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軟脂酸抑制C2C12肌細胞PGC-1α的表達

2013-10-10 02:13:58牛尚梅馬慧娟劉晶高哲李彩英馬博清
河北醫藥 2013年24期
關鍵詞:胰島素

牛尚梅 馬慧娟 劉晶 高哲 李彩英 馬博清

游離脂肪酸(FFA)水平升高在肥胖、胰島素抵抗和2型糖尿病中發揮重要作用[1]。不同類型脂肪酸與胰島素敏感性關系不盡相同,其中長鏈飽和與不飽和脂肪酸與胰島素抵抗(IR)關系密切。實驗表明給予大鼠高飽和脂肪酸飲食可以導致大鼠IR[2],具體機制尚不十分清楚,可能與骨骼肌過氧化物酶體增生物激活受體γ共激活因子1α(peroxisome proliferator-activated receptorγ coactivator 1α,PGC-1α)的轉錄調控有關。PGC-1α是一種核轉錄共激活因子,其在線粒體功能和IR中的作用成為近年來研究的熱點。動物研究發現Zucker糖尿病肥胖大鼠骨骼肌PGC-1α表達下調[3]。高脂與PGC-1α表達,IR關系密切。本研究擬采用不同類型長鏈脂肪酸培養C2C12肌細胞,探討脂肪酸類型及濃度對骨骼肌PGC-1α表達的影響。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑 實驗用脂肪酸購自Sigma公司,C2C12細胞株購自北京協和細胞庫。目的引物由上海生物工程公司合成,β-actin 上游引物:5’-ACC ACA GTC CAT GCC ATC AC-3’,下游引物:5’-TCC ACCACCCTGTTGCTGTA-3’;PGC-1α 上游引物5’-TCAGTCCTCACTGGTGGACA-3’,下游引物 3’-TGCTTCGTCGTCAAAAACAG-3’。

1.2 實驗方法

1.2.1 細胞培養與傳代:C2C12肌細胞貼壁生長于含20%小牛血清、0.6/L谷氨酞胺,6.672/LHEPES,100 U/ml青霉素、100μg/ml鏈霉素的RPMI1640中,于37℃,5%CO2孵箱培養。以1X106/培養瓶傳代細胞,3天后分別予 0 mmol/L、0.25 mmol/L、0.5 mmol/L、0.75 mmol/L 軟脂酸、硬脂酸、棕櫚酸、油酸和亞油酸處理細胞,持續24 h孵育。

1.2.2 試驗分組:對照組(Con),軟脂酸組(C16∶0)、硬脂酸組(C18∶0)、棕櫚酸(C16∶1)組、油酸組(C18∶1)以及亞油酸組(C18∶2),均分別采用0.25、0.5和0.75 mmol/L三個濃度孵育C2C12細胞。

1.2.3 熒光定量PCR分析:取RNA溶液4μl,經1%瓊脂糖凝膠電泳檢測,明顯可見28S、18S條帶,且28S為18S條帶的兩倍,5S條帶較弱,且彌散,表明RNA降解較少,完整性良好。用756型紫外分光光度計分別測定 OD260與 OD280,選用OD260/OD280比值為1.8~2.0的RNA用作反轉錄。PCR熱循環參數:96℃ 4min,然后三步反應:94℃ 30 s,58℃ 30 s,72℃30 s,進行40個循環,于每個循環的第三步72℃ 30 s收集熒光信號。擴增完畢后,進入結果分析界面,以β-actin為內參照基因,與對照組相比,得到目的基因表達的相對定量值(RQ值),將RQ值用于統計分析。

1.3 統計學分析應用SPSS13.0軟件統計,計量資料以±s表示,多個樣本均數比較采用單因素方差分析,P<0.05為差異有統計學意義。

2 結果

2.1 不同濃度脂肪酸對肌細胞PGC-1αmRNA表達的影響在脂肪酸濃度為0.25 mmol/L時,軟脂酸組(C16∶0)、硬脂酸組(C18∶0)、棕櫚酸組(C16∶1)、油酸組(C18∶1)以及亞油酸組(C18∶2)的PGC-1αmRNA表達與對照組比較均無統計學意義(P >0.05)。見表1。

在脂肪酸濃度為0.5 mmol/L和0.75 mmol/L時,軟脂酸組PGC-1αmRNA表達較對照組降低(P<0.05);棕櫚酸組、油酸組、亞油酸組PGC-1αmRNA表達與對照組和軟脂酸組比較差異無統計學意義(P>0.05)。見表1。

2.2 軟脂酸孵育時間對PGC-1αmRNA表達的影響 軟脂酸培養的肌細胞,在1 h,PGC-1αmRNA表達較0 h差異無統計學意義(P >0.05),在培養6 h、12 h、24 h PGC-1α mRNA 表達較0 h。1 h降低,而24 h降低最明顯,差異有統計學意義(P<0.01)。見表2。

