蔣一玲,余洪金,張寧波,陳承
杭州師范大學(xué)附屬蕭山醫(yī)院,浙江 杭州 311201,1.腫瘤內(nèi)科;2.放射治療科
肺癌已成為當(dāng)今世界惡性腫瘤死亡的首要原因,是一種具有較強(qiáng)侵襲和轉(zhuǎn)移能力的惡性腫 瘤[1]。非小細(xì)胞肺癌(non-small cell lung cancer, NSCLC)的發(fā)病率約占肺癌的85%,是一種對(duì)放療中度敏感的惡性腫瘤[2]。放療已逐漸成為NSCLC的有效治療手段之一,但由于NSCLC患者在治療的中晚期出現(xiàn)抗輻射作用,放療的效果并不理想,因此,提高NSCLC患者的放射敏感性是臨床亟待解決的重要問題。大蒜素是一種從大蒜鱗莖中提取的含硫化合物的復(fù)合體,其對(duì)腫瘤細(xì)胞有抑制作用[3]。重要的是,大蒜素可顯著抑制肺癌A549細(xì)胞增殖、侵襲和遷移能力[4]。近期也有研究證實(shí),大蒜素能夠增強(qiáng)肺癌細(xì)胞對(duì)5-氟尿嘧啶(5-fluorouracil, 5-FU)的敏感性[5]。然而,大蒜素對(duì)NSCLC細(xì)胞放射敏感性的調(diào)控作用鮮見報(bào)道。本研究擬探討大蒜素對(duì)NSCLC細(xì)胞放射敏感性的調(diào)控作用以及其分子機(jī)制。
1.1 材料
1.1.1 細(xì)胞系:NSCLC細(xì)胞系A(chǔ)549和正常肺上皮細(xì)胞株BEAS-2B購(gòu)自美國(guó)模式培養(yǎng)物集存庫(ATCC)細(xì)胞庫。
1.1.2 試劑與儀器:本研究中所使用的試劑和儀器及其來源見表1。

表1 試劑和儀器及來源
1.2 方法
1.2.1 細(xì)胞培養(yǎng):將A549細(xì)胞于含有10%胎牛血清、100 μg/mL鏈霉素和100 U/mL青霉素的F-12K培養(yǎng)基中培養(yǎng),培養(yǎng)條件均為37 ℃,5% CO2。隨后取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的A549細(xì)胞進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。
1.2.2 細(xì)胞轉(zhuǎn)染:將處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的A549細(xì)胞接種于6孔板中,將miR-486-5p inhibitor(I)和陰性對(duì)照物(inhibitor control, IC)采用 LipofectamineTM3000試劑按照產(chǎn)品說明書進(jìn)行轉(zhuǎn)染,轉(zhuǎn)染24 h后用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。
1.2.3 MTT檢測(cè)細(xì)胞增殖活力:將處理對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的A549細(xì)胞經(jīng)胰酶消化后,制備單細(xì)胞懸液。將A549細(xì)胞(5×104個(gè)/孔)接種在96孔板中于37 ℃,5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h。更換培養(yǎng)基,加入細(xì)胞培養(yǎng)液配制濃度為0、10、20、40、60 μg/mL大蒜素進(jìn)行干預(yù)72 h,每孔200 μL。培養(yǎng)結(jié)束后,向每孔加入5 mg/mL的MTT溶液20 μL,繼續(xù)孵育2 h。棄去上清液,加入200 μL的DMSO,混勻后采用酶標(biāo)儀測(cè)量490 nm處的吸光度值(OD)。并計(jì)算細(xì)胞增殖活 力。細(xì)胞增殖活力(%)=(實(shí)驗(yàn)組OD值-空白對(duì)照組OD值)/(陰性對(duì)照組OD值-空白對(duì)照組OD值)×100%。
