黃芪注射液對(duì)腦缺血再灌注大鼠海馬神經(jīng)元凋亡及JNK3表達(dá)的影響*

劉莎莎， 高維娟， 錢 濤， 張 霞

(1承德醫(yī)學(xué)院病理生理學(xué)教研室，河北 承德 067000； 2河北化工醫(yī)藥職業(yè)技術(shù)學(xué)院，河北 石家莊 050026)

1000-4718(2012)09-1582-07

2012-02-10

2012-07-12

國(guó)家自然科學(xué)基金資助項(xiàng)目(No.81072923)

△通訊作者Tel: 0311-85110168 E-mail:gwj6088@163.com

黃芪注射液對(duì)腦缺血再灌注大鼠海馬神經(jīng)元凋亡及JNK3表達(dá)的影響*

劉莎莎1， 高維娟2△， 錢 濤1， 張 霞1

(1承德醫(yī)學(xué)院病理生理學(xué)教研室，河北 承德 067000；2河北化工醫(yī)藥職業(yè)技術(shù)學(xué)院，河北 石家莊 050026)

目的觀察黃芪注射液對(duì)腦缺血再灌注大鼠海馬神經(jīng)元凋亡及c-Jun N末端激酶3(JNK3)表達(dá)的影響。方法四血管阻斷法制備腦缺血再灌注大鼠模型。設(shè)假手術(shù)組、腦缺血再灌注模型組(模型組)、腦缺血再灌注模型+黃芪注射液組(黃芪注射液組)和腦缺血再灌注模型+黃芪注射液溶劑對(duì)照組(溶劑對(duì)照組)。除假手術(shù)組外其余3組根據(jù)再灌注時(shí)間不同又分為0 h、0.5 h、2 h、6 h、24 h、72 h和120 h 7個(gè)亞組。采用TUNEL法檢測(cè)海馬神經(jīng)元凋亡，Western blotting法檢測(cè)海馬組織JNK3蛋白變化，real-time PCR法檢測(cè)海馬組織JNK3 mRNA 的表達(dá)變化。結(jié)果與假手術(shù)組比，模型組大鼠各個(gè)時(shí)點(diǎn)凋亡細(xì)胞數(shù)均增多(P<0.05)；與模型組比，黃芪注射液組各個(gè)時(shí)點(diǎn)的細(xì)胞凋亡數(shù)明顯減少 (P<0.05)，而黃芪注射液溶劑對(duì)照組各個(gè)時(shí)點(diǎn)的細(xì)胞凋亡數(shù)無(wú)明顯變化 (P>0.05)。除120 h外，模型組各時(shí)點(diǎn)海馬組織JNK3蛋白及mRNA表達(dá)均較假手術(shù)組增加(P<0.05)；與模型組相比，黃芪注射液可減弱除120 h之外的各時(shí)點(diǎn)JNK3 蛋白及mRNA的表達(dá) (P<0.05)，而黃芪注射液溶劑對(duì)照組則無(wú)明顯變化(P>0.05)。結(jié)論黃芪注射液可抑制腦缺血再灌注大鼠海馬神經(jīng)元凋亡，其抗凋亡機(jī)制可能與下調(diào)JNK3 mRNA及蛋白表達(dá)有關(guān)。

腦缺血再灌注； 黃芪注射液； c-Jnu N末端激酶3； 海馬； 細(xì)胞凋亡

腦缺血后恢復(fù)腦血流是治療腦缺血最關(guān)鍵的方法，但再灌注可加重缺血腦組織的損傷，而這種損傷以細(xì)胞凋亡為主。目前腦缺血再灌注損傷后神經(jīng)細(xì)胞凋亡的發(fā)生機(jī)制仍不十分清楚，多數(shù)學(xué)者認(rèn)為神經(jīng)細(xì)胞的凋亡是凋亡相關(guān)基因表達(dá)的結(jié)果，并受許多內(nèi)外因素的調(diào)節(jié)。c-Jun N末端激酶3(c-Jun N-terminal kinase 3,JNK3)是一種神經(jīng)特異性JNK亞型，其在神經(jīng)系統(tǒng)損傷中具有重要的作用[1]。黃芪注射液作為臨床治療缺血性腦血管病的常用藥物，可抑制細(xì)胞凋亡的發(fā)生[2]，但具體機(jī)制尚未闡明。本課題組前期實(shí)驗(yàn)證實(shí)，黃芪注射液可抑制離體培養(yǎng)的缺氧缺糖/復(fù)氧復(fù)糖大鼠海馬神經(jīng)元凋亡，但在在體情況下，黃芪注射液是否可抑制腦缺血再灌注大鼠海馬神經(jīng)細(xì)胞凋亡尚屬未知，因此本實(shí)驗(yàn)通過(guò)觀察黃芪注射液對(duì)全腦缺血再灌注大鼠海馬神經(jīng)元凋亡及JNK3表達(dá)的影響，以探討其發(fā)揮腦保護(hù)作用的分子機(jī)制。

