李 勇,李賓公,肖 堅(jiān),李 哲,張 健
(南昌大學(xué)第一附屬醫(yī)院心內(nèi)科,江西省高血壓病研究所,江西南昌 330006)
生物起搏細(xì)胞治療的原理就是利用干細(xì)胞具有多向分化的潛能,使其分化為具有起搏功能的細(xì)胞,對(duì)受損的自律性節(jié)律點(diǎn)進(jìn)行修復(fù)或替代,使心臟的起搏功能得以修復(fù)[1],目前所用的細(xì)胞主要為胚胎干細(xì)胞和成體干細(xì)胞。目前的研究[2]發(fā)現(xiàn)由人胚胎干細(xì)胞分化而來(lái)的心肌樣細(xì)胞可檢測(cè)類竇房結(jié)樣動(dòng)作電位(action potential,AP),其具有AP幅度小,沒(méi)有明顯的平臺(tái)期,能夠4期自動(dòng)去極化等特點(diǎn)。由此可見(jiàn)在一定的條件下胚胎干細(xì)胞等多潛能干細(xì)胞在體外也能分化為能產(chǎn)生自發(fā)性動(dòng)作電位的起搏細(xì)胞,但胚胎干細(xì)胞因?yàn)槊庖邔W(xué)及倫理問(wèn)題難以應(yīng)用于臨床。神經(jīng)調(diào)節(jié)蛋白-1(neuregulins-1,NRG-1)是目前研究較多的一類心血管系統(tǒng)中重要的信號(hào)蛋白,通過(guò)介導(dǎo)酪氨酸激酶受體(ErbB2、ErbB3和ErbB4)而發(fā)揮生物學(xué)效應(yīng),在心肌細(xì)胞的發(fā)育成熟、分化中發(fā)揮重要的作用[3]。因此本研究把脂肪干細(xì)胞(adipose derived stem cells,ADSCs)做為實(shí)驗(yàn)的靶細(xì)胞,觀察干預(yù)NRG-1/ErbB通路對(duì)大鼠ADSCs心肌樣分化的影響。探討通過(guò)干預(yù) NRG-1/ErbB通路調(diào)控ADSCs向類竇房結(jié)細(xì)胞或工作肌樣細(xì)胞分化的可行性。
1.1 材料主要試劑:5-Aza、AG 1478、I型膠原酶購(gòu)自Sigma公司,DMEM高糖培養(yǎng)基、DMEM-F12培養(yǎng)基購(gòu)自Gibco公司,bFGF、NRG-1β購(gòu)自Peprotech公司,胎牛血清(FBS)購(gòu)自Hyclone公司 ,TRIzol Reagent、RT-PCR引物購(gòu)自Invitrogen公司,兔抗鼠 CD44、CD90、CD105、CD31、TBX3抗體購(gòu)自北京博奧森,兔抗鼠肌鈣蛋白I購(gòu)自Abcam公司,逆轉(zhuǎn)錄試劑盒購(gòu)自Fermentas公司。
1.2 方法
1.2.1 大鼠 ADSCs的原代培養(yǎng) 按文獻(xiàn)[4-5]中的方法提取ADSCs:取4周左右SD大鼠,脫臼處死,取其腹股溝及附睪處脂肪,仔細(xì)剔除肉眼可見(jiàn)的血管和筋膜,充分剪碎,0.75 mg·g-1Ⅰ型膠原酶37℃振蕩消化45~60 min,加入等體積的培養(yǎng)基,1500 r·min-1離心5 min,去上清加入5 ml培養(yǎng)基重懸細(xì)胞,再離心,如此重復(fù)3次后,再用200目的篩網(wǎng)過(guò)濾,接種于25 cm2的培養(yǎng)瓶?jī)?nèi),置于37℃,含5%CO2的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。48 h后換液。待貼壁細(xì)胞近鋪滿瓶底約80%左右時(shí),按1∶2比例傳代培養(yǎng)。