1.2.4 Transwell實(shí)驗(yàn)檢測(cè)細(xì)胞侵襲能力:取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的A549細(xì)胞,消化后加入無血清的培養(yǎng)基將細(xì)胞配置成5×104個(gè)/μL。向每孔加入50 μL無血清 Allicin藥物(40 μg/mL)和50 μL經(jīng)轉(zhuǎn)染(miR-486-5p inhibitor)或X射線(4 Gy)處理的細(xì)胞懸液。然后,將Transwell小室置于6孔板中,Transwell小室上室需采用Matrigel(培養(yǎng)基:Matrigel=3∶1)膠包被,下室加入100 μL含血清的培養(yǎng)基,置于37 ℃,5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)48 h。培養(yǎng)結(jié)束后,棄去下室培養(yǎng)基,采用1%結(jié)晶紫染色20 min,并于光學(xué)顯微鏡下隨機(jī)選擇5個(gè)視野計(jì)算侵襲細(xì)胞數(shù),實(shí)驗(yàn)重復(fù) 3次。
1.2.5 克隆形成實(shí)驗(yàn)分析細(xì)胞存活分?jǐn)?shù):取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的A549細(xì)胞,胰酶消化后,將細(xì)胞密度為500個(gè)/mL加入6孔板中,置于37 ℃,5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h。培養(yǎng)結(jié)束后,向每孔40 μg/mL大蒜素作用24 h后再與0、2、4、6、8 Gy的X射線輻照處 理,并繼續(xù)培養(yǎng)2周。處理結(jié)束后棄去舊培養(yǎng)基,向每孔加入1 mL甲醇固定15 min后棄去甲醇,再加入2 mL結(jié)晶紫避光固定30 min,結(jié)晶紫回收后PBS清洗孔板2次后晾干拍照。細(xì)胞存活分?jǐn)?shù)(%)=某劑量照射實(shí)驗(yàn)組細(xì)胞克隆數(shù)/(實(shí)驗(yàn)組細(xì)胞數(shù)×空白對(duì)照組克隆數(shù)/空白對(duì)照組種植數(shù))×100%,其中克隆細(xì)胞數(shù)>50個(gè)作為一個(gè)有效克隆。
1.2.6 彗星實(shí)驗(yàn)分析細(xì)胞DNA損傷情況:將A549細(xì)胞制備成單細(xì)胞懸液,然后在37 ℃下與低熔點(diǎn)瓊脂糖(LM瓊脂糖)混合。接下來,將瓊脂糖和細(xì)胞混合物鋪在預(yù)處理過的玻璃片上,再用裂解液在4 ℃處理30 min。隨后,將玻片浸入電泳液中進(jìn)行凝膠電泳,電泳完畢后用熒光染料SYBR Green I對(duì)玻片進(jìn)行染色,在熒光顯微鏡下觀察DNA損傷情況。其中熒光拖尾越長(zhǎng),DNA受損越嚴(yán)重。
1.2.7 qRT-PCR檢測(cè)基因的表達(dá):將收集的細(xì)胞采用TRIzol試劑提取總RNA,并利用紫外分光光度計(jì)檢測(cè)RNA的濃度和純度。然后,通過反轉(zhuǎn)錄酶試劑盒將RNA反轉(zhuǎn)錄為cDNA。采用SYBR Green PCR進(jìn)行qRT-PCR實(shí)驗(yàn)檢測(cè)miR-486-5p、SP5、SMOC1、DOCK3、KDM5B和CELSR3 mRNA的表達(dá)水平。以U6和β-actin作為內(nèi)參。通過2-ΔΔCt方法計(jì)算miR-486-5p、SP5、SMOC1、DOCK3、KDM5B和CELSR3 mRNA的相對(duì)表達(dá)量。其中引物序列見表2。

表2 引物序列
