任雪萍 姜 藻 張全安
我們以人胃癌SGC-7901細胞為研究對象,觀察環巴胺對胃癌細胞生長和β-catenin、E-cadherin基因表達的影響,初步探查其抗腫瘤的機制,為胃癌治療尋找新靶點,為環巴胺臨床應用提供實驗依據。
人胃癌細胞株SGC-7901購自中國科學院上海細胞生物學研究所;環巴胺(Cyclopamnie)購自Biomol公司;RPMI 1640培養基購自美國Gibco公司,胎牛血清(FBS)購自杭州四季青公司;四甲基偶氮唑藍(MTT)、二甲基亞砜(DMSO)、AO/EB染色試劑盒購自Sigma公司;細胞周期試劑盒購自南京凱基生物科技發展有限公司;β-actin及β-catenin、E-cadherin基因引物購自Invitrogen公司;RT-PCR試劑盒購自TaKaRa公司。
1.2.1 細胞培養 人胃癌細胞株SGC-7901細胞在5%CO2、37℃條件下,用含10%胎牛血清、青霉素(100 U/ml)及鏈霉素(100 μg/ml)的RPMI-1640培養液培養,每3天傳代1次,取對數生長期細胞實驗。
1.2.2 MTT法檢測細胞增殖抑制情況 用胰酶消化細胞制成單細胞懸液,調整細胞密度為1×104/ml,接種于96 孔培養板中,每孔 200 μl,在 37℃、5%CO2的飽和濕度條件下孵育過夜。實驗分為實驗組、陰性對照組及空白對照組,實驗組加入終濃度分別為5 μmol/L、10 μmol/L、20 μmol/L、40 μmol/L、80 μmol/L、120 μmol/L的環巴胺,每組設3個復孔。各組分別培養24 h、48 h、72 h后,每孔加入5 mg/ml的MTT 20 μl,繼續培養4 h,離心棄上清,每孔加入 DMSO 150 μl,振蕩器上振蕩10 min,混勻后應用酶聯免疫檢測儀于490 nm波長處測吸光度(A)值,細胞存活率(%)=(藥物干預組A平均值/陰性對照組A平均值)×100%。實驗重復3次。
1.2.3 AO/EB染色熒光顯微鏡觀察細胞凋亡 取對數生長期SGC-7901細胞,胰酶消化制成單細胞懸液,接種于六孔培養板中,培養過夜后加入終濃度為20 μmol/L、40 μmol/L、80 μmol/L 的環巴胺,另設陰性對照組,繼續培養24 h。收集各組細胞,調整細胞濃度為106/L;取100 μl細胞懸液,加入5 μl混合熒光染液:100 μg/ml丫碇橙(AO)和 100 μg/ml嗅乙啶(EB)混勻;取上述混合液一滴,滴在潔凈玻片上,加蓋玻片后立即置熒光顯微鏡下觀察凋亡細胞形態。
1.2.4 流式細胞術檢測細胞凋亡周期 取對數生長期的SGC-7901細胞接種于100 ml培養瓶中,分別加入終濃度為 20 μmol/L、40 μmol/L、80 μmol/L 的環巴胺,作用24 h后,收獲各組細胞制成單細胞懸液,4℃PBS洗滌3次,細胞重懸于預冷的80%乙醇中,吹打均勻,4℃儲存過夜,離心細胞,PBS洗滌細胞3次。依次加入100 μl Rnase A 及 PI,4℃ 避光染色 30 min,應用流式細胞儀測定細胞周期,實驗重復3次。
1.2.5 RT-PCR 法檢測 β-catenin、E-cadherin mRNA表達 分別收集經 20 μmol/L、40 μmol/L、80 μmol/L的環巴胺作用24 h的細胞及空白對照組細胞。按TRIzol試劑盒說明書提供的方法提取各組細胞總RNA,按RT-PCR試劑盒說明書提供的方法將其反轉錄成cDNA,以此cDNA為模板進行PCR擴增。β-catenin:上游引物為 5'-CCCACTAATGTCCAGCGTTT-3',下游引物為5 '-TCACGATGATGGGAAAGGTT-3 ',產物長度為323bp;E-cadeherin:上游引物為 5'-GGCCAGGAAATCACATCCTA-3',下游引物為5 '-GTGCAGTGGCTCATGTCTGT-3',產物長度為407 bp;β-actin:上游引物為5-AGACGGGGTCACCCACACTGTGCCCATCTT-3',下游引物為 5 '-GAGAAGCATTTGCGGTGGACGATGGAGGC-3 ',產物長度為600 bp。PCR擴增條件:94℃ 2 min,94℃30 s,59℃ 30 s,72℃ 40 s,30 個循環,72℃ 延伸7 min。RT-PCR產物進行瓊脂糖電泳,凝膠成像系統拍照,分析灰度值。實驗重復3次。
