











摘要:為研究綿羊肺源大腸桿菌cyaA基因的分子特征、抗原性及其遺傳進化關系,采用PCR技術對綿羊肺源大腸桿菌XJ10菌株的cyaA基因進行擴增、克隆并測序,應用定量PCR檢測cyaA基因在不同培養階段的mRNA表達量,利用在線軟件對其進行編碼蛋白分子特征、抗原性及其遺傳進化分析。結果顯示,cyaA基因全長2 547 bp,編碼848個氨基酸;cyaA基因在細菌對數期的mRNA表達量最高,其次是穩定期及遲緩期,在衰亡期的mRNA表達量最低;氨基酸序列分析發現,分子式為C4 389H6 759N1 193O1 273S30,理論分子質量為97.57 ku,理論等電點為5.82,為酸性親水性蛋白,穩定性較低;二級結構中α-螺旋、無規則卷曲、延伸鏈和β-折疊所占比例分別為42.81%、39.03%、14.27%和3.89%。AC蛋白無信號肽與跨膜區,保守結構域位于1~848位氨基酸,屬于腺苷酸環化酶超家族,具有14個開放閱讀框,存在81個磷酸化位點。AC蛋白B細胞優勢表位共16個,分別位于第44~51、61~65、248~250、259~267、296~304、355~366、436~439、456~456、476~481、489~490、540~559、589~597、634~640、717~722、766~773、806~806區段;遺傳進化分析發現大腸桿菌 XJ10菌株AC蛋白與志賀氏菌AC蛋白相似性最高。本試驗結果為進一步研究大腸桿菌AC蛋白的功能及其作為大腸桿菌疫苗候選抗原奠定了基礎。
關鍵詞:綿羊肺源大腸桿菌;cyaA基因;分子特征;抗原性;遺傳進化
中圖分類號:S855.1+2 文獻標志碼:A
文章編號:1002-1302(2024)17-0058-07
收稿日期:2023-07-19
基金項目:新疆生產建設兵團重點領域科技攻關計劃(編號:2021AB012、2019AB029)。
作者簡介:操義恒(1997—),男,湖北孝感人,碩士,主要從事動物傳染病診斷與防治研究。E-mail:1050830806@qq.com。
通信作者:周 霞,博士,教授,主要從事人畜共患病致病機制與防控研究,E-mail:32123004@qq.com;黃 新,碩士,研究員,主要從事動物傳染病診斷與防治研究,E-mail:419824643@qq.com。
大腸桿菌(Escherichia coli,簡稱E.coli)是人獸共患條件致病的重要病原,也是適應能力和致病能力最強的細菌之一,在臨床中可導致多種宿主發生疾病,包括牛羊肺炎、禽類氣囊炎、心包炎、輸卵管炎、新生兒腦膜炎、菌血癥、敗血癥等疾病[1-4]。研究顯示,其攜帶脂多糖、毒素、黏附因子、外膜蛋白、毒力島等多種毒力因子,這些毒力因子幫助菌株定殖和入侵宿主組織細胞,更甚者對其造成損傷,此外一些毒力因子還能使菌株逃避宿主細胞吞噬作用,刺激宿主產生炎癥反應[5-7]。cyaA基因是許多細菌與毒力大小密切相關的重要基因之一,其編碼的腺苷酸環化酶(adenylate cyclase,AC)在大腸桿菌關于調節毒力方面具有重要作用。AC主要作用機制是催化腺苷三磷酸(adenosine triphosphate,ATP)形成環腺苷酸(cyclic adenosine monophosaphate,cAMP),cAMP與受體蛋白(cAMP receptor protein,CRP)結合,形成CRP-cAMP復合體,可以調控大腸桿菌多數基因轉錄[8-11]。