混合菌群糖化纖維素的影響因素研究

賀月林，郭照輝，譚周進

（1.湖南省微生物研究所，湖南 長沙 410128；2.湖南中醫藥大學，湖南 長沙 410208)

纖維素是植物組織的基本成分，也是綠色植物光合作用的主要產物，它的含量約占植物總量的一半，是地球上既豐富又不斷再生的有機物質[1]。隨著人們的生活水平的提高，纖維素類物質開始廣泛的應用，以纖維素類物質為主的有機廢棄物也就日益增多。因此，纖維素分解的研究對減輕廢棄物給環境的壓力以及纖維素資源的開發和利用有重要的意義。目前，對纖維素的降解利用主要采用生物手段，即利用纖維素分解菌或其產生的酶來降解纖維素[2]，因此，分離和篩選纖維素分解菌的工作尤為重要。產纖維素酶的微生物包括真菌、細菌和放線菌。其中主要有：康氏木霉（Trichoder-makoningii）、黑曲霉（Aspergillusniger）、斜臥青霉（Penicillium decumbens）、芽孢桿菌（Bacillussp.）等，而分解纖維素的細菌又包括好氧性細菌和厭氧性細菌。在還田秸稈的生物腐熟劑中，好氧性細菌制劑的施用可能會導致土壤還原性有害物質產生，對環境和作物都產生不利的影響；而厭氧性細菌制劑的施用，則可能會避免由此而產生的有害影響[3]。筆者在研究了國內外的研究動態之后，從不同生態環境下的土壤中選育出分解濾紙效果較好的好氧性纖維素分解菌與厭氧性纖維素分解菌，試圖利用厭氧性細菌與好氧性細菌一起制成秸稈腐熟劑，充分利用好氧性細菌繁殖快和厭氧性細菌耗氧低或不耗氧的特點。

1 材料與方法

1.1 材 料

1.1.1 供試材料 供試材料為湖南省微生物研究所附近不同生態環境下有機質含量較高的土壤，分別采自畜牧場、淤水溝、大田、魚塘、菜地等地方，共40份采樣。

1.1.2 培養基 （1）好氧性纖維素分解菌（改良查氏培養基）[4]：NaNO31 g， (NH4)2SO41 g，K2HPO41 g，KCl 0.5 g，MgSO4·7H2O 0.5 g，FeSO4·7H2O 0.01 g，CMC-Na 1 g，H2O 1 000 mL，pH 7.0～7.4，瓊脂20 g；（2）厭氧性纖維素分解菌培養基[4]：KNO31 g，NH4H2PO41 g，NaCl 1 g，MgSO4·7H2O 0.5 g，CaCl2·6H2O 0.3 g，CaCO35 g，FeSO4·7H2O 0.01 g，蛋白胨1 g，H2O 1 000mL，無淀粉濾紙條。

1.2 方 法

1.2.1 纖維素分解菌的分離培養 （1）好氧性纖維素分解菌:采用稀釋平板分離法[4]，將改良查氏培養基倒入培養皿，搖勻，置桌面冷凝成平板，取不同土樣放入無菌水中，搖勻，制成土壤稀釋液。將土壤稀釋液上清液0.1mL滴入平板中，用無菌涂棒使其分布均勻，在37℃下培養2～3 d，將纖維素分解菌進一步純化在斜面上保存。（2）厭氧性纖維素分解菌:用帶無淀粉濾紙條的厭氧性纖維素分解菌培養基培養。濾紙剪成4 cm×1 cm的長條狀，厭氧性纖維素分解菌培養基15mL裝入30mL的大試管中，將1 g土樣和濾紙條裝入試管，用棉花塞封口，37℃培養7～14 d，將濾紙條溶解的樣品進一步富集，保存。

1.2.2 搖床培養 （1）挑選保存的好氧性纖維素分解菌2環到裝有100 mL改良查氏液體培養基的300mL三角瓶中，搖床轉速150 r/min，37℃培養36 h。（2）取保存的厭氧性纖維素分解菌5 mL到裝有厭氧性纖維素分解菌培養基500mL的密封鹽水瓶中，保持其較好的氣密性，搖床轉速120 r/min，37℃搖床培養48 h。

1.2.3 酶活力測定 用3,5-二硝基水楊酸法測定纖維素CMC酶活[5]。取搖床培養后生成的酶液10 mL，2 000 r/min離心5 min，取上清液0.2 mL與CMC-Na 1.8 mL混合，在50℃下恒溫水浴30min，以沸水中加熱5 min滅活酶液做對照，還原糖用3,5-二硝基水楊酸法測定。以每毫升酶液在30min所產生的葡萄糖毫克數定義為一個酶活單位。

1.2.4 底物對纖維素酶活性的影響 將有纖維素酶活性的好氧性纖維素分解菌與厭氧性纖維素分解菌同時分別接種在含CMC-Na、稻草粉和濾紙的改良查氏培養基中，搖床培養，測定酶活，進行比較。

1.2.5 尿素對纖維素酶活性的影響 將有酶活性的好氧性纖維素分解菌與厭氧性纖維素分解菌同時接種在以尿素做N源的改良查氏培養基中，并改變其用量，搖床培養，測定酶活，進行比較。

1.2.6 磷酸鹽的用量對纖維素酶活性的影響 將有酶活性的好氧性纖維素分解菌與厭氧性纖維素分解菌同時接種在不同P源用量的改良查氏培養基中，搖床培養，測定酶活，進行比較。