實驗所得數據以均數 ±標準差表示,應用SPSS13.0軟件包進行統計分析。多組間比較采用單因素方差分析,兩組間比較采用SNK檢驗。
表1 環巴胺對人胃癌SGC-7901細胞的抑制作用(±s,%)

表1 環巴胺對人胃癌SGC-7901細胞的抑制作用(±s,%)
注:與對照組比較,▲為P<0.05;相同時間點組內或相同劑量組內兩兩比較,★為 P<0.05。
環巴胺濃度(μmol/L)生長抑制率24 h 48 h 72 h 0 0 0 0 5 5.66 ±0.67▲ 9.89 ±0.31▲ 14.76 ±0.84▲★10 11.75 ±0.99▲★ 16.79 ±0.54▲★ 22.03 ±0.78▲★20 19.19 ±0.37▲★ 25.68 ±1.23▲★ 31.01 ±0.36▲★40 35.07 ±1.69▲★ 46.06 ±0.79▲★ 54.55 ±1.37▲★80 58.49 ±1.34▲★ 68.73 ±2.46▲★ 79.76 ±0.82▲★120 69.36 ±1.60▲★ 80.14 ±1.36▲★ 89.19 ±1.20▲★
由表1可見,不同濃度的環巴胺作用于人胃癌SGC-7901細胞24、48、72 h后,細胞生長受到不同程度抑制。隨著環巴胺濃度的增加及作用時間的延長,其生長抑制作用增強,環巴胺的作用強度與劑量和作用時間成呈正相關,藥物組與對照組比較以及各藥物組間比較差異均具有統計學意義(P<0.05)。
熒光顯微鏡下可見,正常陰性對照組細胞結構正常,核染色質著均勻綠色。環巴胺實驗組可見早期凋亡細胞,細胞縮小、變圓,邊緣毛糙,核染色質著亮綠色呈固縮狀或圓珠狀,位于細胞的一側;同時可見晚期凋亡細胞,核染色質呈桔紅色,濃聚和偏向。隨著環巴胺濃度的增加,早期凋亡及晚期凋亡細胞增多。
人胃癌SGC-7901細胞經不同濃度環巴胺作用24 h后,細胞周期中DNA合成前期(G0/G1期)的比例增高,DNA合成期(S期)的比例降低,G2/M期變化不明顯,G1周期前出現凋亡峰,細胞阻滯在G0/G1期,與對照組比較差異有統計學意義(P<0.05),各藥物組間比較差異也有統計學意義(P<0.05),見表2。
RT-PCR結果表明在人胃癌細胞SGC-7901中存在E-cadherin、β-catenin mRNA異常表達。與陰性對照組相比,經20μmol/L、40 μmol/L、80 μmol/L 的環巴胺作用24 h后,E-cadherin mRNA的表達水平上調,β-catenin mRNA的表達水平下調。在圖像處理系統上分析得出各基因產物的光密度,以β-actin的光密度值為參照物,得到E-cadherin、β-catenin mRNA表達的半定量結果。此結果顯示隨著環巴胺濃度增加,E-cadherin mRNA表達水平增高越明顯,β-catenin mRNA表達水平下降越明顯,與對照組比較差異有顯著性(P<0.05),見圖1。
表2 環巴胺作用于SGC-7901 24 h后細胞周期變化情況(±s,%)

表2 環巴胺作用于SGC-7901 24 h后細胞周期變化情況(±s,%)
注:*為不同濃度環巴胺作用后G0/G1期比較,P<0.05;且兩兩比較有統計學意義,P<0.05。
環巴胺濃度(μmol/L)細胞周期G0/G1期 S期 G2/M期0 51.79 ±1.45*11.02 ±1.34 7.01 ±1.37 39.32 ±1.56 8.89 ±1.32 20 58.01 ±1.33* 33.93 ±1.24 8.06 ±0.54 40 67.69 ±2.01* 24.46 ±1.11 7.85 ±1.68 80 81.97 ±2.11*