1.2.2 ADSCs鑒定 取貼壁于細(xì)胞爬片上的3代ADSCs,室溫下多聚甲醛固定15 min,PBS沖洗3遍,每遍 2 min,10 g·L-1的 BSA 37℃封閉 30 min后,分別加入兔抗鼠 CD44、CD90、CD105、CD31(抗體濃度均為1∶100),4℃孵育過(guò)夜,PBS沖洗3遍,每遍5 min,再加入TRITC標(biāo)記的羊抗兔二抗(濃度均為1∶100),37℃孵育 60 min,PBS沖洗3遍,每遍5 min,再分別加入50 mg·L-1的 DAPI 37℃孵育30 min后,倒置熒光顯微鏡下觀察并拍照。
1.2.3 ADSCs的誘導(dǎo)分化 取生長(zhǎng)良好的3代ADSCs均勻接種于12孔板內(nèi),待細(xì)胞鋪滿約60%~70%時(shí),隨機(jī)取9孔用無(wú)血清培養(yǎng)基饑餓2 h后,改為適合心肌細(xì)胞生長(zhǎng)的培養(yǎng)基(高糖DMEM+20%FBS)培養(yǎng),再加入終濃度為 10 μmol·L-1的 5-Aza 和10 μg·L-1的bFGF 處理24 h 后,隨機(jī)分成3組,其中對(duì)照組:加5-Aza后一直正常培養(yǎng);AG1478組:在加入5-Aza后第5~11天每隔3天加入終濃度為 10 μmol·L-1的 ErbB 受體拮抗劑 AG1478,每次處理時(shí)間為12 h;NRG-1組:在與AG1478組同一時(shí)間內(nèi)加入終濃度為 100 μg·L-1的 NRG-1β。余下未處理的為ADSCs組一直正常培養(yǎng)。3周后行心肌特異性基因,蛋白及膜片鉗檢查,每組重復(fù)不小于3次。
1.2.4 RNA的提取及RT-PCR 提取鑒定后的3代ADSCs總RNA,按逆轉(zhuǎn)錄試劑盒說(shuō)明書(shū)及引物反應(yīng)條件進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄和目的基因擴(kuò)增,檢測(cè)其NRG-1、ErbB2、ErbB3、ErbB4基因的表達(dá)。各種引物序列、擴(kuò)增產(chǎn)物長(zhǎng)度及退火溫度見(jiàn)Tab 1,反應(yīng)體系為25 μl。反應(yīng)條件:94℃ 預(yù)變性 5 min,94℃ 變性30 s,55℃ ~63℃退火 30 s,72℃延伸 10 s,循環(huán) 30次,最后72℃延伸5 min,在0.15%的瓊脂糖凝膠中電泳(80V,60 min)檢測(cè)聚合酶鏈反應(yīng)產(chǎn)物。用同樣方法,檢測(cè)誘導(dǎo)3周后各組TBX3、Nkx2.5、Hcn4、TBX2基因的表達(dá)差異。用Bio-rad凝膠成像系統(tǒng)掃描和分析結(jié)果,以GAPDH為內(nèi)參作相對(duì)定量分析,數(shù)值以兩條帶的凈面積比值表示。每次實(shí)驗(yàn)中的細(xì)胞各取3個(gè)樣本,實(shí)驗(yàn)次數(shù)不小于3次。
1.2.5 免疫熒光檢測(cè)各組肌鈣蛋白的表達(dá) 誘導(dǎo)3周后,將細(xì)胞接種于鋪有纖維黏連蛋白的培養(yǎng)板上,行免疫熒光檢測(cè)肌鈣蛋白I的表達(dá),方法同前,一抗為兔抗鼠肌鈣蛋白I(濃度為1∶150),二抗為TRITC標(biāo)記的羊抗兔(濃度為1∶150)。
1.2.6 Western blot檢測(cè) TBX3 蛋白的表達(dá)差異誘導(dǎo)3周后從細(xì)胞培養(yǎng)箱中取出細(xì)胞,提取其總蛋白,聚丙烯酰胺凝膠電泳分離蛋白后,用半干轉(zhuǎn)法將蛋白轉(zhuǎn)入NC膜上,TBX3抗體(1∶500)或β-actin(1∶10 000)4℃孵育過(guò)夜,相對(duì)應(yīng)二抗室溫孵育2 h,PBST清洗干凈后,行化學(xué)發(fā)光反應(yīng)。用 Image quant las 4000自動(dòng)曝光掃描條帶并分析結(jié)果,以βactin為內(nèi)參做相對(duì)定量分析。

Tab 1 Primer sets used for RT-PCR