柴迎錦通過構建大腸桿菌XJ10菌株的cyaA基因缺失株,發現缺失株對昆明鼠的半數致死量顯著降低,黏附侵襲小鼠肺泡上皮細胞(TC-1細胞)的數量也顯著減少[12]。劉莎莎等研究發現,鼠傷寒沙門菌的cyaA基因缺失后菌株毒力顯著下降,黏附侵襲宮頸癌細胞(HeLa細胞)的菌量也顯著減少[13]。此外,有研究發現敲除cyaA基因的鼠傷寒沙門菌仍具有較好的免疫原性[14-15]。但是在大腸桿菌中cyaA基因編碼的AC蛋白的分子特征以及抗原性還不清楚。因此,本研究對綿羊肺源大腸桿菌XJ10 cyaA基因進行克隆、通過軟件分析編碼蛋白分子特征和理化性質、蛋白抗原表位和系統進化,以期為進一步探討大腸桿菌AC蛋白的功能及其作為大腸桿菌疫苗候選抗原奠定理論基礎。
1 材料與方法
1.1 菌株及試劑
本研究于2022年12月在新疆農墾科學院的畜牧獸醫研究所實驗室中進行試驗。試驗使用的大腸桿菌XJ10菌株由筆者所在實驗室的郭強強于2016年由呼吸衰竭死亡的綿羊肺臟中分離。DNA提取試劑盒、DL 4500 DNA Marker、反轉錄試劑盒,購自天根生化科技(北京)有限公司;TRIzol試劑,購自生工生物工程(上海)股份有限公司;2×PCR Mix、qPCR試劑盒、pMD19-T載體,購自寶日醫生物技術(北京)有限公司;DH5α感受態細胞由筆者所在實驗室-80 ℃保存。
1.2 引物設計與合成
參考文獻并根據GenBank中的大腸桿菌K-12 substr. MG1655的cyaA基因(登錄號:947755)序列為模板,采用Primer 5.0軟件設計特異性擴增引物[12]。引物信息見表1。
1.3 綿羊肺源大腸桿菌cyaA基因的克隆測序
純化單菌落在BHI營養肉湯中經37 ℃恒溫箱搖床振蕩培養12 h,收集菌液離心后用沉淀提取細菌DNA。以提取的DNA為模板,利用cyaA引物通過PCR擴增cyaA基因,擴增產物經瓊脂糖凝膠驗證為陽性條帶后,通過試劑盒膠回收,回收產物連接pMD19-T載體后轉化入DH5α感受態細胞內,通過菌液PCR進一步篩選,將陽性菌株送至通用生物(安徽)股份有限公司測序,測序結果輸入GenBank中進行比對。
1.4 綿羊肺源大腸桿菌在不同生長時間cyaA基因的轉錄水平檢測
吸取200 μL “1.3”節中過夜培養的菌液轉入20 mL BHI液體培養基中振蕩培養,分別于2 h(遲緩期)、5 h(對數期)、10 h(穩定期)、24 h(衰亡期)吸取2 mL菌液,經TRIzol法提取大腸桿菌XJ10 RNA,并反轉錄為cDNA,利用cyaA-in引物通過熒光定量PCR檢測菌株cyaA基因的mRNA轉錄水平。使用16S rRNA基因為內參基因,采用相對比較ΔCT(Qr=2-ΔΔCT)法計算cyaA基因的相對轉錄水平。
1.5 腺苷酸環化酶分子特征及理化性質分析
使用表2中的相關網頁對大腸桿菌AC蛋白的分子特征和理化性質、親疏水性、二三級結構、跨膜結構區、信號肽、保守結構域和開放閱讀框的位置、磷酸化位點、抗原性進行分析。
1.6 AC氨基酸序列系統進化分析
將大腸桿菌XJ10菌株的cyaA基因推導的AC氨基酸序列與GenBank中已知的10多株不同細菌的AC氨基酸序列進行比對。利用Mega 7.0軟件根據NJ(neighbor-joining)法構建系統進化樹(Bootstrap 值為1 000)。
2 結果與分析
2.1 cyaA基因的擴增、克隆及測序結果
