郭昌瑩 匡裕康 李桃生
作者單位:330029 江西省腫瘤醫院(郭昌瑩,匡裕康);8528523 日本國立長崎大學干細胞研究室(李桃生)
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PKM2基因對CD44+肺癌干細胞增殖及耐藥性的影響
郭昌瑩匡裕康李桃生
作者單位:330029 江西省腫瘤醫院(郭昌瑩,匡裕康);8528523 日本國立長崎大學干細胞研究室(李桃生)
【摘要】目的觀察轉染后CD44+肺癌干細胞內PKM2 基因的表達變化及其對CD44+肺癌干細胞增殖、耐藥性的影響。方法將A549肺癌細胞株繼代培養后,采取免疫磁珠細胞分選法,通過AutoMACS儀器,分選出CD44+細胞。實驗分為實驗組和對照組,將人工合成的針對PKM2 基因的siRNA 片段通過Lipofectamine 2000 轉染細胞,分別采用實時熒光定量聚合酶鏈反應(real-time quantitativePCR,qRT-PCR)和Western blot 法檢測各組細胞中PKM2 的mRNA和蛋白質的表達量,細胞免疫組化染色分析CD44及PKM2表達,并采用MTT法檢測各組細胞的增殖活力。藥性敏感性試驗:在培養基內添加不同濃度化療藥物DDP,并通過MTT assay測試細胞的生長及增殖速度。結果CD44+肺癌干細胞轉染PKM2 siRNA 后,CD44+肺癌干細胞中PKM2 mRNA及蛋白表達減弱(P<0.05),細胞增殖能力減弱,抗腫瘤藥物耐藥性降低。結論PKM2對CD44+肺癌干細胞的增殖起促進作用,同時具有增強抗腫瘤藥物耐藥性的作用。
【關鍵詞】肺癌干細胞;PKM2;增殖;耐藥性
(ThePracticalJournalofCancer,2015,30:641~644)
丙酮酸激酶(pyruvate kinase,PK)是糖酵解過程中的一個關鍵酶,它有4種同工酶分別是M1型、M2型、L型、R型。近年來,研究都集中在丙酮酸激酶M2(pyruvate kinase M2,PKM2)上,在腫瘤細胞中呈高表達并在腫瘤的發生過程中起重要的作用[1]。有研究在肺癌[2]、胃癌[3]、胰腺癌[4-5]和結、直腸癌[6]等多種腫瘤中PKM2 的表達明顯增高,并且促進腫瘤細胞的增殖。本研究通過RNA干擾技術檢測CD44+肺癌干細胞中PKM2 的表達,探討PKM2 在CD44+肺癌干細胞中的表達及其對增殖和耐藥性的影響。
1材料與方法
1.1材料
1.1.1細胞株A549肺癌細胞株購自美國Invitrogen公司。
1.1.2主要儀器PCR 儀(Bio-Rad)、酶標儀(Bio-Rad)、Western blot 儀(Bio-Rad),流式細胞儀(BD FACS Calibur System),AutoMACS儀器(Miltenyi Biotec)。
1.1.3主要試劑DMEM培養基、胰蛋白酶、胎牛血清(FCS,美國Gibico公司)DMSO、Trizol試劑、opti-MEM、Lipofectamine 2000(美國Invitrogen公司),CD44 Microbeads及CD44抗體(美國Miltenyi Biotec公司),反轉錄試劑盒及SYBR Premix、蛋白定量試劑盒、PKM2兔抗人多克隆抗體(美國Cell Signal Technology公司),β-actin(美國Santa Cruz公司),Western blot 二抗試劑盒、四甲基偶氮唑鹽(MTT),PKM2siRNA由美國Santa Cruz公司設計并合成,并同時合成帶熒光標記的陰性對照siRNA。