1.2.7 膜片鉗檢測(cè)各組動(dòng)作電位 將誘導(dǎo)3周后的細(xì)胞使用電流鉗模式,給予脈寬5毫秒(ms)、電流900皮安(pA)刺激,頻率1赫茲(Hz)刺激細(xì)胞產(chǎn)生動(dòng)作電位,信號(hào)由膜片鉗放大器(AXON700B,USA)放大,采樣后獲得的數(shù)據(jù)用 Campfit 9.0進(jìn)行分析,并測(cè)量APD50、APD90、APA等電位參數(shù)。
1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)以±s表示,結(jié)果由SPSS 17.0軟件做單因素方差分析。
2.1 細(xì)胞的形態(tài)、鑒定及NRG-1/ErbB相關(guān)基因的表達(dá)細(xì)胞接種24 h后可見(jiàn)少量細(xì)胞貼壁,初為小圓形,48 h后去除含大量脂滴的培養(yǎng)基,可見(jiàn)貼壁細(xì)胞逐漸向兩側(cè)伸出突起,呈梭形,集落樣生長(zhǎng),約7 d左右可鋪滿單層。傳到第3代時(shí),細(xì)胞已變得大小、形態(tài)均一,呈短梭形或近三角形。行免疫熒光檢測(cè)表達(dá)干細(xì)胞特異性表面抗原CD44、CD90、CD105,不表達(dá)內(nèi)皮細(xì)胞相關(guān)抗原 CD31(Fig 1)。RT-PCR檢測(cè)鑒定后的3代 ADSCs表達(dá) NRG-1、ErbB2、ErbB3、ErbB4 基因(Fig 2)。

2.2 誘導(dǎo)后細(xì)胞的形態(tài)變化及肌鈣蛋白的表達(dá)大鼠ADSCs加5-Aza誘導(dǎo)24 h后,細(xì)胞的增長(zhǎng)逐漸變得緩慢,形態(tài)出現(xiàn)明顯變化。誘導(dǎo)7 d后,細(xì)胞中呈長(zhǎng)梭形細(xì)胞明顯增多,細(xì)胞排列開(kāi)始出現(xiàn)規(guī)則,部分細(xì)胞出現(xiàn)雙核或多核。誘導(dǎo)3周后,除ADSCs組外各組均可見(jiàn)大量細(xì)胞變小呈束狀排列或呈漩渦狀融合,高倍下可見(jiàn)大量呈短梭形或有放射狀突起的多核細(xì)胞。行免疫熒光檢測(cè)對(duì)照組、NRG-1組、AG1478組均可見(jiàn)表達(dá)肌鈣蛋白I的細(xì)胞(未行統(tǒng)計(jì)學(xué)比較各組誘導(dǎo)分化率),而未經(jīng)誘導(dǎo)的ADSCs組不表達(dá)(Fig 3),證明加5-Aza后各組均向心肌樣細(xì)胞分化,對(duì)照組(只加5-Aza)誘導(dǎo)陽(yáng)性率約為30%。
2.3 干預(yù)NRG-1/ErbB通路對(duì)起搏相關(guān)基因及蛋白的影響通過(guò)RT-PCR分析各組mRNA(Fig 4)示大鼠ADSCs加入5-Aza誘導(dǎo)21 d后,表達(dá)心臟早期轉(zhuǎn)錄因子 Nkx2.5,而ADSCs組不表達(dá)(P<0.05),進(jìn)一步證明用5-Aza使ADSCs向心肌樣細(xì)胞分化。而在分化早期的適當(dāng)時(shí)間內(nèi)加入 AG1478組其HCN4、TBX3、TBX2的表達(dá)均強(qiáng)于對(duì)照組(只加5-Aza)及NRG-1組(P<0.05),提示細(xì)胞向竇房結(jié)樣細(xì)胞分化;而加NRG-1組其Nkx2.5的表達(dá)明顯強(qiáng)于對(duì)照組及AG1478組(P<0.05),提示細(xì)胞向工作肌樣細(xì)胞分化。誘導(dǎo)3周后,Western blot分析各組TBX3蛋白(Fig 5)也證實(shí)AG1478組TBX3蛋白的表達(dá)明顯高于對(duì)照組(P<0.05),進(jìn)一步證實(shí)了上述結(jié)果。

