林貴兵,羅光明,許燕萍,沈安,謝安芮,劉勇
摘要:測定了細梗香草(Lysimachia capillipes Hemsl.)中槲皮素和山奈酚含量。用甲醇加熱回流鹽酸水解法,薄層色譜對細梗香草提取液中槲皮素和山奈酚進行定性檢驗;高效液相色譜法(HPLC)同時測定細梗香草中槲皮素和山奈酚含量,色譜條件為ACI C18(250 mm×4.6 mm)色譜柱,流動相為甲醇-0.4%磷酸溶液(60∶40,V/V),流速為1.0 mL/min,檢測波長為368 nm,柱溫為30 ℃。槲皮素在0.24~2.40 μg內線性關系良好,回歸方程為y=0.000 3x-0.006 1,R2為0.997 8,平均回收率為95.91%;山奈酚在0.72~7.20 μg內線性關系良好,回歸方程為y=0.000 2x+0.411 5,R2 為0.997 2,平均回收率為103.06%。細梗香草中槲皮素和山奈酚含量在分別為0.021%與0.065%。
關鍵詞: 細梗香草(Lysimachia capillipes Hemsl.);槲皮素;山奈酚;HPLC
中圖分類號:O657.7+2 ? ? ?文獻標識碼:A ? ? ? 文章編號:0439-8114(2014)23-5848-03
DOI:10.14088/j.cnki.issn0439-8114.2014.23.057
細梗香草(Lysimachia capillipes Hemsl.) 又名滿山香,為報春花科植物全草,具有清熱解毒、祛風、止咳、調經、寧神等功效,臨床主要用于感冒咳嗽、風濕痹痛、氣管炎、哮喘、月經不調、神經衰弱等[1]。現代藥理研究表明,細梗香草具有解熱、抗病毒、抗腫瘤等作用。細梗香草中有效成分以黃酮和皂苷為主,還有有機酸、揮發油等[2-6]。呂武清等[7]對細梗香草藥材測定黃酮苷元山奈酚的含量為0.015%~0.085%。唐琍萍等[8]優化了樣品處理方法同時測定槲皮素和山奈酚含量分別為0.006 1%和0.107 0%。因這些方法都采用層析柱對提取液黃酮苷元進行了純化富集,其成分損失較大。本研究采用直接提取法,減少提取工藝對有效成分的損失,優化提取過程,提高效率,節約成本,并用HPLC法測定細梗香草槲皮素、山奈酚含量,使結果更客觀準確。本研究通過測定細梗香草全草中槲皮素與山奈酚含量,為其質量標準的制定提供基礎數據。
1 ?材料與方法
1.1 ?試驗材料
1100型高效液相色譜儀(Agilent公司),配二極管陣列檢測器(DAD);AB104-N型電子天平(德國Mettler-Toledo公司);薄層色譜硅膠G(青島海洋化工有限公司);甲醇為色譜純,其余試劑均為分析純;試驗用水為去離子水。
槲皮素標準品(批號:20130522,上海金穗生物科技有限公司)與山奈酚標準品(批號:110861-201209,中國食品藥品檢驗研究院),藥材經劉勇副教授鑒定為報春花科珍珠菜屬植物細梗香草(Lysumachia capillipes Hemsl.)的干燥全草(圖1)。
1.2 ?含水量測定
取細梗香草藥材,粉碎后過80目篩,精密稱取粉末2.0 g,平鋪于干燥至恒重的扁形稱量瓶中,精密稱定,打開瓶蓋至105 ℃干燥5 h,蓋好瓶蓋后移至干燥器中,冷卻30 min,再次精密稱定。再于105 ℃干燥1 h,冷卻后稱重,直至連續兩次稱重,重量差不超過5 mg,計算藥材中含水量(%)。
1.3 ?供試品制備
取細梗香草藥材全草同一批次粉末2.0 g,精密稱重置于具塞的玻璃瓶中,精密加入25 mL甲醇,精密稱重,置水浴中加熱回流1 h,冷卻后稱重,補足損失甲醇并混勻;過濾并取濾液10 mL,水浴蒸干,用20 mL甲醇溶解,加入2 mL濃鹽酸,置水浴中加熱回流水解1 h,蒸干,殘渣加甲醇5 mL溶解,搖勻,過0.22 μm微孔濾膜后即為供試品溶液。
1.4 ?對照品制備
精密稱取槲皮素標準品2.4 mg,山奈酚標準品7.2 mg,置于10 mL容量瓶中,加甲醇至刻度,搖勻溶解,濃度分別為槲皮素對照品(Q)0.24 μg/μL、山奈酚對照品(P)0.72 μg/μL,冷藏備用。
1.5 ?薄層色譜
取供試品、槲皮素與山奈酚對照品溶液10 μL分別點于硅膠G薄層板上,以甲苯-醋酸乙酯-甲酸(5∶4∶1,V/V/V)為展開劑,置鹽酸蒸氣飽和的展開缸內,展開,取出,晾干。
1.6 ?色譜系統考察
1.6.1 ?色譜條件 ?色譜柱為ACI C18(250 mm×4.6 mm)柱,流動相為甲醇-0.4%磷酸溶液(60∶40,V/V),流速為1.0 mL/min,檢測波長為368 nm,柱溫為30℃。對照品進樣量為20 μL。
1.6.2 ?線性關系考察 ?分別精密進樣槲皮素與山奈酚混合標準品溶液1、2、4、6、8、10 μL,在上述色譜條件下測定峰面積,將其含量與峰面積進行處理。y表示含量,x表示峰面積;分別得到線性關系和相關系數。