PKM2干擾序列5-GCUGUGGCUCUAGACACUATT-3′;5′-UAGUGUCUAGAGCCACAGCTT-3′;陰性對照組干擾序5-UUCUCCGAACGUGUCACGUTT-3′;5′-ACGUGACACGUUCGGAGAATT-3′。PCR引物由美國Santa Cruz公司合成PKM2 forward,5-CACCTgTACCgTggCATCTTC-3′;PKM2 reverse:5-gTCAgCACAATgACCACATCTC-3′。β-actin forward:5′-TggCACCCAgCACAATgAA-3′;β-actin reverse:5-CTAAgTCATAgTCCgCCTAgAAgCA-3′。
1.2 方法
1.2.1細胞繼代培養按普通的細胞繼代培養方法實施(詳略)。
1.2.2免疫磁珠細胞分選法將細胞與鼠抗人CD44抗體反應,清洗后再與磁珠標記二次抗體(兔抗鼠免疫球蛋白抗體)反應,清洗后通過AutoMACS儀器,分選出CD44+細胞和CD44-陰性細胞。并用FITC熒光標記抗CD44抗體確認出其良好純度情況。
1.2.3細胞轉染轉染前24 h分別取CD44+細胞和CD44-陰性細胞約3.0×105個接種于六孔培養板內,培養于含5% FCS不含抗生素的DMEM培養液,次日觀察細胞密度約達70%~80%開始轉染。將Lipofectamine2000和PKM2 siRNA 按1∶4比例分別稀釋于400 μl的opti-MEM培養液中,5 min內混勻,室溫避光孵育20 min后加入六孔培養板內培養6 h后更換新鮮的含5%FCS不含抗生素的DMEM培養液,繼續培養至48 h,收集細胞分別進行qRT-PCR 和Western blot檢測。
1.2.4RNA提取按1×106個細胞分別加1 ml Trizol的量抽提細胞的總RNA,整個操作過程均在冰上進行,提取的RNA測OD值。
1.2.5qRT-PCR 檢測各組細胞mRNA表達量分別取2 μg總RNA、使用PKM2和內參β-actin的反轉錄引物進行逆轉錄反應,以獲得的cDNA為模板,進行qRT-PCR反應,每組設3個復孔。反應條件為95 ℃預變性3 min,后按95 ℃10 s、57 ℃30 s、65 ℃30 s 反應40個循環,并繪制溶解曲線,以標準曲線法來計算各組中的PKM2表達量比值。
1.2.6Western blot檢測各組蛋白表達提取細胞總蛋白,采用BCA法測定蛋白濃度,以每孔100 μg上樣,經10%的SDS-PAGE凝膠進行電泳分離后,轉移蛋白至PVDF 膜上,將膜置于封閉液中封閉1 h,加入1∶800稀釋的PKM2一抗4 ℃孵育過夜,過夜后用洗膜液洗3次各10 min,加入二抗孵育30 min,洗膜液洗3次各10 min。化學發光試劑顯影直到紫色條帶顯出后用蒸餾水終止顯色,觀察結果。以β-actin 為內參照,計算灰度值比值,作為其蛋白相對表達量。
1.2.7細胞免疫組化染色分析CD44及PKM2表達轉染前24 h分別取CD44+細胞約3.0×105個接種于六孔培養板內,培養于含5%FCS不含抗生素的DMEM培養液,次日觀察細胞密度約達70%~80%開始轉染。將Lipofectamine2000和PKM2 siRNA按1∶4比例分別稀釋于400 μl的opti-MEM 培養液中,5 min內混勻,室溫避光孵育20 min后加入六孔培養板內培養6 h后更換新鮮的含5%FCS不含抗生素的DMEM培養液,繼續培養至48 h后,分別進行細胞免疫組化染色分析。
