用量合適,就可以在植物的任何部位獲得游離的原生質(zhì)體[2]。據(jù)有關(guān)原生質(zhì)體培養(yǎng)的報(bào)道,葉片是分離原生質(zhì)體試驗(yàn)中常用的原始材料[7]。張曉麗等以青天葵新鮮葉片為試驗(yàn)材料獲得制備青天葵原生質(zhì)體的理想條件與參數(shù)[8]。愈傷組織和懸浮細(xì)胞生長(zhǎng)迅速穩(wěn)定,受環(huán)境條件影響比較小,更易獲得大量高質(zhì)量的原生質(zhì)體。但是,長(zhǎng)期培養(yǎng)的愈傷組織和懸浮細(xì)胞容易引起植株喪失再生能力,這就須要選擇胚性狀態(tài)的細(xì)胞團(tuán),這是再生植株所必需的[9-10]。同時(shí),基因型也會(huì)影響植物原生質(zhì)體的培養(yǎng),不同基因型分離得到的原生質(zhì)體產(chǎn)量和活力差別很大[11],并且對(duì)原生質(zhì)體的植株再生也有一定的影響[12]。

1.2 原始材料的預(yù)處理

一些研究表明,材料的預(yù)處理對(duì)保持原生質(zhì)體的完整性及提高原生質(zhì)體產(chǎn)量有積極的作用。張曉麗等用13%甘露醇溶液預(yù)處理青天葵葉片1 h,獲得大量的原生質(zhì)體[8]。王鵬凱等以北美鵝掌楸的懸浮細(xì)胞和組培苗葉片為材料,用含有0.1% 2-嗎啉乙磺酸(MES)和0.6 mol/L甘露醇的Cell Protoplast Wash (60M-CPW)溶液25 ℃預(yù)處理 1 h,結(jié)果顯示原生質(zhì)體產(chǎn)量明顯提高[13]。于相麗等以洛陽(yáng)紅牡丹葉片為材料制備原生質(zhì)體,在蔗糖濃度為0.3 mol/L的溶液中預(yù)處理0.5 h的效果最好[14]。但是,并不是所有的原生質(zhì)體分離都需要經(jīng)過(guò)預(yù)處理,要根據(jù)不同的情況而定。

1.3 原生質(zhì)體的分離方法

藥用植物游離原生質(zhì)體常用的酶有纖維素酶、半纖維素酶、果膠酶、離析酶等,不同植物材料選用哪種酶較好取決于所用細(xì)胞和組織的來(lái)源。不同種類酶的混合使用和精確的酶解溫度和酶解時(shí)間的設(shè)置,可以得到較好的酶解效果[15-16]。近年來(lái),開(kāi)發(fā)一種微生物型的纖維素酶和果膠酶用于原生質(zhì)體分離逐漸成為討論的焦點(diǎn)[17]。

滲透壓是影響原生質(zhì)體游離的一個(gè)重要因素。滲透壓過(guò)低,原生質(zhì)體缺乏細(xì)胞壁的保護(hù),往往會(huì)出現(xiàn)破裂的情況。有研究表明,微高的滲透壓有利于原生質(zhì)體維持穩(wěn)定的形態(tài)[18]。滲透壓穩(wěn)定劑是酶液的重要組成部分,應(yīng)當(dāng)引起足夠的重視。藥用植物原生質(zhì)體分離環(huán)境中常用的滲透壓穩(wěn)定劑為甘露醇和山梨醇[19-20],甘露醇由于在試驗(yàn)中的降解性小于山梨醇而被認(rèn)為是目前最適合的滲透壓穩(wěn)定劑。

1.4 原生質(zhì)體游離基純化方法

原生質(zhì)體游離后的提純方法常用的有漂浮法和沉降界面法,其中沉降界面法使原生質(zhì)體集中在兩相界面,操作簡(jiǎn)單,但是容易造成原生質(zhì)體損傷;漂浮法在重復(fù)漂浮洗滌純化的過(guò)程中對(duì)原生質(zhì)體的損傷較小,但是容易混進(jìn)一些不需要的原液,影響漂浮純化效果,這就須要嚴(yán)格控制離心力[21]。

2 原生質(zhì)體的培養(yǎng)

2.1 培養(yǎng)基

在藥用植物原生質(zhì)體的培養(yǎng)中,常用的培養(yǎng)基有改良的MS、B5、KM8P、6,7-V、V-KM等培養(yǎng)基[22-25],培養(yǎng)基的pH值一般為5.6~5.8。無(wú)機(jī)鹽是構(gòu)成培養(yǎng)基的主要成分,一般Ca2+和NH+4對(duì)原生質(zhì)體培養(yǎng)效果影響較大,且較高濃度的Ca2+有利于原生質(zhì)體培養(yǎng)[26]。馬鋒旺等在原生質(zhì)體培養(yǎng)中發(fā)現(xiàn),高濃度的NH+4能抑制原生質(zhì)體分裂[27-28]。原生質(zhì)體洗液(CPW)中鹽離子的濃度和種類對(duì)原生質(zhì)體細(xì)胞膜的穩(wěn)定性也有一定的影響,試驗(yàn)中應(yīng)注意[29]。

一定水平的滲透壓可以保持原生質(zhì)體的正常形態(tài),使原生質(zhì)體的正常生理功能得以進(jìn)行,培養(yǎng)基中的碳源和滲透劑在原生質(zhì)體培養(yǎng)中有重要的作用。衛(wèi)志明等研究發(fā)現(xiàn),使用葡萄糖可以提高懸鈴木葉肉原生質(zhì)體的植板率[30]。林順權(quán)等在對(duì)枇杷原生質(zhì)體的研究中發(fā)現(xiàn),10%葡萄糖+5%山梨醇是所有試驗(yàn)處理中最合適的碳源兼滲透劑[31]。endprint

