鄭瑞兵,張卉卉,應建飛,汪一萍
艱難梭菌(CD)屬于厭氧芽孢桿菌,能以芽孢形式長期存活于土壤或水環境中,經糞-口途徑傳播,是抗生素相關性腹瀉和醫療機構相關性腹瀉重要病原體之一[1]。艱難梭菌感染(CDI)患者常表現為腹瀉、伴或不伴腹痛及發熱等癥狀,輕中度癥狀具有自限性,重度及暴發型感染患者則易引發全身癥狀,威脅患者生命健康[2]。我國CDI 發病呈現逐年上升趨勢,作為我國丙類法定傳染病的重要病原體之一,CD的診斷與檢測技術評估,對疾病的二級預防具有重大意義[3-4]。社區獲得性艱難梭菌感染(CA-CDI)是指在醫院外罹患的CDI[5]。相關研究顯示,社區獲得性腹瀉中CDI 率為14%,培養陽性率為5%~6%[6]。CD 的毒性主要來源于兩大毒素,毒素A(tcd-A)為外毒素,結合腸黏膜刷狀緣以破壞其正常生理結構;毒素B(tcd-B)發揮細胞毒作用,破壞腸上皮細胞的細胞骨架結構從而形成偽膜[7]。本研究選取社區來源非重復腹瀉糞便標本,運用實時熒光定量PCR 法對tcd-B 基因進行擴增檢測,評估實時熒光定量PCR 法直接檢測糞便標本與“金標準”[產毒培養法(TC)+細胞毒性酶免疫分析(EIA)][8]診斷結果的差異,為進一步的CA-CDI 社區干預提供更多依據。現報道如下。
1.1 樣本 選取2016年4-10月寧波市社區醫療機構就診的具有社區暴露史的腹瀉患者,符合:(1)腹瀉發病前6 周無住院經歷;(2)非重復有效腹瀉標本;(3)具有CDI 臨床診斷特征(危險因素+臨床表現)[9];(4)社區暴露腹瀉樣本行CA-CDI檢測,以TC+EIA為“金標準”[10]。排除:(1)具有醫院暴露史;(2)重復腹瀉標本。最終獲得有效腹瀉標本329例,并及時進行厭氧培養。其中男191例,女138例;年齡3 ~81歲,平均(42.1±25.6)歲。
1.2 方法
1.2.1 樣本采集與運輸 囑被檢測者于干燥清潔便盆內自然排便,以無菌采便管/盒挑取糞便中存在黏液、膿液或血液的部分4 ~6 g(液體糞便≥5 ml),4℃保存,24 h 內完成免疫學檢測。
1.2.2 檢測方法
1.2.2.1 實時熒光定量PCR 法(1)儀器與試劑:儀器選取實時熒光定量PCR儀(Cepheid,美國),試劑采用艱難梭菌熒光PCR 檢測試劑盒[(tcd-B)XY-DT-D-1330,xuanya]。(2)方法:拭子蘸取少量待測樣本插入含樣品處理液的小瓶后震蕩混勻,加樣后按照試劑盒說明書操作,將反應體系放入熒光PCR 儀進行擴增,并于退火/延長過程中記錄熒光信號。采用通用循環法,即以95℃10min 進行酶活化;95℃15s 進行變性,循環35 ~40 輪;60℃60s進行退火/延伸。(3)反應結束后,根據熒光信號與Ct 值判斷擴增結果。
1.2.2.2 TC+EIA 鑒定(1)CD 培養:取約0.2 ml 糞便標本與Eugon 肉湯(美國BBL公司)1∶1 混勻,并于80 ℃加熱10 min;接種環絲氨酸-頭孢西丁-果糖瓊脂平板(CCFA)和增菌肉湯,行35 ℃厭氧菌培養。如直接培養陰性可取變成紅色的肉湯轉移CCFA 繼續培養并鑒定;CD在CCFA上呈白色或淡黃色不透明的扁平狀“攤雞蛋樣”菌落,分離CD 菌株入-40 ℃低溫冰箱保存。(2)EIA 鑒定:采用毒素A+B 抗原ELISA 試劑盒(C.difficile toxins A+B ELISA,ELA4448 DRG,96T),檢測tcd-A、tcd-B。
1.3 統計方法 采用SPSS 22.0 統計軟件進行分析。計量資料以均數±標準差表示,計數資料以n(%)表示,待評估檢測手段與“金標準”診斷結果差異性檢驗采用McNemar 檢驗,一致性檢驗采用Kappa 分析。
2.1 329例社區暴露腹瀉標本CA-CDI檢測情況 艱難梭菌熒光PCR 檢測共檢測tcd-B陽性14例,陽性率為4.26%;其中包括1例熒光PCR 檢測CA-CDI(+)但培養(-)標本。排除1例培養(+)但EIA 鑒定陰性標本,TC 法共獲得產毒CD 17 株(5.17%),陽性菌株ELISA法定性測定毒素基因tcd-A 和tcd-B,15株標本為tcd-A(+)、tcd-B(+)樣本;1 株為tcd-A(-)、tcd-B(+),1 株為tcd-A(+)、tcd-B(-)。
2.2 兩種檢測法對CA-CDI 檢測效能比較 艱難梭菌熒光PCR 檢測試劑盒(tcd-B)對CA-CDI 檢測結果與“TC+EIA 鑒定”結果差異無統計學意義(P=0.375,雙側檢驗),一致性檢驗Kappa 值為0.831。艱難梭菌熒光PCR 檢測試劑盒(tcd-B)對CA-CDI 檢測靈敏度為76.47%,特異度為99.68%,見表1~2。

