李 暢,王 浩,賀千羽,郭向宇,姜彤偉*,郭 焱*
槲皮素通過誘導鐵死亡抑制A549細胞增殖的作用及機制研究
李 暢1,王 浩2,賀千羽1,郭向宇1,姜彤偉1*,郭 焱1*
1. 長春中醫藥大學臨床醫學院,吉林 長春 130117 2. 集安市醫院,吉林 集安 134200
基于鐵死亡信號通路探究槲皮素對人非小細胞肺癌A549細胞增殖的影響及其作用機制。CCK-8法篩選槲皮素作用于A549細胞的實驗濃度;平板克隆法檢測槲皮素對A549細胞集落形成能力的影響;利用試劑盒檢測槲皮素對A549細胞內谷胱甘肽(glutathione,GSH)水平的影響;采用Western blotting檢測槲皮素對A549細胞鐵死亡相關蛋白及線粒體凋亡蛋白表達的影響;采用流式細胞儀檢測槲皮素對A549細胞內線粒體活性氧(mitochondrial reactive oxygen species,mtROS)、脂質過氧化物水平及細胞凋亡的影響。聯合鐵死亡抑制劑(Ferrostatin-1)或ROS清除劑-乙酰半胱氨酸(-acetylcysteine,NAC)檢測槲皮素對A549細胞內GSH水平及鐵死亡相關蛋白表達的影響。與對照組比較,槲皮素顯著抑制A549細胞存活率,且呈時間和劑量相關性(<0.01);槲皮素呈劑量相關性地抑制A549細胞集落形成(<0.01),顯著降低A549細胞內GSH水平(<0.01),上調細胞內mtROS及脂質過氧化物水平(<0.05、0.01),誘導細胞凋亡(<0.01);顯著促進鐵死亡相關蛋白p53表達(<0.05、0.01),并抑制谷胱甘肽過氧化物酶4(recombinant glutathione peroxidase 4,GPX4)及胱氨酸/谷氨酸逆向轉運蛋白溶質載體家族7成員11(solute carrier family 7 member 11,SLC7A11)蛋白表達(<0.01);顯著促進線粒體凋亡相關蛋白半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶-3(cystein-asparate protease-3,Caspase-3)、Caspase-9、細胞色素C(cytochrome C,Cyt C)和B淋巴細胞瘤-2(B cell lymphoma-2,Bcl-2)相關X蛋白(Bcl-2 associated X protein,Bax)蛋白表達(<0.05、0.01),并抑制抗凋亡因子Bcl-2蛋白表達(<0.01)。與槲皮素組比較,槲皮素+NAC組與槲皮素+Ferrostatin-1組均不同程度恢復槲皮素引起的細胞存活率下降(<0.05、0.001),Ferrostatin-1可顯著上調GPX4及SLC7A11蛋白表達水平(<0.05),并回調GSH水平(<0.05)。槲皮素能夠抑制A549細胞增殖并誘導鐵死亡,進而導致細胞凋亡,具有誘導A549細胞鐵死亡的生物學效應。
非小細胞肺癌;槲皮素;鐵死亡;細胞增殖;線粒體活性氧;脂質過氧化物
肺癌是常見的惡性腫瘤,其發病率和死亡率均居腫瘤首位,5年生存率不到20%[1]。其中非小細胞肺癌(non-small cell lung cancer,NSCLC)占肺癌的85%[2]。現有的治療方法主要是外科手術以及放療、化療治療,但放化療具有不良反應多、耐受性等問題[3]。中藥因具有毒性較小、不易產生耐受性等優勢逐步成為研究重點,中藥誘導腫瘤細胞凋亡、抑制增殖是當前尋找有效癌癥治療的一個新的研究領域。
槲皮素是植物中廣泛存在的天然黃酮類化合物,是貫葉連翹L.的主要有效成分[4],具有止咳、平喘、抗病毒、抗氧化等藥理活性[5]。研究表明,槲皮素對多種腫瘤細胞系具有細胞毒活性[6],在內科疾病、骨科疾病、神經系統疾病中具有一定治療作用[7],同時在肺癌中也有良好的治療作用。現代藥理學研究證實槲皮素及其衍生物能夠通過調節絲裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated protein kinases,MAPK)/磷酸腺苷活化蛋白激酶(AMP-dependent/activated protein kinase,AMPK)信號通路抑制細胞增殖,促進人肺癌A549細胞凋亡[8]。表明槲皮素是一種潛在的抗腫瘤藥物,對腫瘤細胞的增殖具有抑制作用,但槲皮素對NSCLC的干預效果仍需進一步的研究。
