摘要:實時熒光定量PCR技術是在PCR反應體系中加入熒光染料或熒光探針,利用熒光信號積累實時監測整個PCR反應進程,最后通過標準曲線對未知模板進行定量分析,具有操作簡便、快速高效、高通量、高敏感性等特點。近年來,實時熒光定量PCR技術在植物檢疫研究上不斷深入,大大提高了植物疫情的檢測效率和監測防治水平。綜合論述了實時熒光定量PCR技術在由真菌、細菌、病毒和線蟲引發的植物疫情的檢測與應用。
關鍵詞:實時熒光定量PCR技術;植物檢疫;植物病害
中圖分類號:S41-3 文獻標識碼:A 文章編號:0439-8114(2012)01-0005-04
Research Progress of Application of Real Time Fluorescent Quantitative PCR Technology in Plant Quarantine
HUANG Hai-quan
(Beilun Entry-Exit Inspection and Quarantine Bureau,Ningbo 315800,Zhejiang,China)
Abstract: FQ-PCR involves the process of adding fluorescent dye or fluorescent probes in the PCR reaction system. Based on the accumulation of fluorescent signal, the polymerase chain reaction (PCR) process could be monitored in order to quantitatively analyze unknown template by means of making standard curve. FQ-PCR has good features such as simplicity of operation with high efficiency, high throughput, and high sensitivity etc. In recent years, application of FQ-PCR in plant quarantine was studied and improved the detecting efficiency and monitoring level of plant epidemic. The application of quantitative fluorescence detection in plants epidemic caused by fungi, bacteria, viruses and nematodes was comprehensively described.
Key words: real-time fluorescent quantitative PCR; plant quarantine; plant disease
實時熒光定量PCR(Real-time fluorescent quantitative PCR,FQ-PCR)技術是20世紀90年代中期發展起來的一種新型核酸定量技術。最早是由Higuchi等[1]于1992年提出來的,1996年由美國Applied Biosystems公司推出。與普通PCR相比,它具有快速、靈敏、高通量、特異性強、自動化程度高、重復性好、定量準確等特點。過去實時熒光定量PCR技術主要應用在醫學診斷、新型農業、基礎研究等領域[2],而在植物檢疫中的應用相對較少[3],隨著分子生物學的不斷發展,特別是在檢疫檢驗系統,實時熒光定量PCR技術已經被廣泛用來檢測植物病害,有效地遏制了國外有害生物的入侵,保證了生物入境安全。
1 實時熒光定量PCR技術原理
實時熒光定量PCR技術是指在PCR反應體系中加入熒光基團,利用熒光信號累積實時監測整個PCR技術進程,最后通過標準曲線對未知模板進行定量分析的方法。在實時熒光定量PCR技術中有一個很重要的概念,即Ct值。C代表循環(Cycle),t代表閾值(Threshold)。Ct值是指每個反應管內的熒光信號到達設定的閾值時所經歷的循環數。研究表明,每個模板的Ct值與該模板的起始拷貝數的對數存在線性關系,起始拷貝數越多,Ct值越小。因此,要利用已知起始拷貝數的標準品作出標準曲線,再利用分析軟件獲得未知樣品的Ct值,便能根據標準曲線計算出該樣品的起始拷貝數[4]。
2 實時熒光定量PCR技術檢測方法
該檢測方法主要分為兩大類:第一類是使用特異的雙鏈DNA(dsDNA)結合染料,常用的有SYBR Green和LC Green;第二類則是應用熒光標記探針,如TaqMan探針、分子信標等,是建立在熒光共振能量轉移原理(Fluorescence resonance energy transfer,FRET)[5]上的。
2.1 SYBR Green I熒光染料檢測技術