圖1 不同濃度環巴胺作用SGC-7901細胞24 h后E-cadherin和β-catenin mRNA的表達變化
本試驗以人胃癌細胞SGC-7901為研究對象,MTT比色法結果顯示環巴胺對SGC-7901細胞的增殖有顯著抑制作用,其作用強度與劑量和作用時間呈正相關。熒光顯微鏡下觀察到典型的凋亡細胞形態。流式細胞分析結果顯示,與陰性對照組相比,環巴胺處理組G0/G1期細胞所占比例隨著濃度的增加逐漸上升,而S期細胞的比例則隨著濃度的增加逐漸下降。環巴胺將細胞阻滯在G0/G1期,抑制細胞DNA前期的合成,阻滯細胞進入周期復制,從而引起細胞凋亡。
胃癌浸潤和轉移是一個復雜的過程,目前研究表明,Wnt信號通路參與胃癌形成,在大多數胃癌中被激活[1]。Wnt信號通路是自我更新信號通路之一,與腫瘤的發生發展、侵襲轉移密切相關,Wnt信號通路的下游靶基因包括 CD44、MMP-7、cylinD1、c-Myc、Claudin-1等[2]。β-連環蛋白(β-catenin)是 Wnt信號通路的正向調節因素及重要的效應分子。正常發育成熟細胞β-catenin處于低或無表達狀態,Wnt信號通道處于關閉狀態;β-catenin的異常表達可引起Wnt信號通路的異常激活,從而引起其下游靶基因的異常激活,進而誘發細胞癌變[3]。韓競春等[4]應用免疫組化、RT-PCR和Western蛋白印跡等方法在胃癌組織和細胞系中檢測Wnt信號途徑的狀態,結果顯示Wnt-2、β-catenin和TCF4在胃癌組織中的表達明顯高于癌前病變組織,Wnt信號通路呈活化狀態。Cheng等[5]在大部分中國胃癌組織(包括腸型和彌漫型胃癌)中都檢測到β-catenin異常的核內積聚,與淋巴結轉移、遠處轉移及腫瘤分期呈正相關。Zhang等[6]結果顯示β-catenin表達在胃癌組織中的表達顯著高于正常組織,且其表達水平與腫瘤大小、浸潤深度、淋巴結轉移、TNM分期相關。本研究胃癌細胞SGC-7901中β-catenin mRNA呈異常高表達,經 20 μmol/L、40 μmol/L、80 μmol/L 環巴胺處理24 h后,β-catenin mRNA表達水平逐漸下降,本試驗結果表明在胃癌細胞SGC-7901中存在Wnt信號通路的激活,環巴胺可能通過下調β-catenin的表達而抑制Wnt信號通路,進一步下調各種靶基因的轉錄,從而發揮抗腫瘤作用。
上皮型鈣黏蛋白(E-cadherin)是細胞間黏附連接的主要分子,可與細胞內的連環蛋白(主要為β-catenin)結合形成鈣黏附素-連環蛋白復合體,從而介導細胞間黏附,其陽性表達可以抑制腫瘤轉移[7]。正常胃黏膜上皮E-cadherin呈強陽性表達。低表達或失活的E-cadherin導致細胞黏附功能降低或喪失,一方面使得腫瘤細胞易發生浸潤和轉移;另一方面可釋放βcatenin,胞內游離的β-catenin增加,從而激活Wnt信號通路,使細胞發生轉化[8]。Sun等[9]應用免疫組化法檢測58例胃癌組織、40例癌前病變胃組織和42例慢性非萎縮性胃炎組織,結果顯示胃癌組織中β-catenin的表達明顯高于癌前病變胃癌組織和慢性非萎縮性胃炎組織,E-cadherin表達水平明顯低于癌前病變胃組織和慢性非萎縮性胃炎組織。Yuan等[10]應用免疫組化檢測165胃癌組織,結果表明在胃癌組織中E-cadherin蛋白表達水平顯著降低。Xing等[11]進行的一項薈萃分析,評估了26項研究包括4 383例胃癌患者E-cadherin的免疫組化表達和總生存期與臨床病理特征的關聯,結果顯示E-cadherin表達下調與TNM分期、浸潤深度、淋巴結轉移、遠處轉移、分化程度、血管侵犯和胃癌的組織學類型相關,是胃癌不良預后因素。本實驗研究結果顯示,在胃癌細胞SGC-7901中,E-cadherin mRNA 呈低表達,經 20 μmol/L、40 μmol/L、80 μmol/L環巴胺處理24 h后,E-cadherin mRNA表達水平逐漸上升,與對照組相比具有統計學意義。E-cadherin基因表達上調,一方面增強了細胞間的黏附作用,另一方面使胞內游離的β-catenin降低,核內轉移減少,從而可能進一步抑制Wnt信號通路,這可能是環巴胺誘導SGC-7901細胞凋亡的又一分子機制。
