基于H6蛋白禽流感抗體間接ELISA檢測方法建立與應用

王微，張霞，張人俊，胡安東，楊穎，溫貴蘭，文明

摘要：為臨床H6亞型禽流感抗體檢測提供技術支撐，通過克隆得到的H6亞型禽流感病毒H6基因并與原核表達載體pET32α連接，經PCR、酶切和測序鑒定后，轉化大腸桿菌進行誘導表達和Western blotting鑒定，以純化的表達產物為包被抗原，通過反應條件優化，建立檢測禽流感病毒H6抗體的間接ELISA方法并對臨床雞血清樣本檢測評價。結果表明：該方法最佳反應條件是，包被抗原濃度為10 μg/mL，4? ℃過夜;5%脫脂奶粉37? ℃封閉 2 h;血清稀釋度為 1∶20，37? ℃孵育30 min;酶標二抗稀釋度為 1∶5000，37? ℃作用 30 min;顯色時間為 37? ℃10 min。該ELISA方法可特異性檢測 H6亞型禽流感抗體，陽性血清稀釋至 1∶320 仍可檢出，與其他禽病陽性血清均無交叉反應，檢測變異系數均小于10%。以該ELISA方法檢測2017年至2019年收集的1837份家禽臨床血清樣本，H6亞型禽流感抗體陽性率為10.45%。這些結果表明，建立的基于H6蛋白禽流感抗體間接ELISA檢測方法，具有良好的特異性、敏感性、重復性和可靠性，能為H6亞型禽流感血清流行病學調查提供技術手段。

關鍵詞：H6亞型禽流感;H6蛋白;間接ELISA方法;建立;應用

中圖分類號：S852.65文獻標識碼：A

文章編號：1008-0457（2022）01-0021-007國際DOI編碼：10.15958/j.cnki.sdnyswxb.2022.01.003

Establishment and Application of Indirect ELISA Detection Method for Avian Influenza Type H6 Antibody Based on H6 Protein

Wang Wei1，Zhang Xia2，Zhang Renjun2，Hu Andong3，Yang Ying1，4，Wen Guilan1，4，Wen Ming1，4*

（1.College of Animal Science，Guizhou University，Guiyang，Guizhou 550025，China;2.Guizhou Center of Animal Disease Prevention and Control，Guiyang，Guizhou 550008，China;3.Guizhou Vocational College of Agriculture，Qingzhen，Guizhou 551400，China;4.Guizhou Research Center of Engineering Technology for Animal Biological Products，Guiyang，Guizhou 550025，China）

Abstract：To provide technical support for clinical avian influenza subtype H6 antibody detection，the H6 gene of avian influenza virus was cloned and connected the prokaryotic expression vector pET32α.After identification by PCR，double enzyme digestion and sequencing，the positive recombinant plasmid was transformed into E.coli （DE3）for induction expression by IPTG and western blotting identification，with the purified expression product as the coating antigen，through optimization of reaction conditions，an indirect ELISA method for detecting avian influenza virus subtype H6 antibody was established and the clinical chicken serum samples were tested and evaluated.The results were showed as follows：the optimum reaction conditions of indirect ELISA，were 10μg/mL of coated antigen concentration and overnight at 4 ℃，5% skimmed milk powder sealed at 37? ℃ for 2 h，1∶20 of the serum dilution and 30 min of incubation at 37 ℃，1∶5000 of HRPIgG dilution and 30 min of the reaction time at 37 ℃，10 min of the TMB reaction time at 37 ℃.The ELISA method could specifically detect the AI H6 antibody but no cross reaction with other avian pathogen positive serum，and the positive serum was still positive after 1∶320 dilution.The variation coefficient of detection was less than 10%.The antibody positive rate was 10.45% against avian influenza subtype H6，which 1837 of serum samples were collected in poultry from 2017 to 2019.These results indicated that the indirect ELISA method based on H6 protein has good specificity，sensitivity，repeatability and reliability，which could provide technical means for serological investigation of avian influenza subtype H6.

