邵 倩,班 博,施錦繡
(1.山東大學醫學院,山東濟南 250012;2.濟寧醫學院附屬醫院內分泌科,山東 濟寧 272029;3.上海人類基因組研究中心,上海 201203)
磺脲類降糖藥物(SU)是一種胰島素促泌劑,SU進入人體后作用于胰島β細胞膜上的ATP敏感性鉀離子(KATP)通道[1],該通道是由磺脲類受體1(SUR1)及鉀離子內向整流通道(Kir6.2)兩種亞單位組成的異八聚體,通過將細胞膜電活動與細胞代謝聯系起來,在胰島素分泌中起著重要作用。長期應用SU,會出現磺脲類藥物繼發性失效(SFS)[2],具體機制目前尚不明確。本研究選擇調節KATP通道的SUR1、KCNJ11基因,采用SNaPshot技術對SUR1基因外顯子16-3c/t、KCNJ11基因E23K多態性進行基因分型,并探討與山東地區T2DM患者SFS的相關性。
1.1 資料
1.1.1 受試對象 選取2010年11月~2012年7月在山東濟寧醫學院附屬醫院住院的漢族T2DM患者200例(除外:糖尿病急性應激狀態,如急性心肌梗死、腦卒中、糖尿病酮癥酸中毒、糖尿病非酮癥高滲性昏迷等;明顯的肝、腎功能異常者;近期使用過影響肝、腎功能藥物者),診斷依據WHO1999年標準。SFS標準:曾經有至少3個月初始使用SU(或聯合二甲雙胍)的有效期,在適當飲食、運動基礎上,SU加至每日最大劑量[如格列苯脲(優降糖)15 mg、格列吡嗪(美吡達)30 mg等],失效持續1~3個月,尚未使用 INS,空腹血糖 >10.0 mmol·L-1,糖化血紅蛋白>9.0%。SU治療有效組:糖尿病飲食控制加 SU(或聯合二甲雙胍)空腹血糖 <9.0 mmol·L-1,糖化血紅蛋白<8.4%。按照上述標準納入SFS組86例(男42例、女44例),SU有效組114例(男63例,女51例),兩組胰島細胞表面抗體(ICA)、胰島素抗體(IAA)和谷氨酸脫羧酶抗體(GAD-Ab)均陰性。所有對象在知情同意的情況下,簽署知情同意書。
1.1.2 臨床及生化數據 收集T2DM患者相關臨床資料,包括年齡、性別、糖尿病病程、飲食控制等,測量身高、體重,計算體質量指數(BMI),BMI=體重/身高2(kg/m2)。采用全自動生化分析儀(日本HITACHI公司)測定各組的空腹血糖(fasting plasma glucose,FPG)、餐后2h血糖(2 hours plasma glucose,2 hPG)、甘油三酯(triglycerides,TG)、總膽固醇(total cholesterol,TC)、高密度脂蛋白膽固醇(high density lipoprotein cholesterol,HDL-C)、低密度脂蛋白膽固醇(low density lipoprotein cholesterol,LDL-C)等指標,采用單克隆抗體法檢測糖化血紅蛋白(glycated hemoglobin,HbA1c),采用電化學發光法檢測空腹C肽(fasting C-peptide,F-C)及標準饅頭餐后2 h-C 肽(2 hours C-peptide,2 h-C)。
1.2 方法
1.2.1 DNA提取 所有受檢者取肘靜脈血2ml,用EDTA-K2抗凝,采用鹽析法抽提全血基因組DNA(QIAGEN,Germany),應用 NanoDrop-1000(Nanodrop,USA)檢測其濃度和純度后,稀釋至30 μg·L-1。
1.2.2 SNaPshot技術檢測 (1)多重 PCR擴增:PCR 反應體系為 10 μl,含基因組 DNA 1 μl(30 mg·L-1),0.3 μl的 dNTP(10 mmol·L-1),1 μl 10 ×PCR 緩沖液,0.52 μl MgCl2溶液(25 mmol·L-1),0.1 μl HotStar(Sigma 公司),6.68 μl無核酸酶的去離子水,各引物對的終濃度為 0.1 μmol·L-1。多重PCR反應條件:95℃預變性15 min,94℃變性40 s,63℃退火1 min,每個循環下降0.5℃ ,72℃延伸1.5 min,15個循環;94℃變性40 s,56 ℃退火40 s,72 ℃延伸1.5 min,25個循環;72 ℃ 8 min,4 ℃保存,PCR反應在9700熱循環儀(ABI公司)中進行。(2)擴增產物的純化:取1.0 μl擴增產物,加入2.0 U 蝦堿性磷酸酶(SAP 酶,USB,USA),2.0 U ExoⅠ酶(Epicentre Biotechnologies,USA),去離子水 2.6 μl,反應總體系為 6 μl,混勻后 37 ℃保溫 60 min,然后75℃滅活15 min,4℃保存。(3)延伸標記、純化,反應體系為 5 μl,含純化產物 2 μl,SNaP-shot Multiplex Mix(ABI公司)0.5 μl,引物1.2 μl,去離子水1.3 μl,每種引物在反應體系中的終濃度分別為0.2 μmol·L-1。PCR 循環條件為:96 ℃ 預變性10 s,96℃變性 10 s,50℃退火5 s,60℃ 延伸30s,25個循環,PCR反應在9700熱循環儀(ABI公司)中進行。反應結束后進行第2次純化,每反應產物中加入1U SAP酶,37℃保溫60min,75℃滅活15 min,4℃保存。(4)每反應體系中加入Hi-Di甲酰胺(ABI公司)9.25 μl,內標 LIZ-120(ABI公司)0.1 μl,第 2 次純化產物 1 μl,混勻離心后,95℃ 變性5 min,迅速冰冷4 min。于ABI公司3730遺傳分析儀進行毛細管電泳,應用GeneMaperV 4.0軟件進行數據分析。在所有樣本中,每一個SNP的基因分型成功率>98%。在隨機抽取的樣本中所有的重復分型的一致率均為100%(Fig 1)。
1.3 統計學分析以Hardy-Weinberg平衡法檢驗研究樣本的群體代表性,用χ2檢驗比較SFS組與有效組之間基因型及等位基因頻率分布。檢驗數據正態分布情況,正態分布計量資料以±s表示,非正態分布的資料采用自然對數轉換為正態后進行分析,結果以中位數(25%位數,75%位數)表示,兩組臨床資料分析采用獨立樣本t或t'檢驗。多因素分析用Logistic回歸分析。上述數據處理運用SPSS 13.0統計軟件。
2.1 SUR1 16-3c/t基因型和等位基因分布頻率SUR1基因外顯子16-3c/t基因型頻率在SFS組及有效組均符合Hardy-Weinberg遺傳平衡定律,SUR1基因外顯子16-3c/t t/t、c/t和c/c基因型頻率在SFS組分別為53.5%、34.9%和11.6% ,在有效組分別為 28.9%、55.3%和 15.8%,兩組分布差異有統計學意義(P<0.01)。SFS組“t”等位基因分布頻率明顯高于有效組(P<0.01),見Tab 1。