2012年,Dixon等[9]首次報道了鐵死亡這一新型細胞死亡方式,其特點是細胞內脂質活性氧(reactive oxygen species,ROS)增加超過細胞內抗氧化系統的代償,進而誘導細胞發生死亡。鐵死亡在形態、生化、遺傳和功能上明顯不同于細胞壞死、凋亡和自噬,其與腫瘤的發生、發展、治療和耐藥等密切相關[10]。鐵是人體內重要的微量元素,過量的鐵會催化芬頓反應產生ROS,從而促進脂質過氧化導致鐵死亡,同時鐵代謝生物學過程中鐵可從各個環節調控鐵死亡[11]。研究報道,鐵代謝失調與肺癌的發生發展密切相關,NSCLC可能通過鐵代謝途徑發生鐵死亡[12]。同時在腎癌、結直腸癌及乳腺癌等腫瘤研究中已證實調控鐵死亡可抑制腫瘤細胞的增殖[13]。此外,槲皮素具有促進腫瘤細胞鐵蛋白積累并誘導腫瘤細胞鐵代謝失常的作用,最終引起機體鐵穩態失衡[14]。因此,本研究基于鐵死亡通路,以A549細胞為研究對象,探究槲皮素對A549細胞增殖以及鐵死亡的影響,進而探討槲皮素通過誘導A549細胞發生鐵死亡生物學效應發揮對腫瘤細胞的殺傷作用,以期為其臨床治療NSCLC提供研究基礎。
A549細胞購自中國科學院上海細胞庫。
槲皮素(質量分數≥98%,批號C28J11Y116820)購自上海源葉生物科技有限公司;胎牛血清(批號2148389)購自以色列BI公司;DMEM培養基(批號AG29719232)、胰蛋白酶(批號2403077)購自美國Gibco公司;PBS緩沖液(批號I30FD0151)購自上海生工公司;二甲基亞砜(dimethyl sulfoxide,DMSO,批號BCCD8942)、-乙酰半胱氨酸(-acetylcysteine,NAC,批號WXBC5687V)購自美國Sigma-Aldrich公司;BCA蛋白定量試劑盒(批號092221220118)、CCK-8細胞活力試劑盒(批號031821210930)、FITC偶聯Annexin-V凋亡試劑盒(批號092120210513)購自上海碧云天公司;MitoSoxTM Red線粒體活性氧(mitochondrial reactive oxygen species,mtROS)檢測探針(批號2286876)購自美國Thermo Fisher Scientific公司;谷胱甘肽(glutathione,GSH)測定試劑盒(批號20200616)購自南京建成生物工程研究所;ECL超敏化學發光液(批號01621098)購自上海雅酶生物醫藥科技有限公司;谷胱甘肽過氧化物酶4(recombinant glutathione peroxidase 4,GPX4)抗體(批號334286)、胱氨酸/谷氨酸逆向轉運蛋白溶質載體家族7成員11(solute carrier family 7 member 11,SLC7A11)抗體(批號334063)購自上海Abmart生物醫藥公司;β-actin抗體(批號ab8227)、p53抗體(批號GR146370-9)、細胞色素C(cytochrome C,Cyt C)抗體(批號GR247561-2)、B淋巴細胞瘤-2(B cell lymphoma-2,Bcl-2)抗體(批號GR196071-15)、Bcl-2相關X蛋白(Bcl-2 associated X protein,Bax)抗體(批號GR151406-19)購自英國Abcam公司;半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶-3(cystein-asparate protease-3,Caspase-3)抗體(批號00101520)、Caspase-9抗體(批號00097424)購自美國Proteintech生物公司;HRP標記的山羊抗小鼠IgG抗體(批號214800915)、HRP標記的山羊抗兔IgG抗體(批號219761108)購自北京中衫金橋生物技術公司;Liperfluo細胞脂質過氧化物檢測探針(批號TM607)購自日本同仁化學公司;鐵死亡特異性抑制劑(Ferrostatin-1,批號148475)購自上海陶素藥業有限公司。
FORMA3111型CO2恒溫培養箱(美國Thermo Fisher Scientific公司);BD Accuri C6TM流式細胞儀(美國BD公司);Infinite M200 Pro型多功能酶標儀(瑞士Tecan公司);1645050型蛋白質電泳儀、Mini-PROTEAN?Tetra Cell Systems電泳槽、Trans-Blot?SD System半干轉儀(美國Bio-Rad公司);Milli-Q Advantage A10型超純水系統(美國Millipore公司)。