SYBR Green I是一種非飽和菁類熒光素,可以嵌合于DNA雙鏈結構的小溝中,非特異地與dsDNA分子結合,是應用最廣泛的非探針類化學檢測物。當它與 DNA雙鏈結合時發出熒光,熒光強度隨著聚合反應的進行逐漸增加,便可被熒光探測系統檢測到。但是由引物二聚體、單鏈二級結構以及錯誤的擴增產物引起的假陽性會影響定量的精確性??梢栽冢校茫医Y束時通過分析擴增產物的熔解曲線來排除非特異性擴增[2]。
2.2 Taq Man探針檢測方法
TaqMan水解探針主要是利用Taq酶5’→3’外切核酸酶活性,并在PCR反應體系中加入一個熒光標記探針[2]。探針的5’端熒光發射基團FAM(6-羧基熒光素),3’端標記淬滅基團TAMRA(6-羧基四甲基丹諾明)。該探針在PCR過程中不能延伸。當探針保持完整時,根據FRET原理,3’端淬滅基團抑制5’端發射基團的熒光發射;在PCR的退火期,引物和探針同時與DNA模板發生特異性雜交;延伸期,引物在Taq酶作用下沿DNA模板延伸,當到達探針處,Taq酶發揮5’→3’外切核酸酶活性,將探針切斷。此時發射基團遠離淬滅基團,熒光信號得以釋放,熒光探測系統便會檢測到熒光密度有所增加。模板每復制1次,就有1個探針被切斷并伴有1個熒光信號的釋放。產物與熒光信號產生一對一的對應關系,隨著產物的增加,熒光信號不斷增強。當信號增強到某一閾值,此時的循環次數即為循環閾值(Ct)。Ct與PCR體系中起始模板數的對數之間有嚴格的線性關系,利用不同標準模板擴增的Ct值和標準模板數經過對數擬合作圖,制成標準曲線,再根據待測樣品的Ct值可以準確地確定起始模板的數量[6]。
2.3 實時熒光定量PCR技術定量方法
在實時熒光定量PCR中,模板的定量有兩種方法,即絕對定量和相對定量。絕對定量指用已知的標準曲線來推算未知的樣本量;相對定量指在一定樣品中靶序列相對于另一參照序列的量的變化[7]。
3 實時熒光定量PCR技術在植物檢疫研究中的應用
3.1 在真菌引起的植物病害檢測中的應用
1999年Bohm等[8]首次將實時熒光定量PCR方法應用于植物病理學研究,2000年有學者首次將該方法應用于植物病理真菌的檢測[9]。在我國,使用定量PCR技術對植物病理真菌檢測相對較晚,程穎慧等[10]報道了小麥印度腥黑穗病菌的實時熒光定量PCR檢測。章桂明等[11]報道應用TaqMan MGB探針檢測小麥印度腥黑穗病菌和黑麥草腥黑穗病菌,分別建立了小麥印度腥黑穗病菌和黑麥草腥黑穗病菌實時熒光單重PCR和實時熒光雙重PCR檢測方法。Miguel等[12]使用實時熒光定量PCR技術檢測了罌粟攜帶霜霉菌引起的霜霉病。年四季等[13]根據篩選的TCK獨有差異基因片段(1 322 bp)設計特異性引物對CQUTCK4/CQUTCK5和TaqMan 探針CQUP1,建立SYBR GreenⅠ熒光染料法和TaqMan水解探針法定量PCR檢測體系,均可成功鑒別出TCK與小麥矮腥黑穗病菌,并可快速準確檢測小麥矮腥黑穗病菌冬孢子和檢測罹病小麥植株體內的侵染菌絲體。黃國明等[14]設計了通用TaqMan探針及引物和特異TaqMan探針及共用引物,結合通用探針的單色熒光PCR和特異探針的雙色熒光PCR兩種方法,成功摸索出一種Neotyphodium coenophialum和Neotyphodium lolii的菌絲及單粒種子快速、穩定、可靠、特異性強的熒光PCR檢測方法,使檢測時間由至少1個月縮短至7~8 h,而且檢測靈敏度達到單粒種子。蘇丹等[15]成功建立了利用PCR技術對黑麥草中內生真菌感染狀況的檢測和定量分析方法,發現不同植株之間內生真菌含量差異較大。
3.2 在細菌引起的植物病害檢測中的應用
植物病原細菌(Phytobacteria)主要類群有16個屬,除土壤桿菌(Agrobacterium)、歐文氏菌屬(Erwinia)、假單胞菌屬(Pseudomonas)、黃單胞菌屬(Xanthomonas)和鏈絲菌屬(Streptomyces)之外,革蘭氏陰性菌增加了嗜酸菌屬(Acidovorax)、根桿菌屬(Rhizobzcter)、根單胞菌屬(Rhizomonas)、嗜木質菌屬(Xylophilus)、泛生菌屬(Pantoea)和木質部小菌屬(Xylella)等;革蘭氏陽性細菌則有棒形桿菌屬(Clavibacter)、節桿菌屬(Arthrobacter)、短小桿菌屬(Curtobacter)、紅球菌屬(Rhodococxcus)、芽孢桿菌屬(Bacillus)、布克氏菌屬和韌皮部桿菌屬等能引起多種農作物、園林觀賞、 經濟作物及牧草上的病害。