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環(huán)狀RNA CCDC109B對非小細(xì)胞肺癌細(xì)胞增殖和遷移的影響▲

2022-02-13 02:06:52
廣西醫(yī)學(xué) 2022年23期
關(guān)鍵詞:差異實(shí)驗(yàn)

張 葉 李 霞

(遼寧省腫瘤醫(yī)院放療科,遼寧省沈陽市 110042)

肺癌是呼吸系統(tǒng)最常見也是預(yù)后最差的惡性腫瘤,2020年肺癌死亡病例數(shù)在所有癌癥中位居首位[1]。肺癌根據(jù)病理學(xué)分型可分為小細(xì)胞肺癌和非小細(xì)胞肺癌(non-small cell lung cancer,NSCLC)兩大類,其中NSCLC占比超過85%[2]。NSCLC發(fā)病早期的臨床表現(xiàn)具有多樣性,故其早期診斷率不高,很多患者在就診時(shí)已處于腫瘤晚期,預(yù)后不佳[3]。NSCLC的快速生長和遠(yuǎn)處轉(zhuǎn)移是治療的難點(diǎn)[4]。因此,尋找與NSCLC發(fā)生和發(fā)展密切相關(guān)的新型分子生物學(xué)標(biāo)志物并明確其在NSCLC中的作用,具有十分重要的意義。

環(huán)狀RNA(circular RNA,circRNA)是目前研究的熱點(diǎn),由于其特殊的閉合環(huán)狀結(jié)構(gòu)和超高的穩(wěn)定性,circRNA在NSCLC發(fā)生和發(fā)展過程中發(fā)揮了重要的調(diào)控作用[5]。例如,circFGFR1是一種circRNA,circFGFR1在NSCLC組織和細(xì)胞系中表達(dá)增高,circFGFR1可通過吸附miR-381-3p的方式促進(jìn)C-X-C趨化因子受體4誘導(dǎo)NSCLC細(xì)胞遷移、侵襲、增殖和免疫逃逸[6]。本研究通過GEO2R在線軟件分析GEO數(shù)據(jù)庫中NSCLC相關(guān)數(shù)據(jù)集GSE158695以篩選差異表達(dá)的circRNA,并選取其中倍數(shù)變化(fold change,F(xiàn)C)最為明顯的circRNA,即circCCDC109B(circBase ID:hsa_circ_0070659;探針I(yè)D:ASCRP004014)進(jìn)行初步研究,探討其對NSCLC細(xì)胞增殖和遷移的影響。

1 材料與方法

1.1 材料 人正常支氣管上皮細(xì)胞株16HBE、人NSCLC細(xì)胞株A549和H1299均購自中科院上海細(xì)胞庫。氣道上皮細(xì)胞基礎(chǔ)培養(yǎng)基(美國ATCC公司,批號:CAT NO.YB-H010),DMEM及胎牛血清(Gibco公司,批號:CAT NO.11966-025、CAT NO.16140-089),TRIzol試劑盒及LipofectamineTM3000試劑盒(Invitrogen公司,批號:CAT NO.15596-026、CAT NO.L3000-008),GoscriptTM反轉(zhuǎn)錄試劑盒及GoTaq?qPCR試劑盒(美國Promega公司,批號:CAT NO.A5003、CAT NO.A6102)。引物由生工生物工程(上海)股份有限公司設(shè)計(jì)并合成;特異性circCCDC109B小干擾RNA sicirc-1和sicirc-2,以及陰性對照小干擾RNA siNC均由廣州市銳博生物科技有限公司設(shè)計(jì)并合成;6-羥基熒光素琥珀酰亞胺酯標(biāo)記的特異性circCCDC109B寡聚核苷酸探針由上海吉瑪制藥技術(shù)有限公司設(shè)計(jì)并合成。

1.2 實(shí)驗(yàn)方法

1.2.1 GEO2R在線軟件分析GEO數(shù)據(jù)庫中NSCLC相關(guān)數(shù)據(jù)集:以circRNA和NSCLC為關(guān)鍵詞,從GEO數(shù)據(jù)庫(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/)中搜索NSCLC相關(guān)數(shù)據(jù)集文件,選定數(shù)據(jù)集GSE158695(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/query/acc.cgi?acc= GSE158695)作為分析對象。按照GEO2R在線軟件的說明分別設(shè)定癌旁組織組(n=3)和NSCLC組(n=3)并進(jìn)行在線分析,下載差異表達(dá)的circRNA的表達(dá)文件,再以校正P值<0.01且|log2FC|≥1.5為篩選標(biāo)準(zhǔn),篩選差異表達(dá)的circRNA。

