朱萌瑛 沈浩 汪碧麗 何鎣飛 陳瑾 任軍 章浙忠 許健
消化系統(tǒng)惡性腫瘤是常見(jiàn)的惡性腫瘤之一,包括食管癌、胃癌、結(jié)直腸癌、肝癌和胰腺癌[1]。消化系統(tǒng)癌癥占全球癌癥發(fā)病率的26%,占所有癌癥相關(guān)死亡的35%[2]。因此,探尋能夠調(diào)控消化系統(tǒng)惡性腫瘤進(jìn)展和預(yù)后的生物標(biāo)志物是臨床提高治療效果的關(guān)鍵。目前,手術(shù)切除是消化系統(tǒng)惡性腫瘤早期治療的主要方法[3]。低密度脂蛋白受體相關(guān)蛋白1(Low-density lipoprotein receptor-related Protein-1,LRP1)作為膜上的內(nèi)吞受體,在腫瘤侵襲中起重要作用[4],有研究證明,LRP1 高表達(dá)可能促進(jìn)腫瘤細(xì)胞的生長(zhǎng)[5-8]。而表皮生長(zhǎng)因子受體(epidermal growth factor receptor,EGFR)則與多種腫瘤的發(fā)生發(fā)展有關(guān),激活的Akt 則促進(jìn)腫瘤細(xì)胞的增殖和侵襲能力。本研究探討LRP1 敲低對(duì)消化系統(tǒng)惡性腫瘤細(xì)胞增殖、遷移和侵襲的影響。
1.1 生物信息學(xué)分析 從GTEx 數(shù)據(jù)庫(kù)下載正常胃、胰腺和肝臟的RNA-seq 數(shù)據(jù),從TCGA 的Xena 門戶網(wǎng)站下載胃、胰腺和肝臟腫瘤的RNA-seq 數(shù)據(jù)。采用R(3.6.3 版)軟件中g(shù)gplot2(3.3.3 版)、survival(3.2.10版)、survminer(0.4.9 版)和pROC(1.17.0.1 版)軟件包進(jìn)行分析。
1.2 細(xì)胞系和細(xì)胞培養(yǎng) HGC-27 細(xì)胞、HepG2 細(xì)胞、BxPC-3 細(xì)胞、PANC-1 細(xì)胞、CaCO2細(xì)胞、HUVEC 細(xì)胞來(lái)源于中國(guó)科學(xué)院細(xì)胞庫(kù)(上海)。細(xì)胞在添加了10%胎牛血清(FBS,Hyclone,Thermo Fisher Scientific,Inc,UT,USA)的Dulbecco 改良Eagle 培養(yǎng)基(DMEM,Gibco,Grand Island,NY,USA)或RPMI-1640(Gibco,Grand Island,NY,USA)中培養(yǎng)。所有細(xì)胞系在37℃5% CO2培養(yǎng)。
1.3 蛋白免疫印跡分析 采用一抗LRP1(1 ∶10,000,Abcam)、ERK1/2(1 ∶10,000,Abcam)、phospho-ERK1/2(1 ∶10,000,Abcam)、AKT(1 ∶10,000,Abcam)、phospho-AKT(1 ∶10,000,Abcam)、EFGR(1 ∶10,000,Abcam)、MMP2(1 ∶10,000,Abcam)、MMP9(1 ∶10,000,Abcam)、GAPDH(1 ∶10,000,Abcam)、PI3K(1 ∶5,000,Abcam)、P-PI3K(1 ∶10,000,Abcam)進(jìn)行Western blot 檢測(cè)。采用辣根過(guò)氧化物酶(HRP)標(biāo)記的抗小鼠免疫球蛋白G(IgG)或抗兔IgG抗體作為二抗(1:500,Multi Sciences Biotech Co.Ltd),采用化學(xué)發(fā)光(ECL)蛋白印跡法(western blot)底物(Multi Sciences Biotech Co.Ltd)進(jìn)行檢測(cè)。