Fig 3 Expression of troponin I in ADSCs after differentiation for 3 weeks tested by Immunofluorescence staining(×400)
2.4 實(shí)驗(yàn)各組動(dòng)作電位的表達(dá)差異膜片鉗檢測(cè)ADSCs組未見(jiàn)能產(chǎn)生動(dòng)作電位的細(xì)胞;對(duì)照組共檢測(cè)26個(gè)細(xì)胞,其中2個(gè)表達(dá)竇房結(jié)樣動(dòng)作電位,5個(gè)表達(dá)心室肌樣動(dòng)作電位(Fig 6);AG1478組共檢測(cè)30個(gè)細(xì)胞,4個(gè)表達(dá)竇房結(jié)樣動(dòng)作電位,3個(gè)表達(dá)心室肌樣動(dòng)作電位;而加NRG-1組共檢測(cè)28個(gè)細(xì)胞,1個(gè)表達(dá)竇房結(jié)樣動(dòng)作電位,7個(gè)表達(dá)心室肌樣動(dòng)作電位(因樣本數(shù)目太少未行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析)。竇房結(jié)樣動(dòng)作電位的振幅(APA)為(78±4)mV,復(fù)極化至50%,90%的動(dòng)作電位時(shí)程(APD50/APD90)為(121±10.5)ms和(196±14)ms,心室肌樣動(dòng)作電位的振幅為(102±5)mV,APD50/APD90為(168.7±22)ms和(275±26)ms。
脂肪干細(xì)胞(ADSCs)是近年來(lái)人們發(fā)現(xiàn)的一種脂肪來(lái)源成體干細(xì)胞,具有多方向分化的潛能,體外實(shí)驗(yàn)表明[6-7],在一定條件誘導(dǎo)下可分化為心肌、神經(jīng)、血管內(nèi)皮、脂肪、軟骨等細(xì)胞。而且ADSCs因?yàn)閬?lái)源廣,取材方便,不涉及免疫原性及倫理道德問(wèn)題,能自體移植,與其它干細(xì)胞相比有明顯的優(yōu)越性,是目前心肌組織工程研究有很大臨床應(yīng)用潛力的種子細(xì)胞。在本課題中,我們分離培養(yǎng)大鼠ADSCs,免疫熒光鑒定其表達(dá)干細(xì)胞特征性抗原CD90、CD44、CD105,不表達(dá)內(nèi)皮細(xì)胞相關(guān)抗原CD31,符合干細(xì)胞的鑒定標(biāo)準(zhǔn)[4,8]。
在本研究中,我們通過(guò) RT-PCR檢測(cè)出大鼠ADSCs表達(dá) NRG-1及 ErbB2、ErbB3、ErbB4基因,ELISA發(fā)現(xiàn)ADSCs也能分泌NRG-1(該文章未詳細(xì)描述)證明ADSCs表達(dá)完整的NRG-1/ErbB信號(hào)通路。通過(guò)RT-PCR及Western blot我們發(fā)現(xiàn)在ADSCs向心肌樣細(xì)胞分化的一定時(shí)間內(nèi),短期使用AG1478抑制 NRG-1/ErbB信號(hào)通路,能明顯提高 TBX3、HCN4基因及TBX3蛋白的表達(dá),并且能夠檢測(cè)到竇房結(jié)樣動(dòng)作電位。反之增加外源性NRG-1則可以增加心肌早期轉(zhuǎn)錄因子NKx2.5的表達(dá)。TBX3作為轉(zhuǎn)錄因子抑制劑,在早期心臟的發(fā)育中能抑制心肌工作肌細(xì)胞相關(guān)基因[9],上調(diào)各起搏相關(guān)基因的表達(dá),促進(jìn)竇房結(jié)細(xì)胞的分化成熟[10],常和HCN4作為起搏組織的標(biāo)志基因[11-12];而NKx2.5在早期心臟發(fā)育的一定時(shí)間內(nèi)可以抑制TBX3、HCN4等起搏相關(guān)基因表達(dá),促進(jìn)細(xì)胞向工作肌樣細(xì)胞分化[13],反之當(dāng)Nkx2.5表達(dá)被抑制時(shí)則起搏相關(guān)基因的表達(dá)明顯增強(qiáng)[14]。據(jù)此我們可以推測(cè)NRG-1/ErbB通路在調(diào)控干細(xì)胞的定向分化中發(fā)揮著重要作用,并且這一作用可能與NKx2.5、TBX3等基因密切相關(guān)。今后可以通過(guò)干預(yù)這一通路使ADSCs向不同方向分化,為未來(lái)不同心臟病的定向修復(fù)提供新的手段。