材 料 和 方 法

1材料

1.1動(dòng)物 清潔級(jí)健康SD雄性大鼠258只，體重220～280 g，由天津山川紅實(shí)驗(yàn)動(dòng)物科技有限公司提供，許可證號(hào)為SCXK(津)2009-0001。

1.2主要試劑和儀器 原位細(xì)胞凋亡檢測(cè)試劑盒購(gòu)自Roche；蛋白酶K購(gòu)自Sigma；兔抗大鼠JNK3單克隆抗體購(gòu)自Cell Signaling；小鼠抗大鼠β-actin購(gòu)自Santa Cruz；JNK3引物及探針由上海基康生物技術(shù)有限公司設(shè)計(jì)合成；Premix Ex TaqTM實(shí)時(shí)熒光定量PCR試劑盒購(gòu)自大連寶生物公司；黃芪注射液由成都地奧九泓制藥廠生產(chǎn)，20 mL/支(每1 mL相當(dāng)于2 g生藥)，生產(chǎn)批號(hào)為國(guó)藥準(zhǔn)字Z51021776；其它試劑為國(guó)產(chǎn)分析純。TDL-40B離心機(jī)為上海安亭科學(xué)儀器制造廠產(chǎn)品；DYY-6B型穩(wěn)壓穩(wěn)流電泳儀為北京六一儀器廠產(chǎn)品；SLAN熒光定量PCR檢測(cè)系統(tǒng)為上海宏石醫(yī)療科技有限公司產(chǎn)品。

2方法

2.1動(dòng)物分組與造模 SD大鼠適應(yīng)性飼養(yǎng)1周后隨機(jī)分為4組：假手術(shù)組、腦缺血再灌注模型組(模型組)、腦缺血再灌注模型+黃芪注射液組(黃芪注射液組)和腦缺血再灌注模型+黃芪注射液溶劑對(duì)照組(溶劑對(duì)照組)，除假手術(shù)組外其余各組根據(jù)再灌注后不同時(shí)間再分為0 h、0.5 h、2 h、6 h、24 h、72 h 和120 h 7個(gè)亞組，每個(gè)亞組12只動(dòng)物。采用四血管阻斷法制備腦缺血再灌注大鼠模型：4%水合氯醛(10 mL/kg)腹腔注射麻醉后將大鼠俯臥位固定于操作臺(tái)上，在枕骨后切開皮膚，逐層分離暴露雙側(cè)第1頸椎橫突翼小孔，用直徑0.5 mm的電凝針燒灼雙側(cè)翼小孔內(nèi)的椎動(dòng)脈，造成永久性閉塞。將大鼠仰臥固定，行腹側(cè)頸正中切口，分離雙側(cè)頸總動(dòng)脈，以“4”號(hào)絲線穿線備用，縫合切口。術(shù)后恢復(fù)24 h用無(wú)創(chuàng)微動(dòng)脈夾夾閉雙側(cè)頸總動(dòng)脈，30 min后松開微動(dòng)脈夾恢復(fù)血流。以大鼠翻正反射消失、瞳孔散大作為全腦缺血成功的標(biāo)準(zhǔn)。假手術(shù)組只做皮膚切口和組織分離。黃芪注射液組腦缺血前30 min腹腔注射黃芪注射液6 mL/kg[3]，其中24 h、72 h、120 h組術(shù)后每隔24 h追加給藥1次，以確保穩(wěn)定的血藥濃度。黃芪注射液溶劑對(duì)照組腹腔注射與黃芪注射液等量的無(wú)菌去離子水。