1.4 細(xì)胞毒性和增殖實(shí)驗(yàn) 采用Alexa Fluor 594(碧云天,Cat.594)試劑盒進(jìn)行EdU-594 染色(碧云天,Cat.No:C0078S)。在熒光顯微鏡(IX71,Olympus Corporation)下觀察結(jié)果,比較LRP1 敲低前后細(xì)胞增殖的變化。
1.5 克隆形成實(shí)驗(yàn) 克隆形成實(shí)驗(yàn)中,選擇LV-LRP1-RNAi 和LV-siNC 感染的細(xì)胞,以每孔1,000 個(gè)細(xì)胞的密度轉(zhuǎn)移至6 孔板。將shNC 和shLRP1 慢病毒接種于6孔板,培養(yǎng)15 d。菌落用戊二醛(6.0% v/v)固定,結(jié)晶紫(0.5% w/v)染色后觀察并拍照。
1.6 Transwell 實(shí)驗(yàn)和劃痕實(shí)驗(yàn) 采用Matrigel 基質(zhì)膠進(jìn)行Transwell 實(shí)驗(yàn),并按照Transwell 試劑盒(Corning,NY,USA)的說(shuō)明書進(jìn)行。將細(xì)胞重懸于含BSA 的無(wú)血清培養(yǎng)基中,Transwell 上室中心加入200 μL(5,000個(gè)細(xì)胞),下室加入含20% FBS 的培養(yǎng)基500 μL,置于37 ℃,5% CO2的細(xì)胞培養(yǎng)箱中12~48 h。將Transwell板培養(yǎng)液棄去,用4%多聚甲醛固定15 min,最后加入1 mL 結(jié)晶紫染色10 min,顯微鏡下觀察結(jié)果。在劃痕實(shí)驗(yàn)中,細(xì)胞在6 孔板中培養(yǎng)至融合(80%),然后用微管尖端劃痕。更換1 次/12 h,含10% FBS 的新鮮無(wú)血清培養(yǎng)基。于0 h、48 h 用顯微鏡連續(xù)監(jiān)測(cè)劃痕愈合面積。
1.7 HE 染色和免疫組織化學(xué)分析 石蠟切片來(lái)自浙江大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬第二醫(yī)院。免疫組化分析按照廠家提供的Histostain-SP 試劑盒方案進(jìn)行(SP-0023,Bioss,北京,中國(guó))。采用以下一抗進(jìn)行免疫組化:抗LRP1 抗體(1 ∶100,Abcam)。采用辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記的山羊抗小鼠二抗作為二抗(1 ∶100 dilution,Multi Sciences Biotech,杭州,中國(guó)),結(jié)果在Olympus BX41 顯微鏡下觀察。
1.8 慢病毒轉(zhuǎn)染敲降LRP1 重組慢病毒LV-LRP1-RNAi(60326-2)和陰性對(duì)照病毒LV-CON077 購(gòu)于吉?jiǎng)P基因(GENE,上海,中國(guó))。慢病毒敲降BxPC-3、HepG2 和HGC-27 細(xì)胞中的LRP1 基因按照吉?jiǎng)P基因公司提供的重組慢病毒載體使用手冊(cè)進(jìn)行。細(xì)胞與慢病毒孵育24 h,經(jīng)嘌呤霉素(ST551-10,Beyotime,中國(guó))篩選后進(jìn)行Western blot 檢測(cè)驗(yàn)證敲降水平。
2.1 LRP1 在消化系統(tǒng)惡性腫瘤的表達(dá)及預(yù)后分析 對(duì)LRP1 進(jìn)行泛癌分析(見(jiàn)圖1A),結(jié)果顯示LRP1在胃腺癌(STAD)和胰腺癌(PAAD)中高表達(dá)(見(jiàn)圖1B)。Cox 回歸分析顯示,在STAD 中LRP1 高表達(dá)提示患者預(yù)后不良,P<0.01(見(jiàn)圖1C)。在預(yù)測(cè)腫瘤結(jié)局方面,LRP1 在PAAD 中具有更高的準(zhǔn)確性(AUC:0.964,95%CI:0.942~0.986)(見(jiàn)圖1D)。