精密稱取槲皮素10 mg溶于3.3 mL DMSO中,配成濃度為10 mmol/L的槲皮素母液,經0.22 μm微孔濾膜濾過,于4 ℃避光保存,使用時用培養基稀釋。
A549細胞用含10%胎牛血清、100 U/mL青霉素、100 U/mL鏈霉素的DMEM培養基,于37 ℃、5% CO2的培養箱中培養。
取對數生長期的A549細胞,胰蛋白酶消化后以5×103/孔接種到96孔板中。待細胞貼壁后,棄去培養基,分別加入含槲皮素終濃度為0、50、100、150、200、250、300 μmol/L的培養基,于培養箱中培養24、48、72 h,然后每孔加入10 μL CCK-8溶液,于培養箱中繼續孵育30 min,采用酶標儀測定450 nm處各孔吸光度()值,以培養基為空白孔調零,計算細胞存活率,并計算槲皮素對A549細胞的半數抑制濃度(half inhibitory concentration,IC50),根據IC50值設置后續實驗的給藥濃度,設置低、中、高3個劑量。
細胞存活率=(給藥-空白)/(對照-空白)
取對數生長期的A549細胞,以2×103個/孔接種于6孔板中,培養24 h。設置對照組(不加藥物)和槲皮素低、中、高劑量(100、150、200 μmol/L)組,每組設置3個復孔,培養14 d,直至形成肉眼可見的細胞克隆。棄去細胞培養液,PBS清洗2次,結晶紫染色10 min,棄掉染液,PBS清洗2次,拍照。加入DMSO溶解結晶紫,采用酶標儀測定590 nm處各孔值。
取對數生長期的A549細胞,以2×105個/孔接種于6孔板中,于37 ℃、5% CO2培養箱中培養過夜。設置對照組(不加藥物)和槲皮素低、中、高劑量(100、150、200 μmol/L)組,加入含相應藥物的培養基處理24 h,收集細胞,按試劑盒說明書測定GSH水平。
按“2.5”項下方法進行分組和給藥,收集細胞,加入RIPA裂解液提取蛋白,采用BCA蛋白定量試劑盒測定上清液中的蛋白質量濃度。蛋白樣品經十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳,轉至PVDF膜,加入5%脫脂牛奶,室溫封閉3 h,加入相應一抗孵育過夜;TBST充分洗膜后,加入二抗,室溫孵育40 min,TBST充分洗膜,加入顯影液曝光,采用Image J軟件分析條帶灰度值。
按“2.5”項下方法進行分組和給藥,收集細胞,PBS洗滌3次,加入1 mL MitoSox(2 μmol/L),37 ℃避光孵育20 min,PBS洗滌3次,采用流式細胞儀進行分析。
按“2.5”項下方法進行分組和給藥,收集細胞,PBS洗滌1次,用Liperfluo熒光探針染液(10 μmol/L)重懸細胞沉淀,37 ℃避光孵育30 min,PBS洗滌3次,用PBS將細胞重懸后,采用流式細胞儀進行分析。
按“2.5”項下方法進行分組和給藥,收集細胞,1000 r/min離心3 min,PBS洗滌3次,加入500 μL Binding Buffer重懸細胞,加入5 μL Annexin V/FITC混勻,再加入碘化丙啶(PI)染液,37 ℃避光孵育15 min,采用流式細胞儀檢測細胞凋亡率。
取對數生長期的A549細胞,胰蛋白酶消化后以5×103/孔接種到96孔板中。設置對照組(不含藥物)、槲皮素(200 μmol/L)組、Ferrostatin-1(1 μmol/L)組、槲皮素+Ferrostatin-1組、NAC(5 mmol/L)組和槲皮素+NAC組。待細胞貼壁后,對照組僅加入DMEM培養基,各給藥組分別加入含相應藥物的等體積培養基,每組設置3個復孔,于培養箱中培養24 h,按“2.3”項下方法測定細胞存活率。
取對數生長期的A549細胞,以2×105個/孔接種于6孔板中,于37 ℃、5% CO2培養箱中培養過夜。設置對照組(不含藥物)、槲皮素(200 μmol/L)組、Ferrostatin-1(1 μmol/L)組和槲皮素+Ferrostatin-1組,待細胞貼壁后,棄去培養基,分別加入含相應藥物的培養基,于培養箱中培養24 h。收集細胞,按“2.6”項下方法測定鐵死亡相關蛋白表達,按試劑盒說明書測定GSH水平。