2.2標(biāo)本制備 從各組大鼠中隨機(jī)選取6只，4%水合氯醛腹腔麻醉，4%多聚甲醛灌注固定，取視交叉后4 mm與小腦前之間的部分即海馬腦組織，石蠟包埋，冠狀切片，制成4 μm厚連續(xù)切片；其余各組大鼠4%水合氯醛腹腔麻醉后，迅速斷頭處死，在低溫修塊臺(tái)上分離出雙側(cè)海馬組織，置于Eppendorf管中，-80 ℃保存，備用。

2.3原位細(xì)胞凋亡檢測(cè)(TdT-mediated dUTP nick end labeling, TUNEL) 將石蠟切片二甲苯脫蠟、乙醇脫水、蒸餾水洗2次，各5 min，PBS(0.1 mol/L，pH 7.4)洗5 min，蛋白酶K(10 mg/L)滴加切片，37 ℃濕盒溫育15 min，PBS洗3次，各5 min，濾紙吸干，將3%H2O2滴加切片，以除去內(nèi)源性過(guò)氧化物酶，37 ℃濕盒溫育30 min，PBS洗3次，各5 min，滴加TdT緩沖液和末端脫氧核糖核酸轉(zhuǎn)移酶25 μL，37 ℃濕盒溫育60 min，PBS洗3次，各5 min，含辣根過(guò)氧化物酶(horseradish peroxidase, HRP)的抗熒光素抗體37 ℃濕盒中避光孵育30 min，PBS洗3次，各5 min， DAB顯色5～10 min，流動(dòng)自來(lái)水充分沖洗終止顯色，蘇木素復(fù)染，脫水、透明、封片，顯微鏡觀察。凋亡細(xì)胞核呈棕黃色染色為陽(yáng)性。陰性對(duì)照TUNEL反應(yīng)液中不加TdT，余反應(yīng)同前。在400倍光鏡下計(jì)數(shù)海馬CA1區(qū)中1/3段內(nèi)TUNEL染色陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)。定量分析方法為：光鏡下計(jì)算凋亡指數(shù)(apoptotic index, AI)。AI = 凋亡細(xì)胞數(shù)/總細(xì)胞數(shù)×100% 。

2.4Western blotting法檢測(cè)海馬組織JNK3蛋白表達(dá) 稱取海馬組織，提取總蛋白，用BCA法進(jìn)行蛋白定量，取25 μg樣品，以12%的SDS聚丙烯酰胺凝膠電泳分離，分離的蛋白用半干電轉(zhuǎn)移法轉(zhuǎn)移到PVDF膜上，5% BSA封閉過(guò)夜，兔抗大鼠JNK3單克隆抗體(1∶1 000稀釋)，4 ℃搖床孵育2 h。山羊抗兔Ⅱ抗(1∶5 000稀釋)4 ℃搖床孵育1 h。洗膜后，采用化學(xué)發(fā)光法顯色，用凝膠分析軟件Quantity One進(jìn)行分析，測(cè)定各條帶灰度值，取與β-actin的比值，反映目的蛋白的表達(dá)水平。

2.5Real-time PCR法檢測(cè)海馬JNK3 mRNA表達(dá) 稱取海馬組織，用TRIzol一步法提取RNA，按PrimeScript RT reagent Kit with gDNA Eraser(Perfect Real Time)說(shuō)明逆轉(zhuǎn)錄為cDNA。取2 μL cDNA進(jìn)行熒光定量PCR，25 μL反應(yīng)體系含Taq酶12.5 μL，10 μmol/L 上、下游引物各0.5 μL，3 μmol/L TaqMan-MGB 探針1 μL，ddH2O 8.5 μL。內(nèi)參照GAPDH上游引物5′-TGGTCTACATGTTCCAGTATGACT-3′，下游引物5′-CCATTTGATGTTAGCGGGATCTC-3′，擴(kuò)增片段長(zhǎng)度為134 bp。探針序列5’-(FAM) CCACGGCAAGTTCAACGGCACAGT (Eclipse)-3’。JNK3上游引物5′-CGGATTCCGAGCACAATAAAC-3′，下游引物5′-AGGGTCGTACCAAACGTTGATGT-3′，擴(kuò)增片段長(zhǎng)度為137 bp。探針序列5′-FTAAAGCCCAGCCAAGCCP-3′。反應(yīng)條件為：95 ℃預(yù)變性60 s，95 ℃ 10 s，60 ℃ 30 s,擴(kuò)增40個(gè)循環(huán)，在60 ℃讀取熒光。陰性對(duì)照將cDNA模板換成等體積的ddH2O。絕對(duì)定量的標(biāo)準(zhǔn)曲線制作：將標(biāo)準(zhǔn)品分別稀釋107、106、105、104、103作為模板，反應(yīng)液的配置、反應(yīng)條件和參數(shù)與PCR相同。結(jié)果檢測(cè)：熒光信號(hào)檢測(cè)點(diǎn)選在60 ℃反應(yīng)后單點(diǎn)接收熒光信號(hào)，反應(yīng)結(jié)束后計(jì)算機(jī)自動(dòng)描出標(biāo)準(zhǔn)品系列稀釋液的擴(kuò)增曲線，并根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線得出模板中內(nèi)參照基因和目的基因的拷貝數(shù)。