利用熒光定量PCR技術準確成功鑒定的有柑橘黃龍病菌[16,17]、番茄潰瘍病菌(Clavibacter michiganensis subsp.Michiganersis)[18]、柑橘潰瘍病菌(Xanthomonas axonopodis pv.citri)[19]、西瓜細菌性果斑病菌(Acidovorax avenae subsp. citrulli)[20]、 梨火疫病菌(Erwiniaamylovora)[21]、 水稻白葉枯病菌(Xanthomonas oryzae pv. oryzae)[22,23]、玉米細菌性枯萎病菌(Pantoea stewartiisub sp. Stewartii)[24]、 苜蓿細菌性萎蔫病菌(Clavibacter michiganensis subsp. Insidiosums)[25]、菜豆細菌 性 萎 蔫 病 菌(Curtobacterium flaccumfaciens pv.Flaccumfaciens)[26]、哈密瓜細菌性果斑病菌(Acidovorax avenae subsp. Citrulli)[27]、香蕉枯萎細菌性病菌(Ralstonia solanacearum race 2)[28]、馬鈴薯環腐病菌(Clavibacter michiganensis subsp. Sepedonicus)[29]等細菌的檢測。植物病原細菌的傳統檢測方法主要是采用生物學和免疫學的方法,這種方法費時費力,而且準確率也不高。但實時熒光定量PCR技術可以很好地解決這些問題,不僅有效地提高了檢測速度和水平,而且靈敏度也比一般的檢測方法高出100倍左右。還有一個明顯的優點是試驗中不需要PCR的后續處理及病原菌的分離培養,大大簡化了試驗操作步驟,縮短了檢測時間。
3.3 在病毒引起的植物病害檢測中的應用
植物病毒是僅次于真菌的一類病原體,由于病毒對寄主的絕對寄生性,使其危害增大,同時防治又很困難,故病毒病有植物癌癥之稱。植物病毒的檢測方法主要有生物學方法、免疫學方法和分子生物學方法[30],其中檢測最方便的莫過于實時熒光定量PCR技術,它具有靈敏、快速和特異性強等優點。煙草環斑病毒(Tobacco ringspot virus.)為中國公布的第二類禁止進境檢疫有害生物,鄭耘等[31]首次應用直接結合反轉錄實時熒光PCR技術檢測煙草環斑病毒。楊偉東等[32]首次應用免疫捕捉反轉錄實時熒光PCR技術成功檢測煙草環斑病毒,由此解決了煙草環斑病毒檢測工作中由于隱癥、干擾物質存在而影響檢測結果的問題,為植物病毒病原的快速、簡便有效檢測提供了一套科學的方法。聞偉剛等[33]用實時熒光PCR技術檢測了齒蘭環斑病毒與建蘭花葉病毒,用這種方法從來自臺灣的蝴蝶蘭樣品中檢出齒蘭環斑病毒。聞偉剛等[34]建立了玉米褪綠斑駁病毒的熒光定量PCR的檢測方法,其靈敏度比普通RT-PCR高出100倍。
3.4 在線蟲引起的植物病害檢測中的應用
松材線蟲病是世界上四大林木病害之一,也是世界重要的檢疫性有害生物。在我國松褐天牛是它的主要傳媒昆蟲。松材線蟲病致病力強,寄主死亡速度快,傳播也快,且常常猝不及防,一旦發生,則治理難度大。由于環境、氣候和不同寄主的影響,在形態上存在一定的差異[35]?,F在發現除了從美國、日本等疫區檢測出木質包裝攜帶松材線蟲外,一些非疫區國家也檢測出松材線蟲,口岸檢疫工作形勢嚴峻。實時熒光PCR技術在口岸植物檢疫工作中起到了很大的作用。王金成等[36]用探針法對松材線蟲進行了定量PCR檢測,為口岸快速準確地鑒別松材線蟲建立了行業標準。王翀等[37]建立了鱗球莖莖線蟲實時熒光PCR的檢測技術,整個檢測過程只需要30~120min,能夠滿足口岸檢驗檢疫快速通關的要求。有學者應用TaqMan探針進行馬鈴薯金線蟲和白線蟲實時熒光PCR的研究,可高度靈敏地檢測單個馬鈴薯金線蟲的孢囊或幼蟲,最高檢測靈敏度達到10fg[38,39]。龔艷清等[40]建立了簡單異尖線蟲SYBR Green I熒光定量PCR技術方法,可用于簡單異尖線蟲的鑒定。
4 結語
目前實時熒光定量PCR技術作為核酸定量的方法已經廣泛地應用于植物研究,例如植物抗逆性研究,轉基因植物檢測,植物抗病性研究,植物發育學研究,環境對植物基因表達的影響[41]。可見其應用的領域遠比本研究涉及的范圍要廣得多。但是實時熒光PCR技術也有其局限性,會受到非靶序列DNA的干擾,如何排除背景的影響,使實時熒光定量PCR具有普遍性是人們面臨的又一個挑戰。
植物病害危害性是極其嚴重的,防治十分困難,例如柑橘潰瘍病、柑橘黃龍病、果樹根癌病、水稻細菌性條斑病和水稻白葉枯病等都是許多國家的植物檢疫性病害,防治或根除辦法都是極其棘手和困難的。口岸在加強植物檢疫工作的同時,也要不斷地進行基礎研究,建立起一系列生物安全措施和簡便準確的檢測方法,以便進一步提高口岸植物檢疫工作的效率。
總之,實時熒光定量PCR技術為植物檢疫工作的開展提供了強有力的技術支撐,如果能與其他分子生物學以及傳統方法相結合,將會推動口岸檢疫工作更好地發展。
參考文獻:
[1] HIGUCHI R,DOLLINGER G,WALSH P S, et al.Simultaneous amplification and detection of specific DNA-sequences[J]. Bio-Technology,1992, 10(4):413-417.