1.2.8 雙熒光素酶報(bào)告基因驗(yàn)證miR-486-5p和 KDM5B的靶向關(guān)系:構(gòu)建KDM5B 3’UTR野生型(WTKDM5B)和突變型(MUT-KDM5B)熒光素酶報(bào)告質(zhì)粒。隨后,將生長(zhǎng)對(duì)數(shù)期的A549細(xì)胞接種于12孔板中,并使用LipofectamineTM3000將miR-486-5p inhibitor和WT-KDM5B或MUT-KDM5B質(zhì)粒轉(zhuǎn)染至A549細(xì)胞中,常規(guī)培養(yǎng)48 h后,加入細(xì)胞裂解液裂解細(xì)胞,并于4 ℃、10 000×g離心10 min,取上清液,嚴(yán)格按照雙熒光素酶報(bào)告基因檢測(cè)試劑盒進(jìn)行熒光素酶活性檢測(cè)。
1.2.9 蛋白質(zhì)印跡法(Western blot)檢測(cè)蛋白表達(dá):將收集的細(xì)胞加入裂解液后進(jìn)行超聲裂解,提取細(xì)胞中總蛋白,并用BCA蛋白檢測(cè)試劑盒評(píng)估蛋白濃度。裂解物通過SDS-PAGE分離,并轉(zhuǎn)移至PVDF膜,加入5%的脫脂牛奶封閉2 h。隨后,將一抗γ-H2AX(1∶1 000)、KDM5B(1∶1 000)、Vimentin(1∶1 000)、Snail(1∶1 000)和β-actin(1∶1 000)于4 ℃孵育過夜,PBS漂洗后,用辣根過氧化物酶標(biāo)記的二抗(1∶5 000)在室溫下孵育1 h。最后,電化學(xué)發(fā)光顯 示,Image J軟件分析目的蛋白的相對(duì)表達(dá)量。
1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理方法 采用SPSS22.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,并采用GraphPad Prism 8對(duì)實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行繪圖。計(jì)量資料以±s表示,兩組間比較采用兩獨(dú)立樣本t檢驗(yàn),多組間比較采用單因素方差分析,兩兩比較采用SNK-q檢驗(yàn)。P<0.05差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 大蒜素抑制A549細(xì)胞增殖和侵襲能力 相較于未處理組(0 μg/mL),A549細(xì)胞在不同濃度的大蒜素處理下增殖活力受到抑制,且20~60 μg/mL的大蒜素可顯著抑制A549細(xì)胞增殖活力(P<0.001,見圖1A)。同時(shí),相較于未處理組,20和40 μg/mL的大蒜素可顯著抑制A549細(xì)胞侵襲能力(P<0.05,見圖1B)。基于此,選擇劑量為40 μg/mL的大蒜素進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

圖1 大蒜素對(duì)A549細(xì)胞增殖和侵襲能力的影響
2.2 大蒜素增加A549細(xì)胞放射敏感性 相較于對(duì)照組,大蒜素(40 μg/mL)可顯著促進(jìn)不同劑量(0、2、4、6、8 Gy)X射線對(duì)A549細(xì)胞存活的抑制作用(見圖2A)。同時(shí),經(jīng)X射線(4 Gy)或大蒜素 (40 μg/mL)處理的A549細(xì)胞侵襲能力明顯低于對(duì)照組(P<0.001,見圖2B),且A549細(xì)胞侵襲能力在X射線+大蒜素組中明顯低于大蒜素組(P<0.001)。此外,彗星實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,大蒜素聯(lián)合X射線可顯著誘導(dǎo)A549細(xì)胞出現(xiàn)彗星尾征,即發(fā)生DNA損傷(見圖2C)。由此可知,大蒜素可增強(qiáng)X射線對(duì)A549細(xì)胞的殺傷作用。

圖2 大蒜素對(duì)X射線處理的A549細(xì)胞增殖、侵襲和DNA損傷的影響
