秦璽 ,程龍,饒春明,高凱,楊琦,史新昌,徐小潔,葉棋濃,王軍志
1.中國食品藥品檢定研究院 生物制品檢定所,北京1 000502;2.軍事醫學科學院 生物工程研究所,北京 100850
轉錄因子c-Myb 由原癌基因c-Myb編碼,分別由DNA結合區(DNA binding domain,DBD)、轉錄激活區(central transactivation domain,TAD)、負調節區(negative regulatory domain,NRD)和亮氨酸拉鏈構成,是一個進化上高度保守的蛋白[1],與白血病、結直腸癌、乳腺癌、黑色素瘤等惡性腫瘤的發生發展相關[2-4]。c-Myb 促進細胞的增殖,主要通過調控其靶基因的轉錄來實現自身功能。c-Myc是c-Myb 的靶基因,c-Myb 能夠結合到c-Myc基因啟動子的2個區域,調節c-Myc基因的轉錄和表達[5-8]。c-Myc 在20%的腫瘤患者中處于活化狀態,c-Myc 表達的增強,會促進細胞惡變,最后導致腫瘤的發生[9-10]。臨床標本中c-Myb 的表達與c-Myc 的表達呈正相關性,但c-Myb 各結構域對c-Myc 的調節及作用機制還不清楚。為了進一步明確c-Myb 各結構域對c-Myc 的調節,我們構建了c-Myb 不同結構域的截短突變體,分別命名為c-Myb-1、c-Myb-2、c-Myb-3、c-Myb-4、c-Myb-5和c-Myb-6,并在乳腺癌細胞中檢測了這些突變體對c-Myc 表達水平的調節,為進一步研究c-Myb各結構域的功能及其在腫瘤中的作用機制奠定基礎。
人胚腎細胞293T、乳腺癌細胞MCF-7、真核表達載體pcDNA3.0-FLAG、c-Myb野生型質粒pcDNA3.0-FLAG-Myb、c-Myc由本室保存;大腸桿菌感受態細胞DH5α、細胞裂解液購自天根生化科技有限公司;DMEM 培養基和胎牛血清購自GIBCO公司;限制性內切酶KpnⅠ、XhoⅠ,DNA 連接酶,高保真Taq酶試劑盒購自NEB 公司;質粒提取試劑盒、膠回收試劑盒、PCR 回收試劑盒購自Promega 公司;c-Myc 抗 體、HRP-FLAG 抗體和GAPDH 抗體購自Sigma 公 司;SDS-PAGE 膠 和PVDF 轉膜系統購自Invitrogen 公司;PCR 引物(表1)合成和DNA 測序由北京奧科鼎盛生物公司完成。
以野生型c-Myb為模板,分別進行重組PCR 擴增,膠回收PCR 產物;用KpnⅠ和XhoⅠ分別酶切PCR 產物和空載體pcDNA3.0-FLAG,膠回收酶切產物,16℃連接4 h,連接產物轉化大腸桿菌感受態細胞DH5α,涂布含氨芐西林的LB 平板,37℃過夜生長;挑取平板上的克隆做菌落PCR鑒定,陽性克隆提質粒后用KpnⅠ和XhoⅠ酶切鑒定。
轉染48 h 后收集細胞,加入細胞裂解液及SDS-PAGE 加樣緩沖液,煮沸15 min,12 000 r/min離心2 min,上清液進行SDS-PAGE,電泳后將蛋白轉至PVDF 膜,用5%脫脂奶粉封閉1 h,用一抗孵育1 h,TBST洗膜3次,每次7 min,二抗孵育1 h,TBST洗膜3 次,每次7 min,將含辣根過氧化物酶的ECL底物滴于膜上反應5 min,吸干后用X線膠片顯影。