Keywords：avian influenza type H6;H6 protein;indirect ELISA;establishment;application

禽流感是一種人獸共患傳染病，由A型流感病毒引起，主要威脅和危害家禽養殖產業和人類健康安全。A型流感病毒屬正黏病毒科成員，其基因組分節段、單股負鏈RNA。根據病毒囊膜蛋白即血凝素（HA）和神經氨酸酶（NA）抗原性不同，A型流感病毒可分為18個HA亞型和11個NA亞型，其中H5亞型和H7亞型屬于高致病性禽流感病毒[12]。H6亞型雖屬低致病性禽流感病毒，但在禽類中普遍存在，能跨越種間屏障進行傳播，且容易與其他亞型禽流感病毒發生基因重組，形成新的高致病性禽流感病毒亞型如H5N1亞型、H5N6亞型禽流感病毒等，對家禽養殖產業和人類健康安全構成巨大的威脅[34]。目前檢測禽流感抗體主要采用血凝與血凝抑制試驗方法，也有H5亞型和H7亞型禽流感抗體ELISA檢測方法，但尚未見到有關H6亞型禽流感抗體ELISA檢測方法的研究報道。為此，本試驗擬通過克隆H6亞型禽流感病毒H6基因并進行原核表達，以原核表達產物為包被抗原，建立檢測H6亞型禽流感病毒抗體ELISA方法，以期為H6亞型禽流感流行病學調查和隱性感染監測提供有效的檢測手段。

1材料與方法

1.1試驗材料H6N6亞型禽流感病毒，由貴州省動物疫病與獸醫公共衛生重點實驗室保存;EcoliDH5α和pET32α（+），由貴州省動物疫病研究室保存;H6亞型AIV標準陽性血清（20191012）和陰性血清（20191020）、H5亞型AIV陽性血清（20190811）、H7亞型AIV陽性血清（20190618）和新城疫陽性血清（20191024），購自青島立見診斷技術發展中心;待檢雞血清樣本1837份，由省動物疫病預防控制中心采自全省9個市（州）養雞場。

1.2主要試劑和儀器設備

DNA連接酶、限制性核酸內切酶、RNA提取試劑盒、RNA反轉錄試劑盒、BCA Protein Assay Kit、BSA、胎牛血清等，購自寶生物（大連）工程有限公司;PCRMix、DL2 000Marker、瓊脂糖等，購自天根生化科技（北京）有限公司;純化Ni柱，購自北京韋氏博慧色譜科技有限公司;脫脂奶粉、HRP標記山羊抗雞IgG、Tween20、SDSPAGE凝膠配制試劑盒等，購自北京索萊寶科技有限公司;其他試劑，均為分析純。

1.3目的蛋白表達、純化與鑒定

1.3.1目的基因獲取與表達質粒構建

參考GenBank上禽流感病毒H6基因序列（登錄號KJ484613），利用Primer5.0軟件設計H6基因特異性引物（H6F：5′GAATTCGAAGATGATTGCCATCATTATAATAACG3′[含EcoR I酶切位點]/H6R：5′CGGATCCTATACATCATACATTGCATTGA GC3′ [含Hind III酶切位點]，預期擴增長度1714 bp，由上海英淮捷基有限公司合成）。雞胚增殖病毒，收集尿囊液，以RNA提取試劑盒提取病毒RNA，反轉錄為cDNA，再以上述引物擴增目的基因，經瓊脂糖凝膠電泳，回收目的基因，酶切并與同樣處理的pET32α（+）連接，轉化EcoliDH5α，提取重組質粒進行PCR、酶切和測定鑒定。

1.3.2目的蛋白表達、純化與鑒定

取鑒定含H6基因的陽性重組質粒，轉化BL21（DE3）大腸桿菌進行IPTG誘導表達，取4.5 h表達的細菌菌液，經超聲波處理后收集離心沉淀物，適量PBS溶液懸浮，Ni柱純化，收集純化產物，透析袋反透析濃縮，以BCA Protein Assay Kit進行蛋白質含量測定和Western blotting鑒定。

1.4基于H6蛋白禽流感抗體間接ELISA檢測方法的建立1.4.1間接ELISA操作步驟

以上述純化并濃縮的表達蛋白溶液，以PBS稀釋為10 μg/mL，取96孔酶標板，加入100 μL/孔，4? ℃孵育過夜，PBST液洗滌5次;加入5%脫脂奶粉200 μL/孔，37? ℃溫箱封閉l? h，洗滌5次;加入稀釋待檢血清100 μL/孔，37? ℃溫箱孵育30 min，洗滌5次;加入HRP羊抗雞抗體100 μL/孔，37? ℃溫箱孵育30 min，加入顯色液100 μL/孔，避光顯色10 min，加入終止液50 μL/孔，酶標儀測定OD630值，判斷和分析結果。

