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激活 SHH 通路對急性腦缺血大鼠SYN、GAP-43的影響

2014-09-12 06:13:22劉花艷婁季宇曾志磊陳苗苗牛廣義
中國老年學雜志 2014年6期
關鍵詞:信號

劉花艷 婁季宇 曾志磊 陳苗苗 牛廣義

(鄭州大學第二附屬醫院神經內科,河南 鄭州 450014)

腦缺血后神經可塑性尤其是突觸再生近年來成為研究的熱點,突觸再生可能是促進神經功能恢復最重要的步驟。Keifer等〔1〕在海馬中研究發現突觸再生是潛在學習和記憶的主要機制,對于神經元損傷后的恢復有重要意義。Sonic Hedgehog(SHH)信號是胚胎發育、組織再生的重要調節器,通過調節細胞增殖、分化和軸突導向參與胚胎發育和出生后的修復,與突觸再生有著密切的聯系〔2〕。SHH對血管神經單元具有內源性抗炎作用,它的異常可以直接導致突觸再生障礙,最終不利于神經功能的恢復〔3〕。SYN是分布于突觸囊泡膜上含量豐富的糖蛋白之一,影響著突觸可塑性,既是突觸發生的標志,又是突觸傳遞效能水平的反映,其免疫定位與定量可以準確反映突觸的分布與密度〔4〕。GAP-43是神經軸突生長和再生的特異性指標,是決定神經再塑的內在因素。目前對SHH 信號通路在腦缺血后突觸再生的研究甚少,本實驗擬用SHH信號通路的激活劑purmorphamine,觀察其對大鼠缺血腦組織突觸再生的相關因子SYN、GAP-43的影響,為缺血性腦血管病的神經功能恢復提供新的治療方法。

1 材料與方法

1.1材料 由實驗動物中心提供雄性SD大鼠76只,清潔級,體重280~350 g。purmorphamine粉劑(CAS Resistry NO.:483367-10-8)由上海浩然生物試劑有限公司提供。使用前先用DMF溶解,再用PBS溶液稀釋。SYN兔抗鼠多克隆抗體,由美國SANTA CRUZ提供。SP9000試劑盒、DAB試劑盒由北京中杉生物工程公司提供。PCR試劑盒、內參β-actin、DEPC水、逆轉錄試劑盒、Trizol由北京全式金生物技術有限公司提供。

1.2模型與分組 參照Zea longa〔5〕等報道的線栓法制作SD大鼠大腦中動脈缺血模型。實驗分為A組(假手術組,n=12)、B組(模型組,n=32)、C組(藥物組,n=32)。其中B組和C組按缺血時間分為4個亞組即6、24、72 h、7 d,每亞組8只。C組于術后按0.69/mg給予purmorphamine溶液腹腔注射,A組和B組于術后給予等劑量的DMF溶液注射。

1.3標本制備 10%水合氯醛麻醉,4%多聚甲醛心臟灌洗固定24 h備用。石蠟包埋后連續切片,制備成4 μm厚度切片。

1.4免疫組化測定缺血半暗帶區域SYN和GAP-43的表達 采用SP法,按照說明書操作。每張切片隨機選取10×40視野5個,應用圖像分析系統得出陽性區平均灰度值。

1.5RT-PCR 檢測缺血半暗帶內GLi1 mRNA。10%水合氯醛麻醉大鼠,斷頭取腦,液氮冷凍后放置-80℃冰箱保存。按試劑盒說明書提取腦組織總RNA,逆轉錄合成cDNA后進行擴增。上游引物為5'CCCTTCTTTAGGATTCCCACC3',下游引物為5'CGGCAGTCCGTCTCATACAC3',擴增條件:94℃預變性2 min,1個循環;94℃變性30 s,55℃退火30 s,72℃延伸2 min,共35個循環;72℃總延伸6 min。實驗中以β-actin作為內參。GLi1擴增片段長度為324 bp,電泳鑒定后采用圖像分析系統進行半定量分析,計算目的基因GLi1與β-actin的DNA條帶灰度比值。

2 結 果

2.1GLi1 mRNA表達情況 與A組比較,B組和C組GLi1 mRNA表達均升高(P<0.05);B組皮質缺血區GLi1 mRNA于6 h后開始升高,24 h達高峰,之后有所下降但維持在較高水平。C組各個時間點GLi1 mRNA與B組相比顯著增高(P<0.05)。見表1。

2.2SYN表達情況 可見棕黃色顆粒沉積在神經細胞表面,此為SYN 陽性表達,胞質中僅有較弱的反應。缺血側皮質區灰度值在6 h開始降低,72 h最顯著,7 d后開始上升,與A組相比各時間點明顯降低(P<0.05)。C組在缺血后6、24、72 h、7 d時SYN的表達明顯高于B組(P<0.05)。見表2,圖2。

表1 大鼠腦組織中各個時間點GLi1 mRNA 表達

表2 大鼠腦組織各時間點SYN表達(平均陽性區灰度值)

2.3GAP-43表達情況 可見皮質區GAP-43的免疫活性較其他部位高,呈小點狀或細顆粒狀沉積。A組大鼠在皮質和部分腦區GAP-43均有表達,且雙側對稱,在丘腦及其腦白質區GAP-43表達很低。其中缺血側皮質區GAP-43的免疫活性在缺血后6 h表達量開始上升,72 h升高最為顯著,7 d后開始下降,與A組相比差異有統計學意義(P<0.05);C組大腦皮質GAP-43在6、24、72 h、7 d免疫活性明顯高于B組(P<0.05)。見表3,圖3。