3統(tǒng)計(jì)學(xué)處理

結(jié) 果

1黃芪注射液對(duì)腦缺血再灌注大鼠海馬神經(jīng)元凋亡的影響

TUNEL陽(yáng)性染色為細(xì)胞核呈棕黃色顆粒，假手術(shù)組偶見數(shù)個(gè)散在的陽(yáng)性細(xì)胞。模型組在0 h和0.5 h僅見少許陽(yáng)性細(xì)胞，隨再灌注時(shí)間延長(zhǎng)于2 h開始增多，24 h達(dá)高峰，到再灌注后72 h凋亡細(xì)胞的數(shù)量開始下降；與模型組比，黃芪注射液組相應(yīng)時(shí)點(diǎn)的凋亡細(xì)胞數(shù)減少(P<0.05)，而黃芪注射液溶劑對(duì)照組無(wú)明顯差異(P>0.05)，見圖1、2。

2黃芪注射液對(duì)腦缺血再灌注大鼠海馬組織JNK3蛋白表達(dá)的影響

Western blotting實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示，于再灌注后0 h即出現(xiàn)海馬組織JNK3表達(dá)增強(qiáng)，隨再灌注時(shí)間延長(zhǎng)表達(dá)逐漸增多，至再灌注后24 h達(dá)高峰，并于再灌注后72 h開始下降。與假手術(shù)組比，除120 h外模型組各時(shí)點(diǎn)均有顯著差異(P<0.05)；與模型組比，黃芪注射液組除120 h外其余各時(shí)點(diǎn)JNK3的表達(dá)均降低(P<0.05)；而黃芪注射液溶劑對(duì)照組則無(wú)明顯差異(P>0.05)，見圖3。

3黃芪注射液對(duì)腦缺血再灌注大鼠海馬組織JNK3mRNA表達(dá)的影響

實(shí)時(shí)熒光定量PCR結(jié)果顯示，與假手術(shù)組相比，模型組大鼠于再灌注后0 h、0.5 h、2 h、6 h、24 h和72 h JNK3 mRNA的表達(dá)明顯增高(P<0.05)，120 h組無(wú)明顯差異(P>0.05)；與模型組相比，黃芪注射液組除120 h外的各時(shí)點(diǎn)JNK3 mRNA的表達(dá)均降低(P<0.05)；而黃芪注射液溶劑對(duì)照組則無(wú)明顯差異(P>0.05)，見圖4～6。

討 論

腦血管病是臨床常見病，多發(fā)病，是當(dāng)前人類疾病三大死亡原因之一，是首位致殘因素，其中缺血性腦血管病約占全部腦卒中的70%[4]。缺血性腦血管病尤其是缺血后的再灌注損傷對(duì)人類健康危害極大，神經(jīng)細(xì)胞凋亡是缺血再灌注損傷后細(xì)胞死亡的重要形式。細(xì)胞凋亡是有核細(xì)胞在一定條件下啟動(dòng)其自身內(nèi)部機(jī)制，通過(guò)內(nèi)源性核酸內(nèi)切酶的激活而發(fā)生的細(xì)胞死亡過(guò)程，主要以細(xì)胞皺縮、胞核凝聚以及DNA鏈在核小體間被活化的核酸內(nèi)切酶切斷、形成180～200 bp等倍體的DNA片段(寡聚核小體)為特點(diǎn)。本研究發(fā)現(xiàn)腦缺血再灌注后，在對(duì)缺血敏感的海馬腦區(qū)可檢測(cè)到較多的凋亡細(xì)胞，表明細(xì)胞凋亡是缺血性腦損傷中細(xì)胞死亡的途徑之一，與我們既往研究結(jié)果一致[5]。此外本研究還發(fā)現(xiàn)黃芪注射液可減少腦缺血再灌注后的神經(jīng)細(xì)胞凋亡。