Fig 1 Genotyped result of SNaPshot

Tab 1 Distribution and frequency of SUR1,KCNJ11 genotypes and alleles between patients with secondary failure and without secondary failure
2.2 KCNJ11 E23K基因型和等位基因分布頻率KCNJ11基因多態性位點E23K基因型頻率在SFS組及有效組均符合Hardy-Weinberg遺傳平衡定律,SFS組 E23K KK、EK和 EE基因型頻率分別為11.6%、55.8% 和 32.6%,在有效組中分別為15.8%、60.5% 和 23.7%,兩組分布差異無統計學意義(P>0.05)。見Tab 1。
2.3 研究對象的臨床特點SFS組糖尿病病程、HbA1c、FPG、2 hPG 明顯高于有效組(P < 0.01),2 h-C肽明顯低于有效組(P<0.01),見Tab 2。
Tab 2 Analysis of clinical data in the 2 groups(±s)

Tab 2 Analysis of clinical data in the 2 groups(±s)
**P <0.01 vs SU effective
Characteristics SU effective(n=114)SU failure(n=86)n(M/F)Age/y BMI/kg·m-2 Duration/y HbA1c/%FPG/mmol·L-1 2 hPG/mmol·L-1 F-C/nmol·L-1 2 h-C/nmol·L-1 TG/mmol·L-1 TC/mmol·L-1 HDL-C/mmol·L-1 LDL-C/mmol·L-1 86(42/44)56.9 ±8.7 25.4 ±3.3 10.0(6.0,14.0)**10.8 ±1.6**12.6 ±2.5**20.6 ±3.5**2.0 ±0.6 5.2 ±1.8**2.0 ±0.8 4.9 ±1.3 1.2 ±0.3 2.8 ±0.7 114(63/51)56.2 ±9.4 25.0 ±2.6 4.0(2.0,8.0)7.8 ±0.4 7.6 ±1.0 16.8 ±3.1 2.1 ±0.7 7.9 ±2.3 2.2 ±0.8 4.9 ±0.7 1.2 ±0.2 2.8 ±0.8
2.4 SUR1基因外顯子16-3c/t各基因型的臨床及實驗室資料比較SUR1基因外顯子16-3c/t t/t基因型SFS發生率、FPG、HbA1c、2hPG明顯高于 c/t+c/c型組(P <0.01),而 BMI、2h-C 肽明顯低于c/t+t/t型組(P <0.01),見 Tab 3。
2.5 多因素Logistic回歸分析以SFS是否發生為因變量,校正性別、年齡、BMI、F-C 肽、TG、TC、HDL-C、LDL-C后,發現SUR1基因外顯子16-3c/t的t/t基因型是SFS的獨立危險因素(OR=2.82,95%CI=1.57 ~5.07,P <0.01)。在回歸中分別引入2 hPG(B)、2 h-C肽(C)、糖尿病病程(D)變量后,t/t基因型與SFS的相關性逐漸下降(均P<0.05),在回歸分析中引入糖尿病病程>5年(E)變量后,SUR1基因外顯子16-3c/t的t/t基因型與SFS的相關性明顯增加(OR=3.90,95%CI=1.27 ~11.98,P <0.05),見 Tab 4。
Tab 3 Clinical data in different genotypes of SUR1 gene exon 16-3c/t(±s)