[2] BUSTIN S A, MUELLER R. Real-time reverse transcription PCR(qRT-PCR) and its potential use in clinical diagnosis[J]. Clinical Science, 2005, 10(9):365-379.
[3] 施林祥,李東輝.實時熒光 PCR 研究新進展[J].World Chinese Journal of Digestology,2005,13(5):596-599.
[4] MIKAEL K,JOSE M A,MARTIN B,et al. The real-time polymerase chain reaction[J]. Molecular Aspects of Medicine,2006,27:95-l25.
[5] CLEGG R M. Fluorescence resonance energy transfer[J]. Curr Opin Biotechnol[J]. 1995,6(1):103-110.
[6] HEID C A,STEVENS J,LIVAK K J,et al. Real-time quantitative PCR[J]. Genome Res,1996,6(10):986-994.
[7] WANG S Q, WANG X H, CHEN S H, et al. A new fluorescentquantitative polymerase chain reaction technique[J]. Analytical Biochemistry,2002,309:206-211.
[8] BOHM J, HANG A, SCHUBERT R, et al. Realtime quantitative PCR:DNA determination in isolated spores of the mycorrhizal fungus glomus mosseae and monitoring of phytophthora infestans and phy topht hora citricola in their respective host plants[J]. J Phytopathology,1999,147:409-416.
[9] REID D F,KAREN E S, PAUL W T,et al. Identification and differentiation of Tilletia indica and T. walkeri using the polymerase chain reaction[J]. Phytopathology,2000,90(9):951-960.
[10] 程穎慧,章桂明,王 穎,等.小麥印度腥黑穗病菌實時熒光PCR檢測[J]. 植物檢疫,2002,16(6):321-325.
[11] 章桂明,程穎慧,王 穎,等. 應用TaqMan MGB探針檢測小麥印度腥黑穗病菌和黑麥草腥黑穗病菌[J].植物病理學報,2006,36(2):142-151.
[12] MIGUEL M B,FRANCISCO J M L,RAFAEL M J D,et al. Real-time PCR quantification of peronospora arborescens, the opium poppy downy mildew pathogen, in seed stocks and symptomless infected plant[J]. Plant Disease,2011,95(2):143-152.
[13] 年四季,袁 青,殷幼平,等. 實時熒光定量 PCR 鑒定小麥矮腥黑穗菌技術研究[J].中國農業科學,2009,42(12):4403-4410.
[14] 黃國明,廖 芳,劉躍庭,等.葦狀羊茅內生真菌與多年生黑麥草內生真菌實時熒光PCR檢測研究[J].菌物學報,2007,26(2):257-265.
[15] 蘇 丹,任安芝,高玉葆.黑麥草內生真菌感染狀況的檢測及定量分析[J].微生物學通報,2006,33(5):12-16.
[16] 田亞南,柯 穗,柯 沖.應用多聚酶鏈式反應(PCR)技術檢測和定量分析柑桔黃龍病病原[J].植物病理學報,1996,26(3):243-250.
[17] 胡 浩,殷幼平,張利平,等. 柑桔黃龍病的常規PCR及熒光定量 PCR 檢測[J].中國農業科學,2006,39(12):2491-2497.
[18] 夏明星,趙文軍,馬 青,等. 番茄細菌性潰瘍病菌的實時熒光PCR檢測[J].植物病理學報,2006,36(2):152-157.