2.3 敲低miR-486-5p逆轉(zhuǎn)了大蒜素對(duì)A549細(xì)胞放射增敏的促進(jìn)作用 以往研究證實(shí),miRNA在惡性腫瘤的發(fā)生發(fā)展進(jìn)程中扮演重要角,且miR-486-5p被證實(shí)在NSCLC中作為抑癌基因[6]。qRT-PCR檢測(cè)結(jié)果顯示,miR-486-5p在A549細(xì)胞中的表達(dá)量顯著低于正常肺上皮細(xì)胞株BEAS-2B(P<0.001),且miR-486-5p在A549細(xì)胞中的表達(dá)量隨大蒜素處理劑量的增加而逐漸增加,見圖3A、圖3B。同時(shí),相較于IC組,向A549細(xì)胞中轉(zhuǎn)染miR-486-5p敲低載體(I)可顯著下調(diào)miR-486-5p的表達(dá)量(P<0.001),見圖3C。Transwell實(shí)驗(yàn)檢測(cè)結(jié)果顯示,相比于X射線+大蒜素組,敲低miR-486-5p可顯著上調(diào)A549細(xì)胞侵襲能力(P<0.001),且敲低miR-486-5p也能逆轉(zhuǎn)X射線 (4 Gy)對(duì)A549細(xì)胞侵襲能力的抑制作用(P<0.001),見圖3D。Western blot檢測(cè)結(jié)果表明,相較于X射線組或X射線+I組,大蒜素可顯著上調(diào)DNA損傷相關(guān)蛋白γ-H2AX的表達(dá)水平(P<0.001),并下調(diào)上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化相關(guān)蛋白(Snail和Vimentin)的表達(dá)水平(P<0.001)。同時(shí),相較于X射線+大蒜素+ IC組,敲低miR-486-5O可下調(diào)γ-H2AX蛋白的表達(dá)量(P<0.001,),上調(diào)Snail和Vimentin蛋白的表達(dá)量(P<0.001),見圖3E。由此可知,大蒜素通過上調(diào)miR-486-5p增強(qiáng)A549細(xì)胞對(duì)X射線的敏感性。

圖3 大蒜素通過miR-486-5p對(duì)A549細(xì)胞放療敏感性的影響
2.4 KDM5B是miR-486-5p的直接靶基因 在線生物學(xué)數(shù)據(jù)庫(TargetScan、Starbase、TCGA和miRDB)預(yù)測(cè)結(jié)果顯示,SP5、SMOC1、DOCK3、KDM5B和CELSR3為miR-486-5p的潛在候選靶基因(見圖4A)。qRT-PCR檢測(cè)結(jié)果顯示,相比于IC組,敲低miR-486-5p可明顯上調(diào)以上候選靶基因(P<0.05),尤其顯著上調(diào)KDM5B的表達(dá)水平(P<0.001),見圖4B。TargetScan預(yù)測(cè)顯示,miR-486-5p與KDM5B的3’UTR存在結(jié)合位點(diǎn)(見圖4C)。雙熒光素酶報(bào)告基因?qū)嶒?yàn)結(jié)果表明,敲低miR-486-5p后KDM5B-WT載體的熒光素酶活性明顯高于IC組(P<0.001),而不影響KDM5B-MUT載體的熒光素酶活性,見圖4D。Western blot檢測(cè)結(jié)果顯示,相較于X射線(4 Gy)組,X射線+大蒜素處理可顯著下調(diào)A549細(xì)胞中KDM5B蛋白的表達(dá)水平(P<0.001),且X射線+大蒜素+I組中KDM5B蛋白的表達(dá)量低于X射線+I組(P<0.001),但敲低miR-486-5p可顯著上調(diào)X射線+大蒜素+IC組中KDM5B蛋白的表達(dá)水平(P<0.001),見圖4E。由此可知,KDM5B是miR-486-5p的靶基因,且大蒜素可通過上調(diào)miR-486-5p靶向下調(diào)KDM5B的表達(dá)。

圖4 KDM5B是miR-486-5p的靶基因
臨床研究表明,放射治療用于癌癥患者的治療易產(chǎn)生不良反應(yīng),且有部分中晚期癌癥患者產(chǎn)生放療耐受,嚴(yán)重降低了放療療效。本研究結(jié)果顯示,大蒜素對(duì)A549細(xì)胞的惡性生物表型(增殖、侵襲)有很好的抑制作用,并且能夠增強(qiáng)X射線對(duì)A549細(xì)胞增殖和侵襲的抑制作用,以及誘導(dǎo)細(xì)胞DNA損傷。這表明,大蒜素在NSCLC放療中可能發(fā)揮潛在的協(xié)同作用。