1.2.2 細(xì)胞培養(yǎng):將人正常支氣管上皮細(xì)胞株16HBE培養(yǎng)于氣道上皮細(xì)胞基礎(chǔ)培養(yǎng)基,將人NSCLC細(xì)胞株A549和H1299培養(yǎng)于DMEM,并置于含有5% CO2的37 ℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng),當(dāng)細(xì)胞生長至融合率為70%~80%時(shí),以0.25%胰蛋白酶消化,并按1∶3比例進(jìn)行傳代。以上兩種培養(yǎng)基均添加10%胎牛血清、100 μg/mL青霉素和0.1 mg/mL鏈霉素。

1.2.3 細(xì)胞分組及轉(zhuǎn)染:取對數(shù)生長期的A549和H1299細(xì)胞,棄去培養(yǎng)基,PBS清洗3次(3 min/次)后加入0.25%胰蛋白酶消化3 min,用DMEM終止消化后,按2×105個(gè)細(xì)胞/孔的密度將細(xì)胞接種于6孔板,并隨機(jī)分為陰性對照小干擾RNA轉(zhuǎn)染組(siNC組)、1# circCCDC109B小干擾RNA轉(zhuǎn)染組(sicirc-1組)和2# circCCDC109B小干擾RNA轉(zhuǎn)染組(sicirc-2組),轉(zhuǎn)染6 h后,棄去轉(zhuǎn)染試劑,更換為完全培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)。次日細(xì)胞貼壁生長至融合率為50%時(shí),按照LipofectamineTM3000試劑盒說明書將sicirc-1、sicirc-2或siNC轉(zhuǎn)染至A549和H1299細(xì)胞內(nèi)。轉(zhuǎn)染48 h后進(jìn)行后續(xù)的實(shí)驗(yàn)。sicirc-1序列為5′-GCCATCTTCACAGCAGGTTTT-3′,sicirc-2序列為5′-ACAGCAGGTTTTGCGTGTGAA-3′,siNC序列為5′-UUCUCCGAACGUGUCACGUTT-3′。

1.2.4 RNase R酶處理及實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測circCCDC109B的表達(dá)水平[7]:取人NSCLC細(xì)胞株A549和H1299細(xì)胞、人正常支氣管上皮細(xì)胞株16HBE細(xì)胞,以及1.2.3各組轉(zhuǎn)染48 h后的細(xì)胞,按照TRIzol試劑盒說明書提取總RNA,在提取的總RNA中加入RNase R酶(3 U/1 000 ng),37 ℃孵育10 min以消化線性RNA。按照GoscriptTM反轉(zhuǎn)錄試劑盒說明書將RNA反轉(zhuǎn)錄合成cDNA,反應(yīng)條件為70 ℃變性5 min,25 ℃退火5 min,42 ℃延伸60 min,70 ℃滅活15 min,4 ℃冷卻。按照GoTaq?qPCR試劑盒說明書進(jìn)行實(shí)時(shí)定量PCR。反應(yīng)體系包括上游引物0.5 μL、下游引物0.5 μL、cDNA 1 μL、RNase-free水8 μL,總體積為10 μL。circCCDC109B上游引物序列為5′-GTTGGTTCATTCCTTCAGGACC-3′,下游引物序列為5′-AGGTGGCACCACGGTACTAT-3′。PCR反應(yīng)條件:95 ℃(30 s)預(yù)變性;94 ℃(5 s)變性;95℃(15 s)→60 ℃(34 s)退火、延伸,40個(gè)循環(huán);95 ℃(15 s)→60 ℃(1 min)→95 ℃(15 s)。以β-actin為內(nèi)參(上游引物序列為5′-CTTCTACAATGAGCTGCGTG-3′,下游引物序列為5′-TCATGAGGTAGTCAGTCAGG-3′),采用2-ΔΔCt法計(jì)算circCCDC109B的相對表達(dá)水平。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。

1.2.5 免疫熒光原位雜交檢測circCCDC109B的差異表達(dá)[8]:收集2019年3月至2019年4月遼寧省腫瘤醫(yī)院收治的3例行腫瘤切除術(shù)的NSCLC患者的腫瘤組織及對應(yīng)的癌旁組織標(biāo)本,常規(guī)清洗、脫水、石蠟包埋固定,制成厚度為5 μm的切片;常規(guī)70%、85%和100%乙醇梯度脫水,20 μg/mL蛋白酶K消化5 min、PBS清洗3次(3 min/次);預(yù)雜交液37 ℃孵育1 h后加入含有6-羥基熒光素琥珀酰亞胺酯標(biāo)記的circCCDC109B寡聚核苷酸探針的雜交液37 ℃孵育過夜;次日,棄去雜交液,依次行2×檸檬酸鈉緩沖液(saline sodium citrate buffer,SSC)37 ℃洗10 min,1×SSC 37 ℃洗5 min,0.5×SSC室溫洗10 min;滴加DAPI染液復(fù)染,避光孵育8 min,用PBS沖洗3 min后滴加抗熒光淬滅封片劑封片,置于熒光顯微鏡下觀察并拍照。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。