[19] 殷幼平,黃冠軍,趙 云,等. 柑桔潰瘍病菌實時熒光定量PCR檢測與應用[J]. 植物保護學報,2007,34(6):607-613.
[20] 馮建軍,許 勇,李建強,等. 免疫凝聚試紙條和TaqMan探針實時熒光PCR檢測西瓜細菌性果斑病菌比較研究[J].植物病理學報,2006,36(2):102-108.
[21] 錢國良,胡白石,盧 玲,等. 梨火疫病菌的實時熒光PCR檢測[J].植物病理學報,2006,36(2):123-128.
[22] 孫 蕾,吳茂森,何晨陽. 建立以lipA和purH為靶基因的RTQ-PCR方法對水稻白葉枯病菌侵染過程進行定量分析[J].中國農業科學,2007,40(8):1660-1666.
[23] 廖曉蘭,朱水芳,趙文軍,等. 水稻白葉枯病菌和水稻細菌性條斑病菌的實時熒光PCR快速檢測鑒定[J].微生物學報,2003,43(5):626-634.
[24] 漆艷香,朱水芳,趙文軍,等. 玉米細菌性枯萎病菌TaqMan探針實時熒光PCR檢測方法的建立[J]. 植物保護學報,2004, 31(1):51-56.
[25] 漆艷香,趙文軍,朱水芳,等.苜蓿萎蔫病菌TaqMan探針實時熒光PCR檢測方法的建立[J].植物檢疫,2003,17(5):260-264.
[26] 漆艷香,朱水芳,肖啟明.菜豆細菌性萎蔫病菌16S rDNA基因克隆及TaqMan探針實時熒光PCR檢測[J].仲愷農業技術學院學報,2004,17(4):10-17.
[27] 回文廣,趙廷昌,SCHAAD N W,等. 哈密瓜細菌性果斑病菌快速檢測方法的建立[J]. 中國農業科學,2007,40(11):2495-2501.
[28] 漆艷香,謝藝賢,張輝強,等.香蕉細菌性枯萎病菌實時熒光PCR檢測方法的建立[J].華南熱帶農業大學學報,2005,11(1):1-4.
[29] 魏 琪,胡林雙,董學志,等.馬鈴薯環腐病菌Real-time TaqMan-PCR檢測體系的建立[J]. 中國馬鈴薯,2010(5):301-305.
[30] 童秀英,楊文權,寇建村. 藥用植物病毒病及其防治[J].青海農林科技,2005(2):33-34,36.
[31] 鄭 耘, 楊偉東, 陳枝楠,等. 煙草環斑病毒DB-RT-Realtime PCR檢測方法研究[J].植物保護,2007,33(1):117-120.
[32] 楊偉東,鄭 耘,章桂明,等. 煙草環斑病毒IC-RT-Realtime PCR檢測方法研究[J].中國病毒學,2006,21(3):277-280.
[33] 聞偉剛,譚 鐘,崔俊霞. 實時熒光RT-PCR方法檢測齒蘭環斑病毒與建蘭花葉病毒[J]. 植物保護,2009,35(4):101-104.
[34] 聞偉剛,張建成,崔俊霞,等. 玉米褪綠斑駁病毒實時熒光RT-PCR檢測方法研究[J].植物檢疫,2011,25(1):39-42.
[35] ELBADRI G A A, GERAERT E, MOENS M. Morphological differences among Radopholus similis(Cobb,1893) Thorne, 1949 populations[J]. Russian Journal of Nematology,1999,7(2):139-153.
[36] 王金成,季 鐳,楊秀麗,等. 松材線蟲TaqMan探針實時熒光PCR診斷[J]. 植物病理學報,2006,36(3):281-284.
[37] 王 翀,葛建軍,陳長發. 鱗球莖莖線蟲實時熒光PCR檢測技術的研究[J]. 植物檢疫,2005,19(1):11-14.
[38] 葛建軍,曹愛新,陳洪俊,等. 應用TaqMan探針進行馬鈴薯金線蟲實時熒光PCR檢測技術研究[J].植物保護,2009,35(4):105-109.
[39] 葛建軍,曹愛新,陳洪俊,等. 實時熒光PCR檢測馬鈴薯白線蟲技術研究[J]. 植物檢疫,2009,23(4):10-13.
[40] 龔艷清,鄭洋妹,陳信忠.SYBR Green Ⅰ熒光定量PCR鑒定簡單異尖線蟲方法的建立[J]. 檢驗檢疫學刊,2010(6):28-31.
[41] 胡丹丹,顧金剛,姜瑞波,等. 定量RT-PCR及其在植物學研究中的應用[J].植物營養與肥料學報,2007,13(3):520-525.