腦缺血再灌注后神經(jīng)細(xì)胞凋亡的發(fā)生機(jī)制與興奮性氨基酸、鈣超載、自由基增多等有關(guān)[6]，但更重要、更直接的是凋亡細(xì)胞內(nèi)活躍的基因表達(dá)。腦缺血再灌注損傷與其后發(fā)生的細(xì)胞凋亡之間必須要通過(guò)相應(yīng)的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路來(lái)聯(lián)系，其中MAPK信號(hào)通路是神經(jīng)細(xì)胞凋亡發(fā)生的重要環(huán)節(jié)。JNK信號(hào)通路是MAPK家族重要成員之一，它在細(xì)胞受到脅迫性刺激而發(fā)生凋亡的過(guò)程中發(fā)揮重要的作用[7]，抑制JNK信號(hào)通路可明顯抑制神經(jīng)細(xì)胞凋亡，從而減輕腦缺血再灌注損傷[8]。JNK家族是一類絲氨酸/蘇氨酸蛋白激酶，在脊椎動(dòng)物，有3種編碼JNK的基因jnk-1、jnk-2和jnk-3[9]，其相應(yīng)的編碼產(chǎn)物JNK1和JNK2在各種組織細(xì)胞中廣泛表達(dá)，而JNK3則主要表達(dá)于腦組織[10]。JNK3是腦缺血再灌注期間神經(jīng)細(xì)胞凋亡的關(guān)鍵信號(hào)[11]。葉冬青等[12]研究表明，缺氧缺糖/復(fù)氧復(fù)糖可通過(guò)增加JNK3的表達(dá)而誘發(fā)神經(jīng)元凋亡。在自由基、興奮性氨基酸等應(yīng)激刺激下，可激活JNK通路的關(guān)鍵激酶，即MAPK/ERK激酶類的MKK4 (mitogen-activated protein kinases kinases 4, MKK4)、MKK7 (mitogen-activated protein kinases kinases 7, MKK7)和MAPK/ERK激酶的激酶類的MEKK1,2,3,4 (mitogen and extracellular kinase kinase 1,2,3,4,MEKK1,2,3,4)。最終導(dǎo)致JNK三肽區(qū)的酪氨酸與蘇氨酸雙磷酸化，從而使其活化并轉(zhuǎn)移到細(xì)胞核[13]。激活的JNK通過(guò)刺激其下游底物改變線粒體通透性轉(zhuǎn)換孔(perme ablity transition pore, PTP)的通透性，促使細(xì)胞色素C(cytochrome C, CytC)釋放入胞漿，進(jìn)入胞漿的CytC與胞漿的凋亡蛋白酶激活因子1(apoptotic protease-activating factor-1, Apaf - 1)以及caspase-9前體(pro-caspase-9)結(jié)合，在ATP存在條件下形成“凋亡體”復(fù)合物(CytC+Apaf-1+pro-caspase-9)，并由此激活caspase-9[14]，活性caspase-9裂解并激活caspase-3，caspase-3激活后一方面作為蛋白酶直接降解底物，另一方面激活其它c(diǎn)aspase蛋白酶類，如caspase-6、caspase-7等，從而使細(xì)胞走向凋亡。

Figure 1. The effect ofAstragalusinjection on neuronal apoptosis in hippocampal CA1 region of cerebral ischemia reperfusion rats (TUNEL, ×400).