2 結果與分析

2.1 纖維素分解菌的培養特征

好氧性纖維素分解菌在37℃下培養2～3 d后，平板上出現乳白色粘液，透明圈邊緣整齊，直徑約1.0～5.0mm，最后出現黃色圓斑，將細菌純化，挑選單菌落斜面保存，得到20種不同土壤來源的菌株；厭氧性纖維素分解菌在37℃下培養7～14 d后，試管中濾紙軟化，表面成絮狀，最后斷裂、完全崩解，保存有上述特征的土壤樣品液。

2.2 纖維素分解菌產酶活性的測定

經過初步篩選，得到20種土壤產生的纖維素分解菌，將這些菌種保存，進行搖床培養，測定酶活，得到7種酶活較高的好氧性纖維素分解菌和6種厭氧性纖維素分解菌，7種好氧性纖維素分解菌A 至 G 產酶活性分別為 54.27、37.00、40.50、47.40、63.20、42.40、26.97 U/mL，6 種厭氧性纖維素分解菌a 至 f產酶活性分別為 93.02、48.24、72.35、77.52、68.91、79.24 U/mL。

2.3 好氧性纖維素分解菌與厭氧性纖維素分解菌之間產酶的影響

鑒于好氧性纖維素分解菌和厭氧性纖維素分解菌產酶時的相互影響，將纖維素酶活性較強的厭氧性纖維素分解菌a與好氧性纖維素分解菌A按1.2.2中（2）的搖床方法進行搖床培養，測得酶活為79.24 U/mL。此結果說明了厭氧性纖維素分解菌與好氧性纖維素分解菌在產酶時沒有受到相互抑制。

2.4 底物對纖維素酶活性的影響

用菌株A與菌液a混合培養測定以稻草粉為底物產生的酶活為41.3 U/mL，以CMC-Na為底物產生的酶活為54.3 U/mL，以濾紙為底物產生的酶活為20.6 U/mL，經比較不同底物對纖維素酶活性的影響，得到以CMC-Na為底物產生的酶活最大，稻草粉次之，濾紙最小。

2.5 尿素對纖維素酶活性的影響

用菌株A與菌液a混合培養測定在不同尿素含量下的酶活。當N源用量為0.1%、0.2%、0.5%、1.0%、2.0%時，菌株產生的纖維素酶活分別為41.34、34.45、22.40、17.24、10.33 U/m L。這說明使用0.1%尿素做N源時所產生的纖維素酶活性最高，此后隨著N的含量的不斷增加，酶活性減小。

2.6 磷酸鹽對纖維素酶活性的影響

用菌株A與菌液a混合培養測定在不同磷酸鹽含量下的纖維素酶活。當磷酸鹽用量為0.01%、0.05%、0.1%、0.2%、0.5%時，菌株產生的纖維素酶活分別為 28.5、33.5、44.8、59.2、61.4 U/m L。這表明隨著磷酸鹽的含量不斷增加，酶活性有增加的趨勢；但其含量從0.2%增加到0.5%時，纖維素酶的活力增加不大。

3 討 論

目前，國內推行將秸稈直接還田。在配合秸稈還田的制劑方面，日本的酵素菌、EM，國內的腐稈靈，其腐熟效果都不佳，特別是在腐解速度上。同時，國內外研究者為了加快腐解速度，研制了一些促進微生物生長的產品，雖然取得了一定的效果，但是還田秸稈在快速腐解的過程中，產生了大量的還原物質，對作物有較大的毒害作用，影響作物的生長，還加大了還原性有害氣體的產生，如甲烷、NO、N2O等，造成溫室效應。這是由于目前國內使用的微生物主要為好氧性的，在分解秸稈的過程中，要消耗大量的氧氣。日本已經生產了一種厭氧性微生物制劑，既可以促進秸稈的較快腐解，又可以減少對作物的損害。應用資料顯示，該制劑能夠促進秸稈腐熟，提高作物抗逆與抗病蟲害的能力，使作物早生早發、耐倒伏，改善土壤結構等等。因此，從事厭氧性纖維素分解微生物制劑的研發，在理論上和實踐中都是可行的。本研究篩選到一種能夠在好氧性與厭氧性條件下共同使用的纖維素腐解制劑生產組合菌，并且對纖維素分解菌的產酶條件進行了初步研究，為相關制劑的研制與應用奠定了基礎。其中的好氧性纖維素分解菌能夠快速分解纖維素，造成局部厭氧性環境，促進厭氧性纖維素分解細菌的作用，減少還原性有害物質的生成。有關該制劑的進一步研究與應用還有待于深入進行。

[1] 張秀紅，張彩琴，張如云，等.高活性纖維素分解菌株的篩選及其產酶條件的研究[J].山西師范大學學報，2002，16（3）：56-60.

[2] 許修宏，肖玉珍，李 杰.高效纖維素分解菌篩選的研究[J].東北農業大學學報，1998，29（4）:23-24.

[3] 譚周進.稻草還田與環保[J].湖南農業，2003，（5）：16.

[4] 李阜棣，喻子牛，何紹江.農業微生物實驗技術[M].北京：中國農業出版社，1996.

[5] 北京大學生物系生物化學教研室.生物化學實驗指導 [M].北京：人民教育出版社，1980.22-24.