為檢測槲皮素對A549細胞活力的影響并確定藥物作用濃度,采用不同濃度槲皮素分別處理細胞24、48、72 h,其IC50分別為160、77.47、63.58 μmol/L。如圖1所示,與對照組比較,槲皮素(100、150、200 μmol/L)組在24、48、72 h時的細胞存活率均明顯降低(<0.01),且呈時間和劑量相關性。從48 h開始,與對照組比較,給藥組細胞的增殖活力受到明顯抑制,由于作用48、72 h細胞死亡較多,因此選擇藥物作用24 h作為后續實驗的藥物最佳作用時間。參考以上結果,確定24 h為槲皮素的作用時間,100、150、200 μmol/L為槲皮素的作用劑量。
如圖2所示,與對照組比較,隨著槲皮素組濃度升高,細胞克隆形成數均顯著降低(<0.01),且呈劑量相關性,表明槲皮素能夠抑制A549細胞集落形成能力,即抑制A549細胞增殖。

與對照組比較:*P<0.05 **P<0.01 ***P<0.001,下圖同

圖2 槲皮素對A549細胞克隆形成能力的影響(, n = 3)
鐵死亡的發生伴隨著GSH水平下降。如圖3所示,與對照組比較,各劑量的槲皮素組細胞內GSH水平均顯著降低(<0.01),且呈劑量相關性。
如圖4所示,與對照組比較,各劑量的槲皮素組細胞內p53蛋白表達水平顯著升高(<0.05、0.01),GPX4、SLC7A11蛋白表達水平均明顯下降(<0.01),且呈劑量相關性。p53、SLC7A11及GPX4為鐵死亡相關蛋白,表明槲皮素可調控鐵死亡通路相關蛋白表達從而激活鐵死亡。

圖3 槲皮素對A549細胞內GSH水平的影響(, n = 3)

圖4 槲皮素對A549細胞鐵死亡相關蛋白表達的影響(, n = 3)
如圖5所示,與對照組比較,各劑量的槲皮素組細胞內mtROS熒光強度顯著增強(<0.01),且呈劑量相關性,表明槲皮素能夠激活細胞內mtROS的產生。
如圖6所示,與對照組比較,150、200 μmol/L槲皮素組細胞內Liperfluo脂質過氧化物熒光強度顯著增強(<0.05、0.01),且呈劑量相關性,表明槲皮素能夠誘導細胞發生脂質過氧化反應。

圖5 槲皮素對A549細胞內mtROS水平的影響(, n = 3)

圖6 槲皮素對A549細胞內脂質過氧化物水平的影響(, n = 3)
分別聯合Ferrostatin-1及NAC處理細胞,觀察200 μmol/L槲皮素處理下各抑制劑對槲皮素引起的細胞活力下降恢復效果。如圖7所示,不同小分子抑制劑對槲皮素所致的細胞活力下降均有恢復作用(<0.05、0.001),進一步說明槲皮素誘導A549細胞的死亡方式為鐵死亡。
如圖8-A所示,與槲皮素組比較,Ferrostatin-1顯著上調槲皮素誘導的SLC7A11與GPX4蛋白表達水平降低(<0.05)。如圖8-B所示,與槲皮素組比較,Ferrostatin-1顯著回調槲皮素誘導的細胞內GSH水平降低(<0.05)。