圖1黃芪注射液對(duì)腦缺血再灌注大鼠海馬神經(jīng)元凋亡的影響

圖2黃芪注射液對(duì)腦缺血再灌注大鼠海馬CA1區(qū)神經(jīng)元凋亡指數(shù)的影響

圖3黃芪注射液對(duì)腦缺血再灌注大鼠海馬組織JNK3蛋白表達(dá)的影響

Figure 4. Real-time PCR standard curves. A: GAPDH; B: JNK3

圖4實(shí)時(shí)定量PCR標(biāo)準(zhǔn)曲線

Figure 5. Amplification curves of GAPDH and JNK3 by real-time PCR.A: GAPDH; B: cerebral ischemia reperfusion group; C: ce-rebral ischemia reperfusion+Astragalusinjection group; D: cerebral ischemia reperfusion+vehicle group.

圖5實(shí)時(shí)定量PCR擴(kuò)增曲線

圖6黃芪注射液對(duì)腦缺血再灌注大鼠海馬組織JNK3mRNA表達(dá)的影響

本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示，腦缺血再灌注模型組大鼠海馬組織JNK3的表達(dá)隨再灌注時(shí)間的延長(zhǎng)逐漸增多，至24 h達(dá)到高峰后逐漸下降，與神經(jīng)細(xì)胞凋亡趨勢(shì)相一致，說(shuō)明腦缺血再灌注引起的神經(jīng)細(xì)胞凋亡可能與JNK3的過(guò)度激活有關(guān)。同時(shí)結(jié)果顯示，黃芪注射液可顯著抑制JNK3的表達(dá)，因此我們推測(cè)，黃芪注射液抑制腦缺血再灌注后神經(jīng)細(xì)胞凋亡可能與其抑制JNK3的表達(dá)有關(guān)。黃芪注射液是臨床治療缺血性腦血管病的常用藥物，療效良好，但作用機(jī)制尚未完全闡明。有研究證實(shí)，黃芪注射液具有降低腦缺血再灌注后腦組織的興奮性氨基酸含量、抗自由基損傷、增加NO含量、抑制Bax 蛋白表達(dá)等作用。黃芪注射液調(diào)節(jié)凋亡相關(guān)蛋白JNK3的表達(dá)及抑制腦缺血再灌注損傷細(xì)胞凋亡的發(fā)生可能與其具有上述作用有關(guān)。

綜上所述，黃芪注射液可通過(guò)下調(diào)JNK3的表達(dá)，抑制腦缺血再灌注引起的細(xì)胞凋亡，從而發(fā)揮腦保護(hù)作用。

[1] Sun W, Gould TW, Newbern J, et al. Phosphorylation of c-Jun in avian and mammalian motoneuronsinvivoduring programmed cell death: an early reversible event in the apoptotic cascade [J]. J Neurosci, 2005, 25(23): 5595-5603.

[2] 曲友直，趙燕玲，高國(guó)棟. 黃芪對(duì)腦缺血再灌注后神經(jīng)細(xì)胞凋亡及JUN蛋白表達(dá)的影響[J]. 中國(guó)中醫(yī)急癥，2007, 16(6): 701-702.

[3] 劉莎莎，高維維，錢 濤，等.黃芪注射液腹腔注射腦缺血再灌注模型大鼠海馬組織神經(jīng)元凋亡及半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶3的表達(dá)[J].中國(guó)組織工程研究, 2012， 16(20):3747-3750.

[4] Gross A. Bcl-2 proteins: regulators of the mitochondrial apoptotic program [J]. IUBMNB Life, 2001, 52(3-5): 231-236.

[5] 張雅麗，高維娟，閆鳳霞，等. 黃芪注射液抑制缺氧缺糖后復(fù)氧復(fù)糖大鼠海馬神經(jīng)細(xì)胞凋亡的研究[J]. 中國(guó)老年學(xué)雜志， 2009, 29(7): 793-796.

[6] 劉啟鋒，劉 明，劉玉河，等. 腦缺血再灌注損傷機(jī)制進(jìn)展[J]. 中華神經(jīng)外科疾病研究雜志， 2006, 5(6): 566-568.

[7] Okuno S, Saito A, Hayashi T, et al. The c-Jun N-terminal protein kinase signaling pathways mediates Bax activation and subsequent neuronal apoptosis through interaction with Bim after transient focal cerebral ischemia [J]. J Neurosci, 2004, 24(36): 7879-7887.