Fig 4 (A)Expression of cardiac subtype-specific genes in ADSC,control(5-Aza),AG1478,and exogenous NRG-1 treated group after induced 3 weeks detected by RT-PCR.(B)Statistical analysis of the expression of NKx2.5.(C)Statistical analysis of the expression of TBX3,TBX2 and HCN4

心臟的發(fā)生與成熟是一個(gè)多種信號(hào)通路先后參與的非常復(fù)雜而又精細(xì)的調(diào)控過(guò)程,目前的研究表明NRG-1/ErbB信號(hào)系統(tǒng)在早期心肌細(xì)胞的分化成熟過(guò)程中也發(fā)揮著重要作用,但其機(jī)制現(xiàn)在仍不完全清楚[15]。在成熟心臟中,NRG-1主要通過(guò)使ErbB2/ErbB4異源二聚體磷酸化,激活下游的信號(hào)分子而發(fā)揮重要的生理作用,調(diào)節(jié)細(xì)胞的增生、凋亡,分化,維護(hù)心臟正常的結(jié)構(gòu)及功能[16],并且補(bǔ)給外源性的NRG-1亦可抑制心肌細(xì)胞凋亡,改善心功能[17]。在脊椎動(dòng)物胚胎的發(fā)育中 NRG-1/ErbB信號(hào)系統(tǒng)通過(guò)與心臟其它早期轉(zhuǎn)錄因子如Nkx2.5、TBX3等相互作用參與并形成調(diào)控心臟發(fā)育特殊的核心轉(zhuǎn)錄調(diào)控網(wǎng)絡(luò)(cardiac-specific gene regulatory network),調(diào)控心臟前體細(xì)胞的分化成熟[18],在胚胎發(fā)育中抑制NRG-1/ErbB信號(hào)通路可以促進(jìn)竇房結(jié)的發(fā)育[19],而在胚胎干細(xì)胞中添加外源性的NRG-1則能增加工作肌相關(guān)基因(如Nkx2.5)的表達(dá),促進(jìn)其向工作肌細(xì)胞分化[20]。
總之,在本研究中我們首次發(fā)現(xiàn)在脂肪干細(xì)胞的心肌樣分化中調(diào)控NRG-1/ErbB信號(hào)系統(tǒng)可以調(diào)控脂肪干細(xì)胞向起搏樣細(xì)胞或工作肌樣細(xì)胞分化,這可用于未來(lái)生物起搏或心肌損傷的修復(fù)研究,提示NRG-1有可能成為未來(lái)干細(xì)胞治療心血管疾病的一個(gè)重要調(diào)節(jié)點(diǎn),當(dāng)然對(duì)其作用機(jī)制尚需進(jìn)一步研究證實(shí)。
[1] Rosen M R,Robinson R B,Brink P R,et al.The road to biological pacing[J].Nat Rev Cardiol,2011,8(11):656 -66.
[2] He J Q,Ma Y,Lee Y,et al.Human embryonic stem cells develop into multiple types of cardiac myocytes-Action potential characterization[J].Circul Res,2003,93(1):32 -9.