圖1 生物信息學(xué)分析。A.各種癌癥和正常標(biāo)本中LRP1表達(dá)譜的條形圖。B.TCGA和GTEx數(shù)據(jù)庫(kù)中胃、胰腺、肝臟腫瘤組織和正常組織中LRP1的表達(dá)水平。C.LRP1與STAD、PAAD和LIHC預(yù)后的相關(guān)性。D.LRP1在STAD、PAAD和LIHC中的ROC曲線。E.HE染色(×200)的胃癌組織、肝癌組織、胰腺癌組織。F.應(yīng)用LRP1抗體對(duì)胃癌組織、肝癌組織和胰腺癌組織進(jìn)行免疫化學(xué)染色,棕色為L(zhǎng)RP1蛋白
2.2 LRP1 在消化系統(tǒng)惡性腫瘤中高表達(dá) 在組織水平對(duì)LRP1 在腫瘤組織高表達(dá)進(jìn)行初步驗(yàn)證,與正常胃腸道組織相比,LRP1 在胃癌、肝癌、胰腺癌組織中表達(dá)上調(diào)(見(jiàn)圖1E-F)。
2.3 LRP1 在HGC-27、HepG2 和BxPC-3 細(xì)胞中高表達(dá) 選用5 株消化系統(tǒng)惡性腫瘤細(xì)胞系(CaCO2、BxPC-3、Panc-1、HGC-27、HepG2)并以人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞HUVEC 為對(duì)照,通過(guò)Western blot 實(shí)驗(yàn)檢測(cè)LRP1 在不同消化系統(tǒng)惡性腫瘤細(xì)胞中的表達(dá),結(jié)果顯示,與HUVEC 細(xì)胞相比,LRP1 在胃癌HGC-27 細(xì)胞、肝癌HepG2 細(xì)胞和胰腺癌BxPC-3 細(xì)胞中的表達(dá)明顯升高。通過(guò)Image J 和SPSS 19.0 軟件分析,BxPC-3 細(xì)胞與HUVEC 細(xì)胞相比差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),HGC-27 細(xì)胞和HepG2 細(xì)胞與HUVEC 細(xì)胞相比差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.001)(見(jiàn)圖2A-B)。通過(guò)LV-LRP1-RNAi技術(shù)在HGC-27 細(xì)胞、HepG2 細(xì)胞和BxPC-3 細(xì)胞中敲低LRP1,shNC 作為對(duì)照,Western blot 結(jié)果顯示,與shNC 細(xì)胞相比,shLRP1 細(xì)胞中的LRP1 表達(dá)水平降低(見(jiàn)圖2C-D)。

圖2 LRP1在BxPC-3、HepG2和HGC-27細(xì)胞中高表達(dá)。A-B.Western blot檢測(cè)HUVEC、CaCO2、BxPC-3、PANC-1、HGC-27和HepG2細(xì)胞中LRP1蛋白與對(duì)照GAPDH的表達(dá)量,LRP1蛋白相對(duì)表達(dá)量的統(tǒng)計(jì)圖。*P<0.05,**P<0.01,****P<0.0001。C-D.Western blot檢測(cè)慢病毒轉(zhuǎn)染前后HGC-27、HepG2和BxPC-3細(xì)胞中LRP1蛋白的表達(dá)量