1.4.2間接ELISA反應條件優化

采用方陣滴定法，即取表達蛋白稀釋成不同濃度后包被酶標板，以H6亞型標準陽性血清和陰性血清不同稀釋度進行方陣滴定試驗，測定OD630值，計算P/N值確定最佳抗原包被濃度和血清稀釋度;以最佳抗原包被濃度進行包被，以不同溫度和不同時間進行孵育，按照上述步驟進行ELISA檢測，測定OD630值，計算P/N值確定最佳包被條件;以最佳抗原包被濃度和包被條件進行包被，以不同封閉液進行封閉2 h，按照上述步驟進行ELISA檢測，測定OD630值，計算P/N值確定最佳封閉液;以上述最佳條件進行包被和封閉，開展酶標二抗濃度與最佳顯色時間優化，確定間接ELISA檢測方法的反應條件。

1.4.3間接ELISA臨界值確定

按照上述優化的ELISA反應條件對已知H6亞型禽流感陰性血清15份進行檢測，計算OD630值的平均值X和標準差SD，根據統計學計算方法，以OD630值≥X+3SD判為陽性，OD630值<X+3SD判為陰性。

1.4.4間接ELISA重復性、特異性和敏感性試驗

取已知H6亞型禽流感陰性血清15份，每個樣本作5個重復進行ELISA檢測，測定其OD630值，計算其變異系數;取H6亞型AIV陽性血清和陰性血清、H5亞型AIV陽性血清、H7亞型AIV陽性血清和新城疫陽性血清進行適當稀釋后進行ELISA檢測，測定其OD630值，確定其反應特異性;以H6亞型AIV陽性血清作系列梯度稀釋后進行ELISA檢測，測定其OD630值，確定其反應靈敏度。

1.5基于H6蛋白禽流感抗體間接ELISA檢測方法初步應用取本實驗室近三年收集得到的全省各地部分規模養雞場血清樣本1837份（其中2017年505份、2018年608份和2019年724份），按照上述優化條件的ELISA進行禽流感H6亞型禽流感抗體檢測，計算待檢樣本的H6亞型禽流感抗體陽性率。

2結果與分析

2.1重組H6亞型蛋白的表達與純化鑒定

2.1.1重組H6亞型蛋白的表達

如圖1所示，在預期位置出現明顯的蛋白條帶，重組目的蛋白分子量約為65 ku，說明目的蛋白能成功地得到表達，且表達產物主要存在于細菌的包涵體沉淀中。

2.1.2重組H6亞型蛋白的純化鑒定

如圖2所示，經鎳柱純化后Western blotting檢測，重組蛋白能與His單抗產生特異性反應，說明表達的重組蛋白具有良好的抗體結合能力，可用于下一步間接ELISA檢測方法的建立。

2.2基于H6蛋白禽流感抗體間接ELISA檢測方法建立2.2.1間接ELISA反應條件優化

最佳包被抗原濃度與血清稀釋度確定：如表1所示，當重組H6蛋白包被濃度為10.0 μg/mL、血清稀釋度為 1∶20 時， P/N值為864最大。因此，確定最佳抗原包被濃度為100 μg/mL，血清稀釋度為1∶20。

最佳抗原包被條件確定：如表2所示，當采用 4 ℃包被過夜時，P/N值為8.67最大。因此，確定最佳包被條件為 4 ℃過夜。

最佳封閉液確定：如表3所示，當采用 5%脫脂奶粉37 ℃封閉2 h時，P/N值為9.28最大。因此，確定最佳封閉液為5%脫脂奶粉。

最佳血清作用時間確定：如表4所示，當血清于37 ℃作用30 min 時，P/N值最大。因此，確定最佳血清作用時間為 37 ℃條件下30 min。

最佳酶標二抗濃度確定：如表5所示，當酶標二抗以 1∶5000稀釋、37 ℃作用30 min時，P/N 值為9.11最大。因此，確定最佳酶標二抗稀釋度為 1∶5000。

最佳顯色時間確定：表6結果顯示，當37 ℃避光顯色10 min 時，P/N 值為8.81最大。因此，確定最佳顯色時間為 37? ℃作用10 min。

2.2.2間接ELISA方法臨界值確定

取已知H6亞型AIV陰性血清15份進行間接 ELISA檢測，測定OD630值，計算得到平均值X和標準差SD分別為0.152和0.018，計算出基于H6蛋白間接ELISA方法的判定標準為：樣本OD630值≥0.206判為陽性;樣本OD630值<0.206判為陰性。2.2.3間接ELISA方法重復性、特異性和敏感性分析間接ELISA方法重復性分析：如表7所示，建立的間接 ELISA 方法對同一樣本檢測的變異系數均小于10%（2.69%～7.26%），說明建立的間接 ELISA 有良好的重復性。