[3] Sawyer D B,Caggiano A.Neuregulin-1beta for the treatment of systolic heart failure[J].J Molecular Cell Cardiol,2011,51(4):501-5.
[4] Zhu Y,Liu T,Song K,et al.Adipose-derived stem cell:a better stem cell than BMSC[J].Cell Biochem Funct,2008,26(6):664-75.
[5] Bunnell B A,F(xiàn)laat M,Gagliardi C,et al.Adipose-derived stem cells:isolation,expansion and differentiation[J].Methods,2008,45(2):115-20.
[6] Planat-Benard V,Menard C,Andre M,et al.Spontaneous cardiomyocyte differentiation from adipose tissue stroma cells[J].Circ Res,2004,94(2):223 -9.
[7] Ye Z Y,Zhou Y,Cai H,Tan W.Myocardial regeneration:Roles of stem cells and hydrogels[J].Adv Drug Deliv Rev,2011,63(8):688-97.
[8] Dominici M,Le Blanc K,Mueller I,et al.Minimal criteria for defining multipotent mesenchymal stromal cells.The internat society cell therapy position statement[J].Cytotherapy,2006,8(4):315-7.
[9] Singh R,Hoogaars W M,Barnett P,et al.Tbx2 and Tbx3 induce atrioventricular myocardial development and endocardial cushion formation[J].Cell Mol Life Sci,2012,69(8):1377 -89.
[10] McNally E M,Svensson E C.Setting the pace tbx3 and tbx18 in cardiac conduction system development[J].Circ Res,2009,104(3):285-7.
[11] Wiese C,Grieskamp T,Airik R,et al.Formation of the sinus node head and differentiation of sinus node myocardium are independently regulated by Tbx18 and Tbx3[J].Circ Res,2009,104(3):388-97.
[12] DiFrancesco D.The role of the funny current in pacemaker activity[J].Circ Res,2010,106(3):434 -46.
[13] Espinoza-Lewis R A,Liu H,Sun C,et al.Ectopic expression of Nkx2.5 suppresses the formation of the sinoatrial node in mice[J].Dev Biol,2011,356(2):359 -69.
[14] Espinoza-Lewis R A,Yu L,He F,et al.Shox2 is essential for the differentiation of cardiac pacemaker cells by repressing Nkx2-5[J].Dev Biol,2009,327(2):376 -85.
[15]肖 堅(jiān),李賓公.Neuregulin-1在心血管系統(tǒng)中的研究進(jìn)展[J].中國(guó)藥理學(xué)通報(bào),2012,28(3):303 -6.
[15] Xiao J,Li B G.Research progress on neuregulin-1 in cardiovascular system[J].Chin Pharmacol Bull,2012,28:421 -4.
[16] Wang X H,Zhuo X Z,Ni Y J,et al.Improvement of cardiac function and reversal of gap junction remodeling by Neuregulin-1beta in volume-overloaded rats with heart failure[J].J Geriatric Cardiol,2012,9(2):172 -9.
[17]黃 鑫,李賓公,鄭澤琪,等.神經(jīng)調(diào)節(jié)蛋白-1對(duì)糖尿病心肌病大鼠心肌重構(gòu)的影響[J].中國(guó)藥理學(xué)通報(bào),2011,27(11):1532-6.
[17] Huang X,Li B G,Zheng Z Q,et al.Effect of neuregulin-1 on ventricular remolding in experimental diabetic cardiomyopathy[J].Chin Pharmacol Bull,2011,27(11):1532 -6.
[18] Lai D,Liu X F,F(xiàn)orrai A,et al.Neuregulin 1 sustains the gene regulatory network in both trabecular and nontrabecular myocardium[J].Circ Res,2010,107(6):715 -27.
[19] Zhu W Z,Xie Y,Moyes K W,et al.Neuregulin/ErbB signaling regulates cardiac subtype specification in differentiating human embryonic stem cells[J].Circ Res,2010,107(6):776 -86.
[20] Wang Z,Xu G,Wu Y,et al.Neuregulin-1 enhances differentiation of cardiomyocytes from embryonic stem cells[J].Med Biol Eng Comput,2009,47(1):41 -8.