大蒜素被證實(shí)具有多種生物活性,包括抗炎、降血壓、降血脂和抗腫瘤等[7]。近年來有研究表明,大蒜素在多種實(shí)體惡性腫瘤中發(fā)揮抗癌作用,其可顯著抑制癌細(xì)胞惡性生物學(xué)行為,例如,GUO等[8]研究表明,大蒜素可顯著抑制口腔舌鱗狀細(xì)胞癌細(xì)胞增殖活力并誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡。重要的是,大蒜素可增強(qiáng)腫瘤細(xì)胞對(duì)化療藥物和放療的敏感性,例如,大蒜素聯(lián)合X射線可顯著抑制結(jié)直腸癌腫瘤生長(zhǎng)、癌細(xì)胞增殖及誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡[9]。ZOU等[10]研究證實(shí),大蒜素通過誘導(dǎo)線粒體氧化應(yīng)激增強(qiáng)化療藥物5-FU對(duì)肝細(xì)胞肝癌細(xì)胞增殖的抑制作用。本研究結(jié)果顯示,大蒜素可明顯增強(qiáng)X射線對(duì)A549細(xì)胞增殖和侵襲的抑制作用,以及誘導(dǎo)A549細(xì)胞DNA損傷。以上研究提示,大蒜素可明顯增強(qiáng)A549細(xì)胞對(duì)X射線的敏感性。
近年來有大量研究證實(shí),天然活性物可通過調(diào)控非編碼RNA(長(zhǎng)鏈非編碼RNA、環(huán)狀RNA和微小RNA)在多種惡性腫瘤中起抗癌作用[11]。例如,LV等[12]研究證實(shí),大蒜素通過下調(diào)miR-383-5p對(duì)其靶基因ERBB4表達(dá)的抑制作用,進(jìn)而抑制胃癌細(xì)胞增殖、侵襲和遷移能力。WU等[13]證實(shí),大蒜素通過上調(diào)miR-486-5p增強(qiáng)神經(jīng)膠質(zhì)瘤細(xì)胞對(duì)替莫唑胺的敏感性。本研究也發(fā)現(xiàn),大蒜素通過上調(diào)miR-486-5p抑制A549細(xì)胞增殖和侵襲能力,且敲低miR-486-5p可顯著逆轉(zhuǎn)大蒜素對(duì)A549放射增敏的促進(jìn)作用。重要的是,miR-486-5p作為肺癌發(fā)生發(fā)展的重要診斷標(biāo)志物,在多種惡性腫瘤組織和細(xì)胞系中低表 達(dá)[14]。也有研究證實(shí),過表達(dá)miR-486-5p可通過靶向負(fù)調(diào)控其下游靶基因抑制癌細(xì)胞惡性生物學(xué)行為和腫瘤干細(xì)胞的形成[15]。此外,過表達(dá)miR-486-5p可增強(qiáng)癌細(xì)胞對(duì)放療和化療的敏感性,例如過表達(dá)miR-486-5p可通過抑制細(xì)胞侵襲和遷移能力,進(jìn)而增強(qiáng)NSCLC細(xì)胞對(duì)順鉑的敏感性[16]。然而,目前尚未見研究證實(shí)miR-486-5p在NSCLC放療增敏中的調(diào)控作用。本研究證實(shí),KDM5B作為miR-486-5p的直接靶基因,大蒜素處理可明顯抑制KDM5B的表達(dá),但敲低miR-486-5p則可明顯緩解大蒜素對(duì)KDM5B的抑制作用。這提示,miR-486-5p/KDM5B分子軸可能是大蒜素促進(jìn)NSCLC細(xì)胞對(duì)X射線增敏的有效靶點(diǎn)。
綜上所述,本研究證實(shí)大蒜素通過抑制A549細(xì)胞增殖和侵襲,并誘導(dǎo)細(xì)胞DNA損傷,進(jìn)而實(shí)現(xiàn)放療增敏作用。其機(jī)制可能是通過上調(diào)miR-486-5p對(duì)KDM5B表達(dá)的抑制作用來阻滯癌細(xì)胞惡性生物學(xué)行為而實(shí)現(xiàn)的。本研究為臨床上NSCLC患者放療增敏提供了有效的干預(yù)藥物以及治療新靶點(diǎn)。
溫州醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào)2022年5期