2.4 降低LRP1 表達(dá)可抑制消化系統(tǒng)惡性腫瘤細(xì)胞的增殖 通過(guò)克隆形成實(shí)驗(yàn)和Edu 細(xì)胞增殖實(shí)驗(yàn)研究LRP1 敲降后對(duì)消化系統(tǒng)惡性腫瘤BxPC-3 細(xì)胞、HepG2細(xì)胞和HGC-27 細(xì)胞增殖的影響。克隆形成實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,與shNC 組相比,LRP1 敲低有效抑制三株消化系統(tǒng)惡性腫瘤細(xì)胞的生長(zhǎng)和增殖(見(jiàn)圖3A-B)。在Edu-594 細(xì)胞增殖實(shí)驗(yàn)中,三株敲低了LRP1 的腫瘤細(xì)胞增殖明顯抑制(見(jiàn)圖3C)。Western Blot 實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,HGC-27 細(xì)胞、HepG2 細(xì)胞和BxPC-3 細(xì)胞中P-AKT、P-PI3K、EGFR 蛋白表達(dá)受到抑制(見(jiàn)圖3D-E)。

圖3 降低LRP1表達(dá)可抑制消化系統(tǒng)惡性腫瘤細(xì)胞的增殖。A-B.慢病毒轉(zhuǎn)染BxPC-3細(xì)胞、HepG2細(xì)胞和HGC-27細(xì)胞前后克隆形成實(shí)驗(yàn)結(jié)果及統(tǒng)計(jì)圖。C.EdU-594細(xì)胞增殖實(shí)驗(yàn)結(jié)果。圖中熒光顯微鏡的放大倍數(shù)為200倍。D-E.Western blot法檢測(cè)慢病毒轉(zhuǎn)染前后BxPC-3、HepG2和HGC-27細(xì)胞中p-AKT、AKT、P-PI3K、PI3K和EGFR蛋白的表達(dá)及小提琴圖。*P<0.05,**P<0.01,***P<0.001
2.5 降低LRP1 表達(dá)可抑制消化系統(tǒng)惡性腫瘤細(xì)胞的侵襲和遷移 劃痕實(shí)驗(yàn)和Tanswell實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,LRP1敲低后BxPC-3 細(xì)胞、HepG2 細(xì)胞和HGC-27 細(xì)胞的侵襲和遷移能力下降。與shNC 組相比,敲低LRP1 后BxPC-3、HepG2 和HGC-27 細(xì)胞在48 h 后劃痕面積愈合速度明顯減慢(見(jiàn)圖4A-B)。在Transwell 實(shí)驗(yàn)中,shLRP1 組的三株消化系統(tǒng)惡性腫瘤細(xì)胞的侵襲能力表現(xiàn)出顯著降低(見(jiàn)圖4C-D)。Western Blot 結(jié)果顯示,LRP1 敲低后,BxPC-3 細(xì)胞、HepG2 細(xì)胞和HGC-27 細(xì)胞中P-ERK 和MMP-9 蛋白表達(dá)均顯著下調(diào)。BxPC-3 細(xì)胞中ERK 和MMP-2 蛋白表達(dá)明顯下降(見(jiàn)圖4E)。

圖4 降低LRP1表達(dá)可抑制消化系統(tǒng)惡性腫瘤細(xì)胞的侵襲和遷移。A-B.慢病毒轉(zhuǎn)染前后BxPC-3細(xì)胞、HepG2細(xì)胞和HGC-27細(xì)胞劃痕實(shí)驗(yàn)結(jié)果,顯微鏡放大倍數(shù)為100倍。C-D.慢病毒轉(zhuǎn)染前后BxPC-3細(xì)胞、HepG2細(xì)胞和HGC-27細(xì)胞的Transwell結(jié)果,圖中顯微鏡放大倍數(shù)為200倍。Transwell實(shí)驗(yàn)結(jié)果的直方圖。**P<0.01