本試驗證實,在胃癌細胞 SGC-7901中存在βcatenin、E-cadherin的異常表達,環巴胺可抑制胃癌細胞生長并誘導凋亡,其機制可能與引起G0/G1期阻滯以及調節以上2種基因的表達有關。
[1]徐 東,楊小龍.Wnt-1或Wnt/beta-catenin信號通路在惡性腫瘤中研究進展〔J〕.實用癌癥雜志,2010,25(3):326.
[2]MacDonald BT,Tamai K,He X.Wnt/β-catenin signaling:components,mechanisms and diseases〔J〕.Developmental Cel,2009,17(1):9.
[3]Gehrke I,Gandhirajan RK,Kreuzer KA.Targeting the WNT/beta-catenin/TCF/LEF1 axis in solid and haematological cancers:Multiplicity of therapeutic options〔J〕.Eur J Cancer,2009,45(16):2759.
[4]韓競春,黃 磊,張開立,等.Wnt信號途徑在胃癌組織和細胞系中的活化〔J〕.臨床軍醫雜志,2008,36(1):7.
[5]Cheng XX,Wang ZC,Chen XY,et al.Correlation of Wnt-2 expression and β-catenin intracellular accumu-lation in Chinese gastric cancers:relevance with tumour dissemination〔J〕.Cancer Letters,2005,223(2):339.
[6]Zhang H,Xue Y.Wnt pathway is involved in advanced gastric carcinoma〔J〕.Hepatogastroenterology,2008,55(84):1126.
[7]Rodriguez FJ,Lewis-Tuffin LJ,Anastasiadis PZ.E-cadherin's dark side:Possible role in tumor progression〔J〕.Biochimica Et Biophysica Acta,2012,1826(1):3756.
[8]Brooks SA,Lomax-Browne HJ,Carter TM,et al.Molecular interactions in cancer cell metastasis〔J〕.Actahistochemica,2010,112(1):3.
[9]Sun GY,Wu JX,Wu JS,et al.Caveolin-1,E-cadherin and β-catenin in gastric carcinoma,precancerous tissues and chronic non-atrophic gastritis〔J〕.Chin J Cancer Res,2012,24(1):23.
[10]Yuan W,Chen Z,Wu S,et al.Expression of EphA2 and E-cadherin in gastric cancer:correlated with tumor progression and lymphogenous metastasis〔J〕.Pathol Oncol Res,2009,15(3):473.
[11]Xing X,Tang YB,Yuan G,et al.The prognostic value of E-cadherin in gastric cancer:A meta-analysis〔J〕.Int J Cancer,2012,11(20):10.