1.2.8MTT法檢測細胞活性轉染前24 h胰酶消化收集細胞,接種于96孔板(每組4 孔),細胞密度為每孔3×104,轉染步驟如上所述,24 h后每孔加入MTT20 μl,37 ℃孵育4 h后,棄上清液,在每孔加入100 μl的DMSO,避光振蕩10 min,用酶標儀在470 nm波長處測定各孔吸光度值,計算各組的平均值,以間接反映各組活細胞數量。
1.2.9藥性敏感性試驗轉染前24 h胰酶消化收集細胞,接種于96孔板(每組4孔),細胞密度為每孔3×104,轉染步驟如上所述,24 h后在培養基內添加濃度為0 μg/ml、1 μg/ml 、3 μg/ml 、5 μg/ml化療藥物DDP,24 h后每孔加入MTT20 μl,37 ℃孵育4 h后,棄上清液,在每孔加入100 μl的DMSO,避光振蕩10 min,用酶標儀在470 nm波長處測定各孔吸光度值,計算各組的平均值,以間接反映各組活細胞數量。
2結果
2.1免疫磁珠法分選出CD44+腫瘤干細胞
從A549細胞中分選出CD44+肺癌干細胞,并用FITC熒光標記抗CD44抗體確認出其良好純度。
2.2PKM2的轉染效率
細胞通過Lipofectamine2000 瞬時轉染PKM2 siRNA,分別于24 h、48 h、72 h在倒置熒光顯微鏡下觀察實驗組和陰性對照組,發現3個時間段幾乎所有轉染組細胞的胞質、胞核可以觀察到綠色熒光,也就是說使用綠色熒光素標記的干擾RNA轉染成功,證實PKM2 siRNA已轉入細胞并表達。
2.3細胞免疫組化染色分析CD44及PKM2表達
細胞免疫組化染色顯示:PKM2 蛋白表達水平明顯下降,CD44蛋白表達水平也呈不同程度下降。
2.4qRT-PCR 檢測PKM2 的表達
qRT-PCR 檢測顯示,對照組和實驗組細胞內的PKM2表達量分別為1.78和0.86。實驗組中PKM2 mRNA表達水平顯著降低,與對照組相比具有顯著統計學意義(P<0.05),見圖1。

圖1 qRT-PCR檢測PKM2的表達
2.5Western blot檢測PKM2蛋白水平的表達
Western blot檢測顯示:實驗組PKM2蛋白表達水平明顯降低,與對照組相比具有顯著統計學意義(P<0.05),見圖2 。

圖2 Western blot檢測PKM2蛋白水平的表達
2.6MTT法檢測細胞增殖變化
MTT法檢測細胞增殖水平顯示,CD44+肺癌干細胞PKM2被干擾后,細胞的增殖速度明顯減慢,在48 h實驗組OD值明顯低于對照組,差異有顯著統計學意義(P<0.05),見圖3。
2.7藥性敏感性實驗
實驗組與對照組相比,CD44+肺癌干細胞PKM2被干擾后,抗腫瘤藥物耐藥性降低,OD值差異有顯著統計學意義(P<0.05),見圖4。

圖3 MTT法檢測細胞轉染后48 h增殖能力

圖4 MTT法檢測細胞轉染后48 h增殖能力
3討論
一般認為腫瘤干細胞起源于正常的組織干細胞[7],并保有正常組織干細胞的部分特性,包括生存于氧濃度相對低下的組織環境中。目前用于辨別腫瘤干細胞的表面標志物,例如CD44及CD133等,其實基本上都屬于常用的造血干細胞的表面標志物。其中CD44是糖基化的跨膜多肽鏈,作為細胞表面受體接受細胞外基質糖基化、透明質酸化信息的傳導。研究發現,CD44在部分肺癌細胞中表達陽性,并與肺癌的發生、發展和轉移密切相關,顯示了其作為肺癌干細胞標記物的妥當性[8]。盡管腫瘤干細胞具有部分正常組織干細胞的基本特性,與正常的組織干細胞不同,腫瘤干細胞缺乏自穩能力,導致無限制生長,同時對化療藥物及放射線照射具有很強的抵抗能力。其原因或許與腫瘤干細胞保有獨特的信號轉導途徑,缺乏負反饋調節機制等有關[9],但有待于繼續研究證實。