由圖1可知,綿羊肺源大腸桿菌XJ10 cyaA基因擴增產物大小約2 547 bp,與預期片段大小相符,測序結果和大腸桿菌K-12 substr. MG1655菌株的cyaA基因相似性為100%。
2.2 綿羊肺源大腸桿菌在不同生長時期cyaA基因的轉錄水平分析
由圖2可知,綿羊肺源大腸桿菌XJ10 cyaA基因的轉錄水平在對數期的表達量最高,其與遲緩期、衰亡期的表達量差異在0.001水平上顯著,與穩定期的表達量差異顯著(P<0.05);其次是穩定期,其與衰亡期的差異極顯著(P<0.01),再其次是遲緩期,在衰亡期的表達量最低。
2.3 腺苷酸環化酶理化性質分析
綿羊肺源大腸桿菌XJ10 cyaA基因全長 2 547 bp,編碼848個氨基酸,利用ProtParam分析大腸桿菌AC蛋白,結果顯示,大腸桿菌XJ10 的AC蛋白分子式為C4 389H6 759N1 193O1 273S30,總原子數為13 644,理論分子質量為97.57 ku,理論等電點5.82,為酸性蛋白,不穩定性指數為45.12,屬于不穩定蛋白。由表3可知,該蛋白由20種氨基酸組成,出現頻率較高的氨基酸殘基有Leu(12.4%)、Ser(7.4%)、Glu(7.1%)、Val(6.7%)和Arg(6.6%),出現頻率較低的氨基酸殘基有Trp(1.9%)、Met(1.8%)和Cys(1.8%),不含Pyl和Sec。總疏水性平均值(GRAVY)是-0.290,屬于親水性蛋白,通過ProtScale在線工具進一步預測發現,大腸桿菌XJ10的AC蛋白親水區域大于疏水區域,為親水性蛋白,與其預測結果一致(圖3)。
2.4 腺苷酸環化酶蛋白結構分析
利用SOPMA預測大腸桿菌XJ10 AC蛋白二級結構,結果(圖4)表明,大腸桿菌XJ10的AC蛋白二級結構由α-螺旋(42.81%)、β-折疊(3.89%)、延伸鏈(14.27%)和無規則卷曲(39.03%)組成。通過SWISS-MODEL預測大腸桿菌XJ10 AC蛋白三級結構,結果(圖5)表明,該蛋白序列與PDB數據庫中多功能毒力效應蛋白相似性最高為11.32%,該蛋白主要由α-螺旋所形成的三維立體結構組成。
2.5 腺苷酸環化酶信號肽、跨膜區及保守結構域分析
TMHMM預測大腸桿菌XJ10 AC蛋白跨膜區,由圖6-A可知,大腸桿菌XJ10 AC蛋白的序列無跨膜區域。通過SignaIP軟件分析大腸桿菌XJ10 AC蛋白信號肽,由圖6-B可知,大腸桿菌XJ10 AC蛋白無信號肽,屬于非分泌蛋白。NCBI分析大腸桿菌XJ10 AC蛋白的保守結構域和開放閱讀框的位置,由圖6-C、圖6-D可知,其保守結構域位于1~848位氨基酸,屬于腺苷酸環化酶超家族,具有14個開放閱讀框。
2.6 腺苷酸環化酶磷酸化位點預測
蛋白質磷酸化是常見的翻譯后修飾,可以很好地調控蛋白質的活性,在DNA損傷修復、細胞凋亡方面發揮重要作用。由圖7可知,NetPhos預測大腸桿菌XJ10 AC蛋白存在81個潛在的磷酸化位點,分別為55個絲氨酸磷酸化位點,20個蘇氨酸磷酸化位點,6個酪氨酸磷酸化位點。
2.7 腺苷酸環化酶抗原性預測分析
利用ABCpred和IEDB對大腸桿菌XJ10 AC蛋白氨基酸序列進行分析,得到B細胞表位序列,取其共有多肽序列,最終預測大腸桿菌XJ10 AC蛋白B細胞優勢表位16個,分別位于第44~51、61~65、248~250、259~267、296~304、355~366、436~439、456~456、476~481、489~490、540~559、589~597、634~640、717~722、766~773、806~806區段(表4)。