1.2.6 克隆形成實(shí)驗(yàn)檢測A549和H1299細(xì)胞增殖能力[9]:取1.2.3各組轉(zhuǎn)染48 h后的細(xì)胞,采用0.25%胰蛋白酶消化3 min后接種于6孔板中(接種密度為1×103個(gè)細(xì)胞/孔),并置于37 ℃、5% CO2細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)1周。1周后用PBS清洗2次(3 min/次),采用4%多聚甲醛固定15 min,再用0.5%結(jié)晶紫染色15 min,置于顯微鏡下觀察拍照,并隨機(jī)選取3個(gè)視野計(jì)算克隆形成數(shù)目(以包含50個(gè)以上細(xì)胞為1個(gè)克隆)。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。

1.2.7 Transwell實(shí)驗(yàn)檢測A549和H1299細(xì)胞遷移能力[10]:取1.2.3各組轉(zhuǎn)染48 h后的細(xì)胞,采用0.25%胰蛋白酶消化3 min后,調(diào)整細(xì)胞計(jì)數(shù)為1.5×104個(gè)并接種于Transwell小室上室內(nèi),加入100 μL含10% 胎牛血清的DMEM;Transwell小室下室內(nèi)加入500 μL含20%胎牛血清的DMEM,37 ℃、5% CO2孵育48 h。取出Transwell小室,棉簽擦去Transwell小室內(nèi)部細(xì)胞,用PBS沖洗3 min,4%多聚甲醛固定15 min,0.5%結(jié)晶紫染色15 min,置于倒置顯微鏡下觀察Transwell小室下層細(xì)胞并隨機(jī)選取3個(gè)視野進(jìn)行計(jì)數(shù)。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。

1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 采用SPSS 19.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。計(jì)量資料以(x±s)表示,多組間比較采用方差分析,進(jìn)一步兩兩比較采用LSD-t檢驗(yàn)。以P<0.05為差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

2 結(jié) 果

2.1 在數(shù)據(jù)集GSE158695中差異表達(dá)的circRNA NSCLC相關(guān)數(shù)據(jù)集GSE158695中差異表達(dá)的circRNAs見圖1。相較于癌旁組織,在NSCLC癌組織中差異表達(dá)的circRNA共有55個(gè),其中表達(dá)上調(diào)的circRNA有51個(gè),表達(dá)下調(diào)的circRNA有4個(gè);其中又以circCCDC109B(circBase ID:hsa_circ_0070659,探針I(yè)D:ASCRP004014)的上調(diào)倍數(shù)最明顯(log2FC=4.25),見表1。

圖1 數(shù)據(jù)集GSE158695中差異表達(dá)的circRNA

表1 NSCLC中差異表達(dá)的circRNA

2.2 circCCDC109B在NSCLC組織及細(xì)胞系中的表達(dá)情況 免疫熒光原位雜交染色結(jié)果顯示,circCCDC109B在NSCLC癌組織中的表達(dá)水平高于癌旁組織,見圖2A。實(shí)時(shí)熒光定量PCR結(jié)果顯示,circCCDC109B在NSCLC細(xì)胞系A(chǔ)549和H1299中的表達(dá)水平均高于人支氣管上皮細(xì)胞系16HBE(P<0.05),見表2。與其母基因線粒體鈣單向轉(zhuǎn)運(yùn)體顯性負(fù)亞基β(mitochondrial calcium uniporter dominant negative subunit beta,CCDC109B)比較,circCCDC109B由CCDC109B前體RNA的2號和3號外顯子環(huán)化形成,見圖2B。

圖2 circCCDC109B在NSCLC組織中的表達(dá)情況及其環(huán)形結(jié)構(gòu)

表2 NSCLC細(xì)胞系和人支氣管上皮細(xì)胞系中circCCDC109B相對表達(dá)水平的比較(x±s)

2.3 下調(diào)circCCDC109B表達(dá)對A549細(xì)胞和H1299細(xì)胞增殖、遷移的影響 相比于siNC組,sicirc-1組和sicirc-2組A549細(xì)胞和H1299細(xì)胞內(nèi)的circCCDC109B表達(dá)水平降低(P<0.05),見表3,提示轉(zhuǎn)染成功。克隆形成實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,相比于siNC組,sicirc-1組和sicirc-2組A549細(xì)胞和H1299細(xì)胞的克隆形成數(shù)減少(P<0.05),見表3。Transwell遷移實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,相比于siNC組,sicirc-1組和sicirc-2組A549細(xì)胞和H1299細(xì)胞的遷移能力降低(P<0.05),見表3和圖3。