腫瘤細胞生長過程中的一個重要特征是糖代謝異常[10],正常細胞只有在缺氧的情況下才發生糖酵解,而腫瘤細胞無論氧氣是否充足都主要依賴糖酵解進行代謝供能,消耗大量葡萄糖并產生乳酸,此現象由德國生物學家Otto Warburg 所發現,故稱為Warburg效應[11]。研究進一步發現,腫瘤細胞優先進行糖酵解這一代謝現象,主要是因為腫瘤細胞選擇性地高表達糖酵解過程中的一個關鍵酶---丙酮酸激酶M2(pyruvate kinase type M2,PKM2)[12-13]。腫瘤細胞通過表達PKM2獲得了優先進行糖酵解的代謝特性,使其即使在氧含量和營養不足的環境下也得以生存,并獲取大量的能量用以維持自身的高度增殖和擴散。因此,許多最近的研究著手解明PKM2表達調控的分子機制,并試圖通過改變腫瘤細胞PKM2表達及代謝特性來找到腫瘤治療的新途徑[14]。近來,有學者研究發現PKM2 在人肺癌細胞、乳腺癌細胞、人胚腎細胞及結腸癌組織中的表達較正常組織細胞明顯增加[15],應用RNA干擾技術沉默肺癌細胞中的PKM2 基因表達,導入同工酶PKM2,觀察糖代謝方面的變化,發現PKM2 表達是有氧糖酵解所必需的,這種代謝方式使腫瘤具有特異性的生長優勢。本實驗在細胞水平通過Lipofectamine 2000 和PKM2 siRNA形成的復合物成功瞬時轉染CD44+肺癌干細胞。干擾PKM2 表達后,轉染CD44+肺癌干細胞中PKM2 表達量在mRNA水平和蛋白水平均顯著降低,證明了干擾效果的同時也證實了PKM2 在轉染CD44+肺癌干細胞中呈高表達。本實驗發現在細胞水平通過Lipofectamine 2000 和PKM2 siRNA形成的復合物成功瞬時轉染CD44+肺癌干細胞。干擾PKM2 表達后,CD44+肺癌干細胞中CD44在蛋白水平的表達也有不同程度的降低。PKM2 在腫瘤細胞中高表達有多方面原因。現已證實,其中一方面是由于PKM2 酪氨酸位點磷酸化,使四聚體解離為二聚體,在腫瘤細胞中以磷酸化丙酮酸低親和力的二聚體形式優先大量表達PKM2,二聚體的PKM2 與磷酸烯醇丙酮酸親和力低,從而導致磷酸烯醇類物質的堆積,使1,6-二磷酸果糖降解為丙酮酸明顯減少,而DNA合成增加,促進腫瘤細胞的增殖[16]。
本研究證實了PKM2 在肺癌干細胞中高表達,促進腫瘤干細胞增殖,并且影響腫瘤干細胞的耐藥性,對腫瘤細胞的生長起到關鍵作用,有可能成為治療肺癌和其他特異性表達PKM2 的惡性腫瘤的潛在新靶點。
參考文獻
[1]Ferguson EC,Rathmell JC.New roles for pyruvate kinase-M2:working out the Warburg effect〔J〕.Trends Biochem Sci,2008,33(8):359-362.
[2]Shi HS,Li D,Zhang J,et al.Silencing of pkm2 increases the efficacy of docetaxel in human lung cancer xenografts in mice〔J〕.Cancer Sci,2010,101(6):1447-1453.
[3]張波,陳道達,王國斌,等.腫瘤M2 型丙酮酸激酶在胃腸道惡性腫瘤診斷中的臨床價值〔J〕.中華胃腸外科雜志,2004,7 (3):199-201.
[4]Cerwenka H,Aigner R,Bacher H,et al.TuM2-PK (pyruvateki Nase type tumor M2),CA19-9 and CEA in patient benign,malignant and metastasizing pancreatic〔J〕.Res,1999,19(1):849-852.