1.6.2 ?精密度試驗 ?精密吸取樣品溶液20 μL,按上述色譜條件重復進樣6次,分別計算槲皮素與山奈酚峰面積RSD值。
1.6.3 ?穩定性試驗 ?精密吸取同一供試品溶液20 μL,按上述色譜條件,在0、1、2、3、4、5 h測定槲皮素與山奈酚峰面積,分別計算其RSD值。
1.6.4 ?重復性試驗 ?取同一批樣品6份,制成供試品溶液,精密吸取20 μL,按上述色譜條件測定槲皮素和山奈酚峰面積,分別計算其RSD值。endprint
1.6.5 ?加樣回收率試驗 ?稱取2.0 g細梗香草藥材粉末,加入5 μL標準品溶液,在“1.3”項操作下制成供試品溶液,每次吸取20 μL,按上述色譜條件進行測定和分析,分別計算槲皮素和山奈酚平均回收率和RSD值。
2 ?結果與分析
2.1 ?含水量
按照2010版藥典規定的方法,對細梗香草全草含水量測定結果為12.43%。
2.2 ?薄層色譜結果
薄層色譜結果如圖2所示,可見在“1.5”條件下,山奈酚與槲皮素分離效果較好,說明“1.3”中供試品制備條件能提取并水解出山奈酚與槲皮素,展開系統合適分離山奈酚與槲皮素。
2.3 ?HPLC系統
線性關系考察結果表明,槲皮素在0.24~2.40 μg內線性關系良好,回歸方程為y=0.000 3x-0.006 1,R2為0.997 8;山奈酚在0.72~7.20 μg內線性關系良好,回歸方程為y=0.000 2x+0.411 5,R2為0.997 2。精密度試驗表明,槲皮素與山奈酚RSD值分別為1.376%、0.367%,說明精密度良好。穩定性試驗結果其RSD值分別為1.51%、1.99%,表明在5 h內樣品比較穩定。重復性試驗中槲皮素的峰面積分別為2 014.3、2 039.1、2 068.6、2 022.3、2 040.0、2 016.8,山奈酚峰面積分別為11 310.9、11 353.1、11 869.9、11 386.6、11 933.0、11 481.2,其RSD值分別為1.00%、2.34%。加樣回收率結果槲皮素和山奈酚平均回收率分別為95.91%、103.06%;RSD值分別為 2.76%、1.12%,結果見表1。
2.4 ?對照品分離
在“1.6.1”色譜條件下,進樣對照品結果(圖3)表明,槲皮素和山奈酚的保留時間分別為5.4 min和8.1 min,分離效果較好。
2.5 ?供試品HPLC圖譜
精密吸取供試品溶液20 μL,在“1.6.1”色譜條件下測定,色譜圖結果如圖4所示。
2.6 ?細梗香草槲皮素、山奈酚含量
本研究對藥材進行了槲皮素與山奈酚含量的測定,結果槲皮素和山奈酚含量分別為0.021%和0.065%。
3 ?小結與討論
3.1 ?提取工藝方法
細梗香草主要有效成分包括黃酮類和皂甙類,以前學者研究黃酮類物質主要采用了柱層析方法富集黃酮類成分,此方法除去了非黃酮類成分,但對黃酮類成分損失較大,本研究采用直接提取鹽酸水解法,損失相對較小,對含量測定相對較為客觀準確。
在用60%、80%、100%甲醇分別進行提取,結果表明純甲醇提取槲皮素、山奈酚提取率最高,水浴加熱時間比較了30、60、90 min提取效果,結果表明提取時間差異不顯著,本課題采用了用純甲醇與水浴加熱60 min。
藥材粉末粗細程度對含量測定的影響,比較了過100、80、60目篩以及粗粉比較,結果表明過100目與80目對有效成分提取含量差異不顯著,而60目以及更粗的粉末幾乎無法提取出黃酮類成分。因此對于細梗香草黃酮類有效成分提取藥材粉末至少要過80目篩。
3.2 ?色譜條件
呂武清等[7]測定山奈酚色譜條件;流動相:甲醇-0.2%磷酸溶液(47∶53,V/V);流速:1.0 mL/min條件下,山奈酚在約8.6 min處出峰。唐琍萍[8]等測山奈酚與槲皮素的條件;流動相:甲醇-水-磷酸(500∶500∶1,V/V/V) 條件下槲皮素在約9.4 min出峰,山奈素在約16.2 min有一色譜峰。本試驗用色譜柱為ACI C18(250 mm×4.6 mm)柱,修改流動相為甲醇-0.4%磷酸溶液(60∶40,V/V),流速為1.0 mL/min,檢測波長為368 nm;柱溫為30 ℃;進樣量為20 μL。在此色譜條件下,槲皮素和山奈酚的保留時間分別為5.4 min和8.1 min,縮短了出峰時間,提高了效率,節約了試驗成本。
3.3 ?小結
細梗香草中皂苷類成分研究比較清楚,而黃酮類成分研究不多,在藥材中它主要以黃酮苷的形式存在,水解為黃酮苷元后,藥材化學成分特異性不強,需進一步深入研究黃酮類化學成分。細梗香草葉的黃酮類成分含量比莖高,具有顯著差異,這也與采收期密切相關,因此本課題組下一步研究細梗香草不同采收期藥材的含量差異,其成分動態積累的規律,研究其最佳時間,為細梗香草質量控制提供基礎依據。
參考文獻:
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