葛晨,劉俊行,付優,賈麗靜,龍玲,杜全勝
1河北省人民醫院重癥醫學科,石家莊050000;2河北省兒童醫院骨科
膿毒癥是由感染誘發的宿主炎癥失調反應,可導致進行性器官功能障礙,其中最早受損的臟器是肺臟[1],臨床上表現為急性肺損傷或急性呼吸窘迫綜合征。流行病學研究顯示,膿毒癥患者中急性肺損傷的發生率達40%,病死率高達40%~50%[2]。膿毒癥急性肺損傷的病理機制復雜,包括炎癥因子釋放、氧化應激、免疫失調等。膿毒癥導致免疫細胞群體性過度活化,引起炎癥介質腫瘤壞死因子α(TNF-α)、白細胞介素6(IL-6)等過度釋放,大量炎癥細胞聚集到肺部,導致急性肺損傷[3]。同時,在膿毒癥全身炎癥反應過程中,炎癥細胞被激活,合成和分泌大量活性氧,造成體內氧化—還原失衡,產生氧化應激狀態,損傷機體細胞、組織和器官,最終發展為器官功能障礙和衰竭。氧化應激反應與炎癥反應相互影響,相互促進,形成炎癥—氧化應激的惡性循環[4]。微小RNA(miRNA)是一類長度約22個核苷酸的內源性非編碼單鏈RNA,它通過抑制靶基因翻譯調節蛋白表達,廣泛參與人體生長、分化、免疫應答及炎癥反應等生理過程,其表達及功能失調與心血管疾病、腫瘤、膿毒癥等疾病密切相關[5-6]。研究顯示,微小RNA-21(miR-21)在炎癥疾病中發揮調控作用[7],并可通過負向調節磷脂酶和張力蛋白同源物(PTEN)影響細胞分化、生長和凋亡[8-10]。然而,目前miR-21與膿毒癥誘導的急性肺損傷是否相關尚不清楚。2019年9月—2020年3月,我們通過建立膿毒癥急性肺損傷小鼠模型,觀察小鼠肺組織中miR-21的表達情況,并用腺病毒轉染方法干預miR-21表達,觀察其對肺水腫、血清炎癥因子及氧化應激指標的影響,及其與PTEN的關系。
1.1 材料
1.1.1 動物 清潔級健康雄性昆明小鼠96只,體質量(30±5)g,由河北醫科大學實驗動物中心提供。飼養于清潔級動物房,飼養條件為明暗12 h/12 h交替,溫度18~22 ℃,濕度40%~60%,自由進食、飲水。適應性飼養1周后用于實驗。
1.1.2 主要試劑與儀器 載有miR-21前體或抑制劑的腺病毒(美國invitrogen公司),PTEN抑制劑(Sigma公司,美國),小鼠TNF-α、IL-6 ELISA試劑盒(杭州聯科科技公司),小鼠活性氧(ROS)、超氧化物歧化酶(SOD)ELISA試劑盒(南京建成生物工程研究所),TRIzol提取液(美國Ambion公司),miRNA逆轉錄試劑盒(美國GeneCopoeia公司),RT-PCR試劑盒(美國GeneCopoeia公司),PTEN抗體和羊抗兔抗體(美國KPL公司)。血氣分析儀(Premier 3000, 意大利GEM公司),低溫離心機(德國Eppendorf公司),紫外分光光度儀(日本Shimadzu公司),反轉錄儀(美國ABI公司),Real-time PCR System(美國ABI公司)。
1.2 動物分組干預與模型制備 采用隨機數字表法將小鼠分為假手術組(n=32)、模型組(n=32)、miR-21前體組(MP組,n=8)、miR-21抑制劑組(MI組,n=8)、miR-21前體+PTEN抑制劑組(MP+Anti-PTEN組,n=8)、miR-21抑制劑+PTEN抑制劑組(MI+Anti-PTEN組,n=8)。采用盲腸結扎穿孔術制備膿毒癥急性肺損傷模型。小鼠術前禁食12 h,腹腔注射10%水合氯醛3 mL/kg進行麻醉。仰臥位固定,腹部備皮、消毒,沿腹正中線切開腹壁約1.0 cm切口,探查分離盲腸,用18號無菌注射器針頭貫穿盲腸3次,后將穿刺盲腸還納至腹腔,并逐層縫合腹部切口。假手術組僅開腹后探查盲腸,不進行穿刺處理;模型組采用盲腸結扎穿孔術制備膿毒癥急性肺損傷模型;MP組、MI組于造模前4 d分別經尾靜脈注入載有miR-21前體和miR-21抑制劑的腺病毒0.2 mL(1×109pfu/mL);MP+Anti-PTEN組、MI+Anti-PTEN組于造模前4 d分別轉染miR-21前體、miR-21抑制劑,于造模前30 min給予尾靜脈注射10 μg/kg PTEN抑制劑。
1.3 氧合指數(OI)測算 造模后24 h,每組各取8只小鼠,麻醉開腹,腹主動脈取血1 mL,使用血氣分析儀進行血氣分析,以氧分壓/吸入氧濃度計算OI。