[5]Kumar Y,Mazurek S,Yang S,et al.In vivo factors influencing tumour M2-pyruvate kinase level in human pancreatic cancer cell lines〔J〕.Tumour Biol,2010,31(2):69-77.
[6]Hardt PD,Toepler M,Ngoumou B,et al.Fecal pyruvate kinase concentrations (ELISA based on a combination of clone 1 and clone 3 antibodies) for gastric cancer screening 〔J〕.Anticancer Res,2003,23(2A):855-857.
[7]Visvader JE.Cells of origin in cancer〔J〕.Nature,2011,469(7330):314-322.
[8]Luo Z,Wu RR,Lv L,et al.Prognostic value of CD44 expression in non-small cell lung cancer:a systematic review〔J〕.Int J Clin Exp Pathol,2014,7(7):3632-3646.
[9]Magee JA,Piskounova E,Morrison SJ.Cancer stem cells:impact,heterogeneity,and uncertainty〔J〕.Cancer Cell,2012,21(3):283-296.
[10]Mazlurek S,Bosckhek CB,Hugo F,et al.Pyrubate kinasetype M2 and its role in tumor growth and spreeding〔J〕.Sen in Cancer Biol,2005,15(4):300-308.
[11]Warburg O.On the origin of cancer cells〔J〕.Science,1956,123(3191):309-314.
[12]Chaneton B,Gottlieb E.Rocking cell metabolism:revised functions of the key glycolytic regulator PKM2 in cancer〔J〕.Trends Biochem Sci,2012,37(8):309-316.
[13]Yang W,Lu Z.Regulation and function of pyruvate kinase M2 in cancer〔J〕.Cancer Lett,2013,339(2):153-158.
[14]Chen J,Xie J,Jiang Z,et al.Shikonin and its analogs inhibit cancer cell glycolysis by targeting tumor pyruvate kinase-M2〔J〕.Oncogene,2011,30(42):4297-4306.
[15]Christofk HR,Vander Heiden MG,Harris MH,et al.The M2 splice isoform of pyruvate kinase is important for cancer metabolism and tumour grow〔J〕.Nature,2008,452 (7184):230-233.
[16]Mazurek S,Eigenbrodt E.The tumor metabolome〔J〕.Anticancer Res,2003,23(2A):1149-1154.
(編輯:吳小紅)
Effect of pkm2 Gene on Proliferation and Drug Resistance in CD44+
Lung Cancer Stem Cells
GUOChangying,KUANGYukang,LITaosheng.JiangxiCancerHospital,Nanchang,330029
【Abstract】ObjectiveTo investigate the expression of PKM2 and its effect on the proliferation and drug resistance in CD44+lung cancer stem cells.MethodsLung cancer A549 cells were separated into CD44+cells and CD44+cells by the immunomagnetic beads method through AutoMACS instrument,and then the PKM2 siRNA was transfected into CD44+lung cancer stem cells by Lipofectamine 2000.The experimental group and the control group were included in the study.qRT-PCR and western blot were used to measure the PKM2 expression at mRNA and protein levels,respectively.The cell proliferation was assessed by MTT assay.Drug sensitivity test:different chemotherapy drugs solubility of DDP were added into the culture medium,and then the cell proliferation was assessed by MTT assay.ResultsPKM2 siRNA was transfected into CD44+lung cancer stem cells,the expression of PKM2 mRNA and protein in CD44+cells decreased significantly (P<0.05),cell proliferation ability decreased,and anti-tumor drug resistance was reduced in CD44+cells.ConclusionPKM2 plays an important role in promoting the proliferation of CD44+lung cancer stem cells and enhancing the anti-tumor drug resistance.
【Key words】Lung cancer stem cells;PKM2;Proliferation;Drug resistance
(收稿日期2015-01-23修回日期 2015-03-16)
中圖分類號:R73-36
文獻標識碼:A
文章編號:1001-5930(2015)05-0641-04
DOI:10.3969/j.issn.1001-5930.2015.05.004