表3 大鼠腦組織各時間點GAP-43表達(平均陽性區灰度值)

A組

B組

C組

圖2 B、C兩組不同時點SYN表達(×400)

圖3 B、C組不同時點GAP-43表達(×400)

3 討 論

近年來,人們逐步認識到中樞神經系統具有可塑性,正是因為存在這種可塑性,才使得損傷后的腦組織能夠通過結構重建、功能代償使腦功能得到恢復。研究發現SHH信號通路與突觸再生有著密切的聯系,抑制SHH信號可以加重急性缺血性中風引起的腦損傷〔6〕。鞘內注射SHH蛋白增加了大腦室管膜下區神經祖細胞的增殖,促進中風后的功能恢復〔7〕。在參與突觸再生中,SHH可能是通過和受體Ptch結合引起Smo蛋白的活化,終于導致GLi鋅指轉錄因子家族的信號轉導,Gli家族包括GLi1、GLi2 和GLi3,GLi1的表達在Hedgehog信號通路起到始動開關的作用。 在突觸的發育中,SHH起著重要作用〔8〕,Tao-Cheng等〔9〕在成人的突觸內發現Ptch和Smo存在于突觸小泡中,參與突觸的再生。在缺血腦損傷初期,增加SHH蛋白能刺激突觸再生,為受損的組織提供營養及促進功能的恢復〔10〕。另外,SHH的神經保護作用可能通過多種機制增加神經祖細胞增殖〔11〕,其中包括抗氧化和抗凋亡,而且還可以通過其他受體的角色潛在的機制需要進一步研究。

purmorphamine是SHH信號轉導通路的激活劑,可與通路的Smo結合使其空間構象發生改變,進而激活下游分子GLi。本實驗發現在腦缺血后加入 purmorphamine 后激活了下游轉錄因子GLi1 mRNA 的表達,從而激活SHH信號轉導通路。SYN是一種與突觸結構和功能密切相關的鈣結合蛋白,是神經出芽反映的代表性結構蛋白,常被作為突觸重建和神經可塑性的重要標志物之一。GAP-43是神經組織中特有的一種糖蛋白,對神經系統發育過程中的軸突生長和突觸形成有重要作用〔12〕,在正常腦組織中GAP-43很少表達,只有在損傷情況下才增高。本研究發現腦缺血應用 SHH信號通路激活劑后,大鼠皮質缺血半暗帶區GAP-43、SYN免疫活性在各個時間點的表達明顯高于模型組,并且上調峰值,提示purmorphamine對腦缺血后大鼠腦的可塑性產生了影響,對大鼠腦缺血后神經細胞功能恢復及突觸代償有促進作用。推測激活SHH信號通路可能是一種潛在的腦血管病治療的新方法。

4 參考文獻

1Keifer J,Zheng Z. AMPA receptor trafficking and learning〔J〕.Eur J Neurosci,2010;32 (2): 269-77.

2Marti E,Bovolenta P. Sonic hedgehog in CNS development: one signal,multiple outputs〔J〕. Trends Neurosci,2002;25(2): 89-96.

3Sims JR,Lee SW,Topalkara K,etal. Sonic hedgehog regulates ischemia/hypoxia-induced neural progenitor proliferation〔J〕.Stroke,2009;40 (11): 3618-26.

4Simonyi A,Wang Q,Miller RL,etal. Polyphenols in cerebral ischemia: novel targets for neuroprotection〔J〕. Mol Neurobiol,2005;31(13):135-47.

5Wiedenmann B,Franke WW. Identiffcation and localization of synaptophysin,an integral membrane glycoprotein of Mr 38,000 chatacteristic of presynaptic vesicles〔J〕.Cell,1985;41(3):1017-28.

6Ji H,Miao J,Zhang X,etal. Inhibition of sonic hedgehog signaling aggravates brain damage associated with the down-regulation of Gli1,Ptch1 and SOD1 expression in acute ischemic stroke〔J〕. Neurosci Lett,2012;506 (1):1-6.

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8Parra LM,Zou Y. Sonic hedgehog induces response of commissural axons to Semaphorin repulsion during midline crossing〔J〕. Nat Neurosci,2010;13(1):29-35.

9Tao-Cheng JH,Dosemeci A,Gallant PE,etal. Rapid turnover of spinules at synaptic terminals〔J〕. Neuroscience,2009;160(1):42-50.

10Akazawa C,Tsuzuki H,Nakamura Y,etal. The upregulated expression of sonic hedgehog in motor neurons after rat facial nerve axotomy〔J〕. J Neurosci,2004;24 (36):7923-30.

11Hashimoto M,Ishii K,Nakamura Y,etal. Neuroprotective effect of sonic hedgehog up-regulated in Schwann cells following sciatic nerve injury〔J〕. J Neurochem,2008;107 (4): 918-27.

12Miyake K,Yamamoto W,Tadokoro M,etal. Alterations in hip-pocampal GAP-43,BDNF,and L1 following sustained cerebral ischemia〔J〕.Brain Res,2002;935 (12) : 24-31.

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