近年來(lái),消化系統(tǒng)惡性腫瘤的發(fā)病率在全球呈上升趨勢(shì)。消化系統(tǒng)惡性腫瘤的生存率與腫瘤發(fā)展階段密切相關(guān)。在消化系統(tǒng)惡性腫瘤早期診斷并介入治療,患者生存率和預(yù)后顯著提高。然而,目前臨床上對(duì)消化系統(tǒng)惡性腫瘤的診斷存在滯后性,這是由于消化系統(tǒng)惡性腫瘤缺乏早期癥狀導(dǎo)致早期診斷困難。CA199[9]、CA125[10]等是現(xiàn)有的診斷消化系統(tǒng)惡性腫瘤的標(biāo)志物,但這些標(biāo)志物與腫瘤轉(zhuǎn)移、侵襲和預(yù)后的關(guān)系尚不明確。因此,尋找有效的治療靶點(diǎn)和新的生物標(biāo)志物顯得尤為重要。基于生物信息學(xué)方法,消化系統(tǒng)惡性腫瘤中LRP1 高表達(dá)與不良預(yù)后相關(guān)。LRP1 在消化系統(tǒng)惡性腫瘤細(xì)胞株(BxPC-3、HepG2 和HGC-27 細(xì)胞)中高表達(dá),下調(diào)LRP1 的表達(dá)改變消化系統(tǒng)惡性腫瘤細(xì)胞的生物學(xué)特性。EdU-594 細(xì)胞增殖實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,與對(duì)照組相比,敲低LRP1 后胃癌HGC-27 細(xì)胞、肝癌HepG2細(xì)胞和胰腺癌BxPC-3 細(xì)胞的增殖受到抑制。此外,敲低LRP1 后,細(xì)胞群體依賴性增加,抑制細(xì)胞克隆的形成。為進(jìn)一步明確降低LRP1 表達(dá)抑制消化系統(tǒng)惡性腫瘤細(xì)胞生長(zhǎng)的機(jī)制,采用Western blot 檢測(cè)AKT、PI3K和EGFR 蛋白的表達(dá)。LRP1 的低表達(dá)抑制AKT 和PI3K的磷酸化和EGFR 蛋白的表達(dá)。AKT 是主要的生存信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)蛋白,是EGFR 的下游靶點(diǎn)。基質(zhì)金屬蛋白酶(MMP2 和MMP9)被認(rèn)為是與腫瘤侵襲和遷移相關(guān)的蛋白酶[11]。LRP1 介導(dǎo)的MMP 表達(dá)調(diào)控促進(jìn)癌細(xì)胞的遷移和侵襲[12]。LRP1 作為MMP2 和MMP9 的內(nèi)吞受體,從而調(diào)節(jié)腫瘤的侵襲和遷移。有研究發(fā)現(xiàn),LRP1 能誘導(dǎo)MMP2 和MMP9 表達(dá),從而促進(jìn)人膠質(zhì)母細(xì)胞瘤U87細(xì)胞遷移和侵襲。敲降LRP1 細(xì)胞中MMP2 和MMP9 的表達(dá)被選擇性降低[13]。本研究中,敲降LRP1 后胃癌HGC-27 細(xì)胞、肝癌HepG2 細(xì)胞和胰腺癌BxPC-3 細(xì)胞中ERK、MMP2 和MMP9 的表達(dá)減少。Transwell 和劃痕實(shí)驗(yàn)顯示,與對(duì)照組相比,HGC-27 細(xì)胞、HepG2 細(xì)胞和BxPC-3 細(xì)胞的侵襲和遷移能力均降低。ERK 信號(hào)通路可向細(xì)胞核傳遞細(xì)胞外刺激,調(diào)控腫瘤的發(fā)生、增殖、凋亡和耐藥[14-15]。
綜上所述,LRP1 在BxPC-3、HGC-27、HepG2 細(xì)胞中高表達(dá),LRP1 高表達(dá)與消化系統(tǒng)惡性腫瘤的不良預(yù)后相關(guān),并促進(jìn)消化系統(tǒng)惡性腫瘤細(xì)胞的增殖。敲低LRP1 表達(dá)可能干擾腫瘤細(xì)胞脂質(zhì)代謝過(guò)程,導(dǎo)致EGFR、p-AKT 和p-ERK 蛋白降低,抑制膜分子MMP2和MMP9 蛋白表達(dá),從而抑制消化系統(tǒng)惡性腫瘤的轉(zhuǎn)移和侵襲。降低LRP1 表達(dá)可抑制消化系統(tǒng)惡性腫瘤細(xì)胞的增殖、侵襲和遷移,提示LRP1 可能成為治療消化系統(tǒng)惡性腫瘤的新靶點(diǎn)。