與槲皮素組比較:#P<0.05 ###P<0.001,圖8同

圖8 Ferrostatin-1與槲皮素聯合處理對A549細胞鐵死亡相關蛋白表達(A) 及GSH水平(B) 的影響(, n = 3)
如圖9所示,與對照組比較,槲皮素組細胞凋亡率明顯升高(<0.01),且呈劑量相關性。如圖10所示,與對照組比較,槲皮素組Caspase-9、Caspase-3、Bax和Cyt C蛋白表達水平均顯著升高(<0.05、0.01),Bcl-2蛋白表達水平顯著降低(<0.01),表明槲皮素可誘導A549細胞凋亡。

圖9 槲皮素對A549細胞凋亡的影響(, n = 3)

圖10 槲皮素對A549細胞線粒體凋亡蛋白表達的影響(, n = 3)
近30年來,肺癌是我國最常見且發生率增長最快的惡性腫瘤。癌細胞侵襲轉移能力很強,這是制約肺癌手術后生存率提高的主要原因[15]。本研究評估了槲皮素對A549細胞鐵死亡的作用,并探討了鐵死亡被誘導后槲皮素對A549細胞增殖的影響。
近年研究發現,槲皮素具有廣譜抗腫瘤作用,其抗腫瘤機制主要集中在誘導自噬、阻滯細胞周期、誘導細胞凋亡等方面,并對乳腺癌、結腸癌有較好的抑制作用[16-18]。本研究結果顯示,經槲皮素處理后,A549細胞存活率顯著降低,且呈劑量相關性,同時細胞克隆形成能力下降亦呈劑量相關性,以上結果表明槲皮素可抑制A549細胞增殖。
鐵死亡發生時主要表現為線粒體縮小、膜致密增厚、SLC7A11與GPX4蛋白活性降低、GSH含量消耗和mtROS過量積累造成細胞膜上脂質過氧化物升高[19]。本研究發現,經槲皮素處理后,A549細胞中GSH水平降低,mtROS與脂質過氧化物水平升高,且呈劑量相關性,提示槲皮素可誘導A549細胞發生鐵死亡。
p53蛋白在調控細胞鐵死亡方面發揮著重要的作用[20],p53蛋白可通過抑制SLC7A11蛋白表達,從而抑制GSH活性,降低GPX4蛋白的表達并促進鐵死亡[21],GPX4失活導致致命性的代謝失衡是細胞內鐵死亡的執行者[22]。研究發現,槲皮素可誘導p53依賴性癌細胞鐵死亡,并與肺癌的發生及發展密切相關[23]。本研究發現,經槲皮素處理后,A549細胞中p53蛋白表達水平升高,SLC7A11以及GPX4蛋白表達水平降低,且呈劑量相關性,提示槲皮素通過抑制p53/SLC7A11/GPX4通路,誘導A549細胞鐵死亡。為進一步探討鐵死亡通路是否影響槲皮素對A549細胞的抑制作用,本研究首先對A549細胞進行槲皮素預處理,然后聯合鐵死亡特異性抑制劑Ferrostatin-1和ROS清除劑NAC處理細胞。Ferrostatin-1作為一種親脂性自由基捕獲抗氧化劑,可以預防鐵死亡。研究報道,在肝癌細胞中,Ferrostatin-1與NAC可阻止二氫青蒿素誘導的肝癌細胞死亡[24]。結果顯示,與單獨使用槲皮素組相比,槲皮素+Ferrostatin-1組、槲皮素+NAC組細胞活力均有恢復,提示鐵死亡可能影響槲皮素抑制A549細胞增殖。進一步探討鐵死亡特異性抑制劑Ferrostatin-1對槲皮素誘導的A549細胞內GSH水平、SLC7A11及GPX4蛋白表達恢復的影響。結果顯示,Ferrostatin-1可恢復槲皮素導致的GSH水平下降以及SLC7A11、GPX4蛋白表達下調。
另有研究表明,槲皮素可抑制A549細胞增殖并誘導其凋亡[25]。結果顯示,槲皮素可誘導A549細胞凋亡。線粒體形態與鐵死亡進展存在重要的聯系,Cyt C表達于線粒體內膜,可作為線粒體損傷的標志物。當線粒體發生損傷時,Cyt C釋放至胞質觸發Caspase級聯反應,最終導致細胞凋亡[26]。本研究發現經槲皮素處理后,Cyt C、Caspase-3、Caspase-9及Bax蛋白表達均顯著升高,Bcl-2蛋白表達顯著降低。提示槲皮素可顯著誘導A549細胞凋亡并調節線粒體凋亡蛋白表達,進一步說明槲皮素激活肺癌細胞鐵死亡過程中有線粒體凋亡途徑的參與。
綜上,本研究發現,槲皮素對A549細胞具有增殖抑制作用,可能不僅局限于誘導細胞凋亡,鐵死亡在槲皮素抗肺癌作用機制中也發揮著重要作用。但鐵死亡與細胞凋亡在共同抑制肺癌細胞活性中是否存在相互作用及聯系仍有待進一步研究。
利益沖突 所有作者均聲明不存在利益沖突
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Effect and mechanism of quercetin on inhibiting proliferation of A549 cells via induction of ferroptosis
LI Chang1, WANG Hao2, HE Qian-yu1, GUO Xiang-yu1, JIANG Tong-wei1, GUO Yan1
1. School of Clinical Medicine, Changchun University of Chinese Medicine, Changchun 130117, China 2. Ji’an Hospital, Ji’an 134200, China