表1 實時熒光定量PCR與產毒培養對CACDI 檢測結果比較 例
2.3 兩種檢測法對tcd-B檢測效能比較艱難梭菌熒光PCR 檢測試劑盒(tcd-B)對tcd-B 檢測結果與“TC+EIA 鑒定”結果差異無統計學意義(P=0.625,雙側檢驗),一致性檢驗Kappa 值為0.860。艱難梭菌熒光PCR 檢測試劑盒(tcd-B)對tcd-B 檢測靈敏度為81.25%,特異度為99.68%,見表2~3。

表2 實時熒光定量PCR 對不同診斷目標的檢測效能參數 %

表3 實時熒光定量PCR 與產毒培養對產毒基因tcd-B 檢測結果比較例
CDI 是腸道菌群失調,進而產毒性CD大量繁殖并產生毒素導致的[11]。以往研究多著眼于醫院CDI 的檢測與治療,關于的CA-CDI 研究相對較少[12-13]。本研究就是著眼于CA-CDI,分析在社區暴露腹瀉患者群體中,病原分子生物學檢測手段的檢測效能。
現有的CDI 檢測技術包括糞便厭氧培養、EIA、谷氨酸脫氫酶(GDH)檢測及熒光定量PCR 檢測等[14]。本研究選取實時熒光定量PCR 為主要待評估檢測手段,以TC+EIA 為“金標準”進行比較,結果顯示,艱難梭菌熒光PCR 檢測試劑盒(tcd-B)檢測CA-CDI 陽性率為4.26%;“金標準”檢測CA-CDI 陽性率為5.17%(17/329),與以往研究中1%~7%的人群攜帶率相符[15]。出現1例實時熒光定量PCR 檢測樣本tcd-B(+)但培養(-)標本,考慮為運輸及保存過程中空氣暴露時間過長引起的假陰性結果。另有1例TC 法對樣本CA-CDI 檢測中培養(+),但進一步EIA 檢測顯示均為陰性,考慮源于TC 無法區分產毒與非產毒CD 的檢測缺陷導致[16]。艱難梭菌熒光PCR 檢測試劑盒(tcd-B)對社區暴露腹瀉樣本CA-CDI診斷靈敏度與特異度分別為76.47%和99.68%;對tcd-B 檢測靈敏度與特異度分別為 81.25%和99.68%;與“金標準”檢測一致性分別達到0.831 和0.860。這說明社區暴露腹瀉樣本CA-CDI 產毒基因tcd-B 的實時熒光定量PCR 檢測效能較高,可代替TC 進行快速的獨立檢測。
總之,實時熒光定量PCR 技術檢測糞便樣本,具有簡單快捷且準確率高等優點,對CA-CDI診斷效能良好,方便在基層醫療單位廣泛應用。