2.2 培養(yǎng)方法

原生質(zhì)體常用的培養(yǎng)方法包括液體淺層培養(yǎng)、固-液雙層培養(yǎng)、瓊脂糖包埋及看護(hù)培養(yǎng)等方法,目前應(yīng)用最廣泛的是固-液雙層培養(yǎng)。范小峰等以南蛇藤胚性愈傷組織為材料分離原生質(zhì)體,采用液體淺層靜置培養(yǎng)并取得了較好的原生質(zhì)體培養(yǎng)效果[32]。秦曉杰等在胚性愈傷組織誘導(dǎo)培養(yǎng)基中進(jìn)行原生質(zhì)體的懸滴培養(yǎng)、液體培養(yǎng)等不同培養(yǎng)方式的研究,結(jié)果表明看護(hù)培養(yǎng)是最佳培養(yǎng)方法[22]。這些常用的原生質(zhì)體培養(yǎng)方法同樣適用于藥用植物原生質(zhì)體培養(yǎng)。

不同類型的藥用植物應(yīng)根據(jù)實(shí)際情況采用不同的培養(yǎng)方式,一些植物也可采用多種培養(yǎng)方式聯(lián)合培養(yǎng)。其中,五加科、天南星科等較適合液體淺層和固-液雙層的聯(lián)合培養(yǎng)方式[24,33],菊科、傘形科的植株較適合固體的培養(yǎng)方式[2,34],茄科、玄參科植株較適合液體淺層培養(yǎng)方式[35-36]。

3 原生質(zhì)體的融合

由于植物原生質(zhì)體沒(méi)有細(xì)胞壁的限制,它為體細(xì)胞遺傳研究和作物改良提供了許多方便[37]。傳統(tǒng)的有性雜交存在遠(yuǎn)緣雜交不親和、雙親花期不遇、雌(雄)不育等難以克服的障礙,嚴(yán)重阻礙了雜交技術(shù)在植物育種中的應(yīng)用。由于分離的原生質(zhì)體無(wú)細(xì)胞壁,可以用物理或化學(xué)方法誘導(dǎo)融合。利用植物原生質(zhì)體進(jìn)行細(xì)胞融合和體細(xì)胞雜交,可以克服有性雜交遇到的障礙。

自 Carlson等在 1972 年獲得第1株煙草體細(xì)胞雜種植株以來(lái)[38],原生質(zhì)體融合技術(shù)在藥用植物中已廣泛應(yīng)用。早期原生質(zhì)體融合的方法主要有硝酸鈉法、高濃度Ca2+高 pH值法、PEG(聚乙二醇)法、PEG-高濃度Ca2+高pH值法、電融合法及聚集微束激光法等,目前廣泛使用的是PEG-高濃度 Ca2+高 pH 值法[39-40]和電融合法[41-42]。但是,PEG-高濃度 Ca2+高 pH值法存在融合頻率低的弱點(diǎn)。Chen等用該方法進(jìn)行原生質(zhì)體融合,融合頻率約45%[43]。近年來(lái)一些研究者發(fā)現(xiàn),加入二甲基亞砜(DMSO)可以有效提高融合頻率[44]。電融合法操作簡(jiǎn)單、快速,融合同步性好,還可以避免化學(xué)藥劑的毒害作用,被大家普遍接受。

4 原生質(zhì)體的再生

在藥用植物原生質(zhì)體培養(yǎng)中,因?yàn)樵|(zhì)體培養(yǎng)的穩(wěn)定性和可重復(fù)性差且經(jīng)驗(yàn)性很強(qiáng),所以由原生質(zhì)體獲得愈傷組織的實(shí)例很多,但是成功獲得原生質(zhì)體再生植株的案例很少。目前,我國(guó)從藥用植物的原生質(zhì)體培養(yǎng)和花藥培養(yǎng)中獲得完整植株的物種有前胡、防風(fēng)、決明子、黨參、石刁柏、枸杞、毛葉曼陀羅等[45]。原生質(zhì)體再生植株的途徑通常有3種:由細(xì)胞團(tuán)形成愈傷組織,然后再分化成植株;直接形成胚狀體,再發(fā)育成植株;由細(xì)胞團(tuán)形成的愈傷組織先分化成胚狀體,然后發(fā)育成植株[1]。據(jù)目前一些研究結(jié)果來(lái)看,大多數(shù)植物再生植株以誘導(dǎo)器官發(fā)生途徑較多,而五加科和傘形科植物的最佳途徑是誘導(dǎo)體胚的發(fā)生[2]。

5 結(jié)論

近年來(lái),國(guó)內(nèi)外廣泛地開(kāi)展了植物原生質(zhì)體的研究工作,植物原生質(zhì)體培養(yǎng)和融合取得了突破性進(jìn)展,主要表現(xiàn)在通過(guò)原生質(zhì)體獲得再生植株的種類不斷增加。其中,藥用植物已經(jīng)從原來(lái)不能雜交的植物胡蘿卜和人參、曼陀羅和顛茄、煙草和龍葵等獲得雜種植株。

雖然藥用植物原生質(zhì)體培養(yǎng)和融合取得很大進(jìn)展,但也存在一些缺陷,如再生植株遺傳性狀的穩(wěn)定性差;雜種植株發(fā)生變異的規(guī)律尚不明確;缺乏完整的藥用植物原生質(zhì)體培養(yǎng)體系,技術(shù)體系基本借鑒于其他植物且相對(duì)落后。這些都是藥用植物原生質(zhì)體研究以后需要重點(diǎn)解決的問(wèn)題。

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EVA的阻燃研究進(jìn)展
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