2.8 腺苷酸環化酶遺傳進化分析
將大腸桿菌XJ10 cyaA基因序列推導的AC蛋白氨基酸序列與GenBank中已知的19多株不同種屬的腺苷酸環化酶序列進行比對分析,由圖8可知,大腸桿菌XJ10株的腺苷酸環化酶與志賀氏菌腺苷酸環化酶相似性最高,其次與鼠傷寒沙門氏菌、腸炎沙門氏菌、檸檬酸桿菌、肺炎克雷伯菌等相似性較高,在系統進化樹上處在一個分支。
3 討論與結論
AC最早是在大腸桿菌代謝相關的阻遏過程中發現,屬于膜整合蛋白,主要分布在細胞的各類膜上,包括細胞質膜、核膜和內質網膜。AC的氨基和羧基端朝向細胞質,膜胞質面有2個催化結構域和2個膜整合區,是一種轉錄激活蛋白[12,16]。細菌中的cAMP結合CRP后,CRP中的C螺旋和鉸鏈區結構發生變化,從而激活CRP家族的轉錄因子,cAMP-CRP復合體結合靶啟動子上的特異序列,使DNA結構變化彎曲,促使RNA聚合酶激活轉錄。此外,CRP作為一種全局調節因子,與cAMP結合活化后,可將某些質粒和毒力島整合到現有的調控網絡中,調控細菌相關基因的表達,從而增強細菌的致病力。有研究發現,在鼠疫耶爾森氏菌中,CRP直接激活纖溶酶原激活劑的表達,促進跳蚤叮咬后的鼠疫傳播,cAMP-CRP還能調節Ⅲ型分泌系統相關蛋白質的表達分泌,幫助細菌更易進入宿主細胞,造成宿主感染[17-18]。
隨著生物信息學技術與相關在線軟件的應用與發展,使本研究可更加直觀和全面地分析蛋白結構及其特征,簡單快捷地對各類蛋白進行鑒定,從而快速地表達純化蛋白,為研制開放新疫苗奠定基礎。本研究利用生物信息學在線軟件對大腸桿AC蛋白的分子特征和理化性質、親疏水性、二三級結構、跨膜結構區、信號肽、保守結構域和開放閱讀框的位置、磷酸化位點、抗原性進行分析。結果表明,大腸桿菌XJ10的AC是不穩定的親水性蛋白,不易與水分子形成氫鍵;二級結構中無規則卷曲的含量占比39.03%,利于嵌合抗體,具有很好的抗原潛力;無信號肽序列和跨膜區域表明AC蛋白可高效表達;蛋白保守結構域位于1~848位氨基酸,并且在不同種屬細菌內相對保守;存在81個潛在的磷酸化位點,可能參與細胞內信號傳導以及相關蛋白定位。
有研究發現,在我國4家百日咳疫苗生產廠中,有2個廠家產品含有較高含量的AC,并且AC更多地存在于菌體內而不是可溶性表達于培養液上清中[19]。百日咳桿菌的AC保護性免疫原性依賴于CyaC對983位賴氨酸的修飾,通過修飾影響蛋白分子構象,從而暴露出免疫優勢表位[20]。通過在AC的N-末端插入二肽,獲得無或低AC活性的AC,當修飾后的AC與無細胞百日咳疫苗共同免疫小鼠時,可提高無細胞百日咳疫苗的免疫原性,影響輔助性T淋巴細胞的分化,協助宿主清除肺部定殖的百日咳桿菌[21]。本研究利用生物信息學在線軟件ABCpred和IEDB對大腸桿菌XJ10 AC抗原表位進行預測,對兩者預測結果進行分析,共得到16個具有優勢的抗原表位區域,分別位于第44~51、61~65、248~250、259~267、296~304、355~366、436~439、456~456、476~481、489~490、540~559、589~597、634~640、717~722、766~773、806~806區段。以上結果可為大腸桿菌亞單位疫苗的研制提供參考依據。
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