To explore the effect and mechanism of quercetin on proliferation of human non-small cell lung cancer A549 cells based on ferroptosis signaling pathway.CCK-8 method was used to screen the experimental concentration of quercetin on A549 cells; The effect of quercetin on colony forming ability of A549 cells was detected by plate cloning method; The effect of quercetin on glutathione (GSH) level in A549 cells was detected by kit; Western blotting was used to detect the effect of quercetin on the expressions of ferroptosis related protein and mitochondrial apoptosis protein in A549 cells; The effects of quercetin on mitochondrial reactive oxygen species (mtROS), lipid peroxide level and apoptosis in A549 cells were detected by flow cytometry. Combined with ferroptosis inhibitor (Ferrostatin-1) or ROS scavenger-acetylcysteine (NAC), the effects of quercetin on GSH level and expressions of ferroptosis related proteins in A549 cells were detected.Compared with control group, quercetin significantly inhibited the survival rate of A549 cells, with a time-dose correlation (< 0.01). Quercetin inhibited the colony formation of A549 cells in a dose-dependent manner (< 0.01), significantly decreased GSH level in A549 cells (< 0.01), up-regulated mtROS and lipid peroxide levels in A549 cells (< 0.05, 0.01), and induced apoptosis (< 0.01); Quercetin significantly promoted the expression of ferroptosis related protein p53 (< 0.05, 0.01), and inhibited the expressions of glutathione peroxidase 4 (GPX4) and soluble carrier family 7 member 11 (SLC7A11) (< 0.01); Quercetin significantly promoted expressions of mitochondrial apoptosis related proteins such as cysteine-aspartate protease-3 (Caspase-3), Caspase-9, cytochrome c (Cyt C) and B cell lymphoma-2 (Bcl-2) related X protein (Bax) (< 0.05, 0.01), and inhibited the protein expression of anti-apoptotic factor Bcl-2 (< 0.01). Compared with quercetin group, quercetin + NAC group and quercetin + Ferrostatin-1 group recovered the decrease of cell survival rate caused by quercetin to varying degrees (< 0.05, 0.001), and ferrostatin-1 could significantly up-regulated GPX4 and SLC7A11 protein expressions (< 0.05), and regulated the level of GSH (< 0.05).Quercetin can inhibit the proliferation of A549 cells and induce ferroptosis, and then lead to cell apoptosis, which has the biological effect of inducing ferroptosis in A549 cells.
non-small cell lung; quercetin; ferroptosis; cell proliferation; mitochondrial reactive oxygen species; lipid peroxides
R285.5
A
0253 - 2670(2022)22 - 7112 - 09
10.7501/j.issn.0253-2670.2022.22.014
2022-08-14
吉林省自然科學基金資助項目(YDZJ202201ZYTS151);國家自然科學基金國際合作項目(3191101705);吉林省科學技術廳(20210204029YY)
李 暢,女,碩士研究生,主要從事中藥藥理學相關研究。E-mail: lichang970330@163.com
姜彤偉,男,博士,教授,主要從事中西醫結合研究。E-mail: tw2008.ok@163.com
郭 焱,女,博士,教授,主要從事中西醫結合研究。E-mail: ccguoyan@163.com
[責任編輯 李亞楠]