Tab 3 Clinical data in different genotypes of SUR1 gene exon 16-3c/t(±s)
**P <0.01 vs c/c+c/t group
Characteristics c/c+c/t t/t n(M/F)Age/y BMI/kg·m-2 Duration/y SFS/n(%)HbA1c/%FPG/mmol·L-1 2 hPG/mmol·L-1 F-C/nmol·L-1 2 h-C/nmol·L-1 121(64/57)57.1 ±9.9 25.7 ±3.0 6.0(2.0,10.0)40(33.1)8.8 ±1.4 9.2 ±2.4 17.8 ±3.7 2.1 ±0.7 7.2 ±2.6 79(41/38)55.7 ±7.6 24.4 ±2.6**7.0(3.0,14.0)46(58.2)**9.7 ±2.1**10.5 ±3.7**19.3 ±3.8**2.0 ±0.7 6.1 ±2.2**

Tab 4 Logistic regression analysis of SFS risk factors
SU作為一種胰島素促泌劑,通過與胰島β細胞膜上的磺脲類藥物受體(SUR)結合,關閉細胞膜上KATP通道,使鉀離子外流減少,細胞膜去極化,導致電壓門控性鈣通道開放,鈣離子內流,從而促進胰島素的釋放。近年來研究表明,KCNJ11、TCF7L2和IRS1等基因與 SFS有關[3-6],但 SUR1基因與 SFS的關系報道較少。KCNJ11基因編碼KATP通道的內向整流K+通道蛋白(Kir6.2),SUR1基因編碼KATP通道的調節亞單位SUR1,二者均在調節胰島素的分泌中起著重要作用。
在本研究中,未發現KCNJ11基因E23K多態性與SFS相關(P>0.05),而在 UKPDS的研究中,也未發現E23K多態性與SU降糖療效相關[7],提示在中國人群中該多態性可能與SU降糖療效無關。但是,本研究發現SUR1基因外顯子16-3c/t多態性與SFS發生相關(P <0.05),且“t”危險等位基因分布頻率在 SFS組明顯高于有效組(OR=1.87,P<0.05),該結果與袁莉等[8]的研究結果一致,而與Zychma等[9]的報道不同,Zychma等分析陰性結果的主要原因是SFS患者中包含了一部分成人隱匿性自身免疫性糖尿病(LADA),而非真正的T2DM。此外,外顯子 16-3c/t t/t基因型組的 FPG、2 hPG、HbA1c均明顯高于其他基因型組,而2 h-C肽明顯低于其他基因型組(P<0.01),提示t/t基因型攜帶者胰島素分泌能力可能受損。多因素Logistic回歸分析顯示t/t基因型是SFS發生的獨立危險因素(OR=2.82,P <0.01),當分別引入 2 hPG、2 h-C 肽后及糖尿病病程后,t/t基因型與SFS的相關性下降(OR 值分別為2.45、2.30 及 2.23,均 P <0.05),考慮到較長的糖尿病病程可能會影響SU療效,對病程>5年的患者進行逐步Logistic回歸分析,發現t/t基因型仍是發生SFS的獨立危險因素(OR=3.90,P<0.05),這表明遺傳因素是SU降糖反應個體差異的最主要原因,外顯子16-3c/t的t/t基因型攜帶者可能更易于發生SFS。推測可能機制:(1)由于該突變位于外顯子16剪切部位上游,在轉錄過程中,可能影響了正常的剪接,使SUR1功能受到影響,從而影響胰島素的釋放。(2)可能與ABCC8基因上發生變異的其他功能性位點存在強烈的連鎖不平衡[10],影響了胰島素的分泌功能。
綜上所述,SUR1基因外顯子16-3c/t多態性可能與SFS相關。隨著SNPs的深入研究及藥物基因組學的發展,SUR1基因的多態性將極大地促進個體化用藥和新藥的研究。如何對患者針對性的用藥,避免或減少SFS風險的發生以及對新藥的研發將成為我們今后的研究方向。
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