間接ELISA方法特異性分析：表8結果顯示，用建立的間接ELISA進行檢測，H5亞型、H7亞型禽流感和新城疫陽性血清的OD630值均小于0206，且H6亞型禽流感陰性、陽性血清對照均成立，表明該ELISA方法與常見病原陽性血清無交叉反應，具有良好的特異性。

間接ELISA方法敏感性分析：如表9所示，建立的間接ELISA方法能檢測到最高稀釋度為 1∶320的 H6亞型禽流感陽性血清，說明建立的間接 ELISA 有良好的敏感性。

2.3基于H6蛋白禽流感抗體間接ELISA檢測方法初步應用使用建立的間接 ELISA方法對2017-2019年采自貴州省部分地區家禽養殖場1837份臨床血清樣品進行H6亞型禽流感抗體檢測（表10），樣本陽性率平均為10.45%，說明本試驗建立的間接 ELISA 方法能用于臨床血清樣本H6亞型禽流感抗體檢測。

3結論與討論

H6亞型禽流感病毒屬于低致病性禽流感病毒，1965年首次在美國馬薩諸塞州一個養殖場火雞體內分離得到[5]，隨后在水禽、陸禽和家禽中發現[6]。H6亞型禽流感病毒在我國家禽中呈現快速增長趨勢：1975-2000年，從我國香港地區家禽中先后分離得到H6N1、H6N2、H6N7和H6N9亞型禽流感病毒[7];2000-2010年，從我國南部和東部地區活禽交易市場家禽中分離出H6N1、H6N2和H6N6亞型禽流感病毒[89];2011年以后，在華南、華東和華中地區活禽交易市場先后分離到H6N6、H6N2和H6N6亞型禽流感病毒[1011]。這些調查結果說明，H6亞型禽流感病毒已在我國飼養家禽中普遍存在，因此必須加強H6亞型禽流感流行病學調查。

目前，動物疫病流行病學調查方法主要有描述流行病學調查方法、血清流行病學調查方法、分子流行病學調查方法等，其中血清流行病學調查方法具有敏感特異、簡便經濟、可靠安全等優點，廣泛應用到獸醫流行病學調查各個領域中[12]。在血清流行病學調查方法中，最常采用的是血凝抑制試驗（HI）和酶聯免疫吸附試驗技術（ELISA），其中ELISA是目前運用最廣泛的的一種病毒抗原與抗體檢測技術，非常適合于大批量樣品的血清學調查，結果易于分析，在禽流感的檢疫、控制和撲滅中起著不可替代的作用，如針對H9亞型禽流感抗體[1314]、H7亞型抗體[1516]和H5亞型抗體[1718]建立的ELISA檢測方法等，但目前尚未見到有關針對H6亞型禽流感抗體檢測的ELISA方法。

本試驗從H6N6亞型禽流感病毒毒株得到H6基因后，連接到原核表達載體pET32α并轉化到大腸桿菌進行表達，經Westernblotting檢測顯示，表達的H6重組蛋白具有良好的反應原性，為建立檢測H6亞型禽流感抗體的間接 ELISA 方法奠定了基礎;以原核表達的H6重組蛋白為包被抗原，通過對抗原濃度、血清、酶標二抗稀釋度與反應時間等條件進行優化，建立檢測H6亞型禽流感抗體的間接 ELISA 方法;該方法能特異性檢測禽流感H6亞型抗體，陽性血清稀釋至 1∶320仍可檢出，與其他病原陽性血清均無交叉反應，批內檢測變異系數均小于10.00%，表明該方法具有敏感性高、特異性強、重復性好等優點，可應用于臨床禽流感H6亞型抗體的檢測。應用該ELISA方法對2017-2019年1837份雞血清樣本檢測顯示，H6亞型禽流感抗體陽性率從2017年的8.12%上升到2018年的10.85%，再上升至2019年的11.74%，說明H6亞型禽流感感染在飼養雞群中呈現逐步上升趨勢，應引起足夠的重視。綜上所述，本試驗成功建立了可檢測H6亞型禽流感抗體的間接ELISA方法，為臨床H6亞型禽流感的血清流行病學調查提供了技術支撐。

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