[8] 縱雪梅，曹 磊，許 秩. SP600125-JNK抑制劑對(duì)大鼠腦缺血再灌注神經(jīng)元損傷的保護(hù)作用[J]. 實(shí)用醫(yī)學(xué)雜志，2011, 27(14): 2529-2531.

[9] Bogoyevitch MA. The isoform-specific functions of the c-Jun N-terminal kinases (JNKs): differences revealed by gene targeting [J]. Bioessays, 2006, 28(9): 923-934.

[10]Ye DQ, Gao WJ, Yan FX, et al. Astragalus injection inhibits c-Jun N terminal kinase mRNA expression following oxygen-glucose deprivation and reintroduction in rat hippocampal neurons [J]. Neural Regen Res, 2009, 4(11): 879-884.

[11]陳春茹，郭慧娟，歐國(guó)昆，等. 姜黃素對(duì)自發(fā)性高血壓大鼠腦缺血再灌注時(shí)海馬神經(jīng)元及c-Jun 氨基末端激酶3和突觸后密度蛋白95表達(dá)的影響 [J]. 中華麻醉學(xué)雜志，2011, 31(2): 230-233.

[12]葉冬青，高維娟，閆鳳霞，等. 黃芪注射液抑制缺氧缺糖/復(fù)氧復(fù)糖大鼠海馬神經(jīng)元JNK3 mRNA的表達(dá) [J]. 中國(guó)病理生理雜志，2009, 25(9): 1756-1761.

[13]Verna L, Ganda C, Stemerman MB.Invivolow-density lipoprotein exposure induces intercellular adhesion molecule-1 and vascular cell adhesion molecule-1 correlated with activator protein-1 expression [J]. Arterioscler Thromb Vasc Biol, 2006, 26(6):1344-1349.

[14]Love S. Apoptosis and brain ischaemia [J]. Prog Neuropsychopharmacol Biol Psychiatry,2003, 27(2):267-282.

EffectsofAstragalusinjectiononneuronalapoptosisandexpressionofJNK3inrathippocampusaftercerebralischemiareperfusion

LIU Sha-sha1, GAO Wei-juan2, QIAN Tao1, ZHANG Xia1

(1DepartmentofPathophysiology,ChengdeMedicalCollege,Chengde067000,China;2HebeiChemical&PharmaceuticalCollege,Shijiazhuang050026,China.E-mail:gwj6088@163.com)

AIM: To investigate the effects ofAstragalusinjection on neuronal apoptosis and expression of c-Jun N-terminal kinase 3 (JNK3) in the rat hippocampus after cerebral ischemia reperfusion.METHODSThe rat model of cerebral ischemia reperfusion was set up by a four-vessel occlusion method. The SD rats were randomly divided into 4 groups: sham operation group, cerebral ischemia reperfusion group (model group), cerebral ischemia reperfusion+Astragalusinjection group (Astragalusinjection group) and cerebral ischemia reperfusion+vehicle group (vehicle group). The rats in model group,Astragalusinjection group and vehicle group after transient global cerebral ischemia (30 min) were then divided into 7 subgroups according to the reperfusion time of 0 h, 0.5 h, 2 h, 6 h, 24 h, 72 h and 120 h. The apoptosis of the neuron in the hippocampus was measured by the method of TUNEL staining. The expression of JNK3 at mRNA and protein levels was determined by real-time PCR and Western blotting,respectively.RESULTSCompared with sham operation group, the number of apoptotic neurons increased in model group (P<0.05). Compared with model group, the number of apoptotic neurons decreased obviously inAstragalusinjection group (P<0.05). Compared with sham operation group, the expression of JNK3 at mRNA and protein levels in the hippocampus increased obviously in model group at all time points except 120 h (P<0.05). Compared with model group, the expression of JNK3 at mRNA and protein levels in the hippocampus decreased obviously inAstragalusinjection group at all time points except 120 h (P<0.05).CONCLUSIONAstragalusinjection decreases neuronal apoptosis in rat hippocampus after cerebral ischemia reperfusion by inhibiting the expression of JNK3 at mRNA and protein levels.

Cerebral ischemia reperfusion;Astragalusinjection; c-Jun N-terminal kinase 3; Hippocampus; Apoptosis

R363

A

10.3969/j.issn.1000-4718.2012.09.009