表1 不同濃度脂肪酸孵育后PGC-1αmRNA表達變化比較

表1 不同時間脂肪酸孵育后PGC-1αmRNA表達變化比較

3 討論

FFA水平升高可能導致肌內脂質堆積,從而產生IR,具體機制尚不十分清楚,可能與骨骼肌PGC-1α的轉錄調控有關。血中FFA是由不同長度和飽和度的脂肪酸組成,根據碳鏈的不同分為短鏈(2~4)、中鏈(6~8)和長鏈(10~24),根據有無雙鍵分為飽和與不飽和脂肪酸。不同類型脂肪酸與胰島素敏感性關系不盡相同,其中長鏈飽和與不飽和脂肪酸與胰島素抵抗關系密切。胰島素抵抗者骨骼肌甘油三酯以飽和脂肪酸增加為主,并且與胰島素抵抗有直接關系[4]。骨骼肌PGC-1α表達下降使線粒體氧化葡萄糖和脂肪酸能力降低,過多脂質在相應組織骨骼肌堆積,導致胰島素抵抗[5]。研究發現給正常人輸入脂肪酸混合劑24小時降低了肌肉PGC-α和氧化磷酸化基因的表達[6],通過慢性運動可以改變PGC-1α的表達,改善胰島素敏感性[7]。體外實驗證實軟脂酸可以誘導骨骼肌細胞 IR,而油酸可以逆轉這一作用[8],軟脂酸亦可以誘導3T3-L1脂肪細胞胰島素抵抗,其機制可能與激活JNK通路有關[9]。本研究發現飽和脂肪酸,軟脂酸孵育的C2C12肌細胞PGC-1α的表達下降,這與Crunkhorn等[10]的研究結果一致。而不飽和脂肪酸,棕櫚酸組、油酸組、亞油酸組培養的肌細胞PGC-1α的表達較對照組無明顯變化。說明脂肪酸誘導的PGC-1α的下降依賴于他們的結構或特殊的氧化產物。

Coll等[11]研究了不同時間軟脂酸對骨骼肌細胞PGC-1α表達的作用,發現1 h無變化,4 h(2倍,有意義)和8 h(1.5倍,有意義)輕度變化,較大下降在16 h后,16 h后表達下降55%。本研究顯示軟脂酸對PGC-1α的抑制作用出現在6 h,24 h抑制作用最強,與上述結果類似,說明飽和脂肪酸對PGC-1α的抑制作用有時間依賴性,可能與底物的作用或氧化增加有關。本研究采用250、500、700μmol/L三個濃度,在低濃度(250μmol/L)PGC-α表達無明顯變化,但在500μmol/L即出現PGC-1α表達下降,700μmol/L濃度時更明顯。已知在肥胖和2型糖尿病者血漿 FFA升高,一般都超過 500μmol/L,而本研究在500μmol/L已經出現 PGC-1α表達下降,分析可能是血漿中FFA是不同類型脂肪酸的總合,包括長鏈、短鏈、飽和以及不飽和。所以單純一種脂肪酸來說500μmol/L的濃度已經是比較高的劑量,從而影響了PGC-α的表達,而且這種影響與脂肪酸濃度有關。

軟脂酸誘導的PGC-1α表達下降可同時伴有許多三羧酸循環和氧化磷酸化基因的下降,基因敲出小鼠PGC-1α表達下降使線粒體基因表達和骨骼肌數量降低[13]。所以軟脂酸誘導的PGC-1表達下降,可能導致線粒體功能異常,并且這種異常與胰島素抵抗有關,但具體的作用機制仍然不清楚,需要進一步的研究。

1 Boden G,Shulman GI.Free fatty acids in obesity and type 2 diabetes:defining their role in the development of insulin resistance and beta-cell dysfunction.Eur JClin Invest,2002,32(Suppl3):14-23.

2 宋光耀,高宇,周宇,等.高飽和脂肪酸、高不飽和脂肪酸、高糖不同飲食誘導高血壓伴胰島素抵抗大鼠的研究.中國病理生理雜志,2006,22:2270-2273.

3 Sriwijitkamol A,Ivy JL,Christ-Roberts C,et al.LKB1-AMPK signaling in muscle from obese insulin-resistant Zucker rats and effects of training.Am JPhysiol Endocrinol Metab,2006,290:E925-932.

4 Manco M,Mingrone G,Greco AV,et al.Insulin resistance directly correlates with increased saturated fatty acids in skeletal muscle triglycerides.Metabolism,2000,49:220-224.

5 Barroso E,Rodríguez-Calvo R,Serrano-Marco L,et al.The PPARβ/δ activator GW501516 prevents the down-regulation of AMPK caused by a high-fat diet in liver and amplifies the PGC-1α-Lipin 1-PPARα pathway leading to increased fatty acid oxidation.Endocrinology,2011,152:1848-1859.

6 Richardson DK,Kashyap S,Bajaj M,et al.Lipid infusion decreases the expression of nuclear encoded mitochondrial genes and increases the expression of extracellular matrix genes in human skeletal muscle.J Biol Chem,2005,280:10290-10297.

7 Li L,Pan R,Li R,et al.Mitochondrial biogenesis and peroxisome proliferator-activated receptor-γ coactivator-1α (PGC-1α)deacetylation by physical activity:intact adipocytokine signaling is required.Diabetes,2011,60:157-167.

8 Coll T,Eyre E,Rodriguez-Calvo R,et al.Oleate reverses palmitate-induced insulin resistance and inflammation in skeletal muscle cells.JBiol Chem,2008,283:11107-11116.

9 Davis JE,Gabler NK,Walker-Daniels J,et al.The c-jun N-terminal kinase mediates the induction of oxidative stress and insulin resistance by palmitate and toll-like receptor 2 and 4 ligands in 3T3-L1 adipocytes.Horm Metab Res,2009,41:523-530.

10 Crunkhorn S,Dearie F,Mantzoros C,et al.PGC-1 expression is reduced in obesity:potential pathogenic role of saturated fatty acids and p38 MAPkinase activation.JBiol Chem,2007,282:15439-15450.

11 Coll T,Jove M,Rodriguez-Calvo R,et al.Palmitate-Mediated Downregulation of Peroxisome Proliferator–Activated ReceptorγCoactivator 1α in Skeletal Muscle Cells Involves MEK1/2 and Nuclear Factor-κB Activation.Diabetes,2006,55:2779-2787.

12 Lin J,Wu PH,Tarr PT,et al.Defects in adaptive energy metabolism with CNS-linked hyperactivity in PGC-1alpha null mice.Cell,2004,119:5-7.

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