表3 3組A549和H1299細(xì)胞circCCDC109B相對表達(dá)水平、克隆形成數(shù)和遷移能力的比較(x±s)

圖3 下調(diào)circCCDC109B表達(dá)對A549細(xì)胞和H1299細(xì)胞遷移的影響

3 討 論

隨著高通量測序技術(shù)的不斷進(jìn)步,越來越多的非編碼RNA種類被發(fā)現(xiàn),如高度保守性的微小RNA、轉(zhuǎn)錄超保守的circRNA及在物種間缺少保守性的長鏈非編碼RNA等[11-13]。這類非編碼RNA缺少轉(zhuǎn)錄功能或者具有非常有限的蛋白質(zhì)編碼能力[14]。與線性的信使RNA和長鏈非編碼RNA不同,circRNA缺乏線性的多聚腺苷酸尾巴而呈現(xiàn)一種閉合環(huán)狀結(jié)構(gòu)[15]。隨著RNA測序技術(shù)的快速發(fā)展,越來越多的新的circRNA被發(fā)現(xiàn),它們在多種疾病中的表達(dá)和功能也受到了越來越多的關(guān)注[16-17]。

circRNA在多種腫瘤性疾病中表達(dá),且通過調(diào)控細(xì)胞周期、細(xì)胞增殖和凋亡、細(xì)胞侵襲和遷移、細(xì)胞耐藥等參與腫瘤發(fā)生和發(fā)展[18-23]。circCCDC109B位于人染色體4q25正義鏈上,是由CCDC109B前體RNA的2號和3號外顯子環(huán)化形成,其基因組長度為1 355 bp,剪切后的長度為237 bp,位于基因組的chr4:110580167-110581521。目前關(guān)于circCCDC109B的研究鮮見報(bào)告。本研究通過GEO2R在線軟件對circCCDC109B進(jìn)行分析,發(fā)現(xiàn)相比于癌旁組織,circCCDC109B在NSCLC組織中的表達(dá)水平明顯增高(P<0.05)。進(jìn)一步行免疫熒光原位雜交染色和實(shí)時(shí)熒光定量PCR實(shí)驗(yàn),結(jié)果顯示,circCCDC109B在NSCLC組織和細(xì)胞系中的表達(dá)水平均上調(diào)(均P<0.05),提示circCCDC109B可能參與NSCLC的發(fā)生。

研究顯示,多個(gè)circRNA均參與NSCLC的增殖和侵襲轉(zhuǎn)移。如Zhang等[24]發(fā)現(xiàn),circSATB2在NSCLC組織和細(xì)胞系中表達(dá)增加,且circSATB2可通過外泌體轉(zhuǎn)運(yùn)的方式自分泌到周圍的細(xì)胞并吸附miR-326,促進(jìn)肌動(dòng)蛋白交聯(lián)蛋白同源體1的表達(dá),從而促進(jìn)NSCLC細(xì)胞的增殖、侵襲和轉(zhuǎn)移。本研究采用轉(zhuǎn)染circCCDC109B特異性小干擾RNA的方法構(gòu)建circCCDC109B低表達(dá)的細(xì)胞模型,并通過功能缺失性細(xì)胞增殖實(shí)驗(yàn)(克隆形成實(shí)驗(yàn))和細(xì)胞遷移實(shí)驗(yàn)(Transwell實(shí)驗(yàn))觀察下調(diào)circCCDC109B表達(dá)對NSCLC細(xì)胞系A(chǔ)549和H1299增殖和遷移能力的影響。結(jié)果顯示,相比于siNC組,sicirc-1組和sicirc-2組A549細(xì)胞和H1299細(xì)胞的克隆形成數(shù)減少、遷移能力降低(P<0.05),說明下調(diào)circCCDC109B的表達(dá)可抑制A549細(xì)胞和H1299細(xì)胞系的增殖和遷移能力,這提示circCCDC109B可能作為癌基因參與NSCLC的進(jìn)展。

綜上所述,NSCLC組織和細(xì)胞系中circCCDC109B表達(dá)上調(diào),下調(diào)circCCDC109B的表達(dá)可以抑制NSCLC細(xì)胞的增殖和遷移。但腫瘤的發(fā)生和發(fā)展是一個(gè)涉及多因素的復(fù)雜過程,包括細(xì)胞黏附力減弱、細(xì)胞外基質(zhì)降解、細(xì)胞遷移、新生血管形成等多個(gè)病理學(xué)改變,本研究只是初步分析circCCDC109B在NSCLC中的表達(dá)及部分生物學(xué)功能,其具體作用機(jī)制仍需進(jìn)一步深入探討。

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