表1 PCR引物及序列
野生型c-Myb結構域如圖1所示[14]。其中,DBD分為R1、R2和R3 區,均起到與DNA 結合的作用。用引物Y1和Y2 擴增c-Myb 的DBD和TAD 區基因,即為c-Myb-1基因序列,長度為978 bp;用引物Y1和Y3擴增c-Myb 的DBD 區基因,用引物Y4和Y5擴增c-Myb 的NRD 區前段基因,用引物Y1和Y5 重組PCR 將c-Myb 的DBD和NRD 前段基因擴增到一起,即為c-Myb-2基因序列,長度為833 bp;用引物Y1和Y3擴增c-Myb 的DBD 區基因,用引物Y6和Y7擴增c-Myb 的NRD 區后段基因,用引物Y1和Y7 重組PCR 將c-Myb 的DBD和NRD 區后段基因擴增到一起,即為c-Myb-3基因序列,長度為1160 bp;用引物Y1和Y5 擴增c-Myb 的DBD、TAD和NRD 區的前段基因,即為c-Myb-4基因序列,長度為1230 bp;用引物Y1和Y2 擴增c-Myb 的DBD和TAD 區基因,用引物Y6和Y7 擴增c-Myb 的NRD 區后段基因,用引物Y1和Y7 重組PCR 將這2 段基因擴增到一起,即為c-Myb-5基因序列,長度為1556 bp;用引物Y1和Y3 擴增c-Myb 的DBD 區基因,用引物Y4和Y7 擴增c-Myb 的NRD 區基因,用引物Y1和Y7 重組PCR 將c-Myb 的DBD和NRD 區基因擴增到一起,即為c-Myb-6基因序列,長度為1526 bp。將上述6 段PCR擴增片段與pcDNA3.0-FLAG 分別酶切、回收、連接、轉化后,挑取單克隆PCR鑒定,陽性克隆提取質粒后進行雙酶切鑒定,結果c-Myb-1~c-Myb-6酶切條帶均在預期大小位置出現(圖2)。將酶切鑒定為陽性的克隆測序,測序結果與預期序列一致,說明c-Myb各突變體構建成功。

圖1 c-Myb野生型和截短突變體結構圖
將c-Myb的各截短突變體陽性克隆提取質粒后轉染293T 細胞,陰性對照轉染pcDNA3.0-FLAG 空載體,陽性對照轉染pcDNA3.0-FLAG-Myb,48 h 后收集細胞,裂解后用HRP-FLAG 抗體進行Western印跡檢測,用GAPDH 抗體檢測內參。結果顯示,野生型c-Myb和各截短突變體在膜上相應位置均檢測到明顯條帶,表明各c-Myb突變體均可表達(圖3)。
用野生型c-Myb和c-Myb 各突變體分別轉染乳腺癌細胞株MCF-7,6 h后換液,在37℃培養48 h后收集細胞,裂解后做Western 印跡,結果見圖4。相比于野生型c-Myb,含有TAD 區的突變體c-Myb-1、c-Myb-4、c-Myb-5 都能夠促進c-Myc 的表達,而不含TAD 區的突變體c-Myb-2、c-Myb-3、c-Myb-6 則對c-Myc 沒有促進作用。說明c-Myb 對c-Myc 的調控發生在c-Myb 的轉錄調控區,而DNA 結合區和負調節區則沒有對c-Myc的調控作用。

圖2 c-Myb各突變體重組質粒的KpnⅠ/XhoⅠ雙酶切電泳圖譜

圖3 Western印跡檢測c-Myb及各突變體在293T細胞內的表達

圖4 Western印跡檢測MCF-7細胞中c-Myb及c-Myb各突變體對內源c-Myc表達的影響
c-Myb 包含DBD、TAD、NRD 等3 個結構域和1個亮氨酸拉鏈,在本研究中,我們構建了不同結構域的截短突變體,突變體均以DBD 為基礎,加上TAD或NRD,并在乳腺癌細胞中檢測了上述突變體對c-Myb 下游基因c-Myc表達水平的調節,發現含有轉錄激活區的突變體均能上調c-Myc 的表達,說明c-Myb 對c-Myc 表達的促進作用依靠c-Myb 的TAD 區來執行。c-Myb 對其他下游靶基因的調節是否也依賴于TAD結構域,還須實驗來證明。
c-Myb 在乳腺癌的發生發展中發揮重要作用,在所有雌激素受體(ER)陽性的乳腺癌細胞中,c-Myb 均高表達[15-16],c-Myb 是雌激素受體陽性乳腺癌細胞增殖所必需的,在對化學誘導的乳腺癌細胞分化中,c-Myb 的表達被下調,顯示了c-Myb 下調增強了乳腺癌細胞的分化和凋亡[17]。ERα和c-Myb 在乳腺癌細胞中的異常表達和相互作用,提示c-Myb 參與了雌激素誘導的乳腺癌發生、發展、演變等諸多過程[18]。本研究以乳腺癌細胞為模型,證明c-Myb 的TAD 結構域能夠升高乳腺癌細胞中c-Myc 的表達,由于ERα也能夠促進c-Myc 的表達,因此,c-Myb 對c-Myc 的調控是否需要ERα的參與,以及c-Myb 直接調控還是通過ERα間接調控c-Myc,還須進一步的實驗證實。
構建c-Myb 不同結構域的突變體,深入探討c-Myb 不同結構域的功能,有利于研究c-Myb 在惡性腫瘤中發揮功能的分子機制,能夠更明確c-Myb 作為成藥靶點的區域和調節作用,對于研發特異性高,毒性低的抗腫瘤靶向新藥具有重要意義。
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