1.4 肺組織濕重/干重比值(W/D)測定 完成血氣分析后,取小鼠左肺組織,用吸水紙吸干,置于電子天平稱重,記錄肺濕重;將肺組織置于70 ℃恒溫烘箱干燥48 h再次稱重,記錄肺干重,計算肺W/D。
1.5 血清炎癥因子TNF-α、IL-6和氧化應激指標ROS、SOD檢測 造模后24 h,取小鼠腹主動脈血2 mL,靜置后4 ℃ 4 000 r/min離心10 min,取血清-80 ℃保存。采用ELISA法檢測血清TNF-α、IL-6、ROS、SOD水平,嚴格按照試劑盒說明書操作。繪制標準曲線和回歸方程,測定樣品吸光度,代入標準曲線計算樣品濃度。
1.6 肺組織miR-21表達檢測 采用qRT-PCR法。取假手術組、模型組造模后6、12、24、48 h 各8只小鼠右肺組織,液氮速凍,-80 ℃保存,用于肺組織miR-21表達檢測;取凍存的肺組織,應用TRIzol提取肺組織RNA,使用超微量紫外分光光度計檢測純度和濃度,獲得高質量RNA。按照miRNA逆轉錄試劑盒進行逆轉錄。miR-21引物序列:上游5′-GAAATGCCTCACAGCTATCGT-3′,下游5′-CCTCCA-CAAAGAGCCACC-3′。逆轉錄條件:37 ℃ 60 min,85 ℃ 5 min。擴增條件:95 ℃預變性10 min,95 ℃變性10 s,60 ℃退火20 s,72 ℃延伸20 s,40個循環。以U6為內參,采用2-ΔΔCt法計算miR-21的相對表達量。
1.7 干預miR-21表達對PTEN蛋白表達的調控作用觀察 取假手術組、模型組、MP組、MI組造模后24 h的右肺組織,液氮速凍,-80 ℃保存,用于檢測miR-21及PTEN蛋白表達。miR-21檢測方法參照“1.6”,PTEN蛋白檢測采用Western blotting法。取凍存的肺組織,稱取100 mg,加入裂解液后充分勻漿,4 ℃ 12 000 r/min離心20 min,BCA法測定蛋白質濃度。取100 μg蛋白樣品,加入上樣緩沖液,沸水變性5 min,電泳后將蛋白轉移到PVDF膜,5%脫脂奶粉室溫封閉1 h。加入PTEN抗體(1∶1 000)4 ℃孵育過夜。TBST洗膜3次,每次15 min。加入羊抗兔抗體(1∶5 000)37 ℃孵育1 h,TBST洗膜3次,每次10 min。ECL顯色,用Image J軟件測定條帶灰度值,以目的蛋白的灰度值與GAPDH的灰度值的比值代表目的蛋白的相對表達量。

2.1 各組OI比較 假手術組、模型組、MP組、MI組、MP+Anti-PTEN組、MI+Anti-PTEN組OI分別為295±28、180±19、225±21、125±13、262±25、256±26。與假手術組比較,模型組OI降低(P<0.05);與模型組比較,MP組、MP+Anti-PTEN組、MI+Anti-PTEN組OI均升高,MI組OI降低(P均<0.05);與MP組比較,MP+Anti-PTEN組、MI+Anti-PTEN組OI升高(P均<0.05);MP+Anti-PTEN組與MI+Anti-PTEN組比較差異無統計學意義(P>0.05)。
2.2 各組肺W/D比較 假手術組、模型組、MP組、MI組、MP+Anti-PTEN組、MI+Anti-PTEN組肺W/D分別為4.0±0.4、7.3±0.7、6.1±0.5、9.6±0.8、4.8±0.5、4.9±0.5。與假手術組比較,模型組W/D升高(P<0.05);與模型組比較,MP組、MP+Anti-PTEN組、MI+Anti-PTEN組W/D均下降,MI組W/D升高(P均<0.05);與MP組比較,MP+Anti-PTEN組、MI+Anti-PTEN組W/D下降(P均<0.05);MP+Anti-PTEN組與MI+Anti-PTEN組比較差異無統計學意義(P>0.05)。
2.3 各組血清TNF-α、IL-6、ROS、SOD水平比較 與假手術組比較,模型組血清TNF-α、IL-6、ROS、SOD水平升高(P均<0.05);與模型組比較,MP組、MP+Anti-PTEN組、MI+Anti-PTEN組血清TNF-α、IL-6、ROS、SOD水平下降(P均<0.05),MI組TNF-α、IL-6、ROS、SOD水平升高(P均<0.05);與MP組比較,MP+Anti-PTEN組、MI+Anti-PTEN組血清TNF-α、IL-6、ROS、SOD水平下降(P均<0.05);MP+Anti-PTEN組與MI+Anti-PTEN組比較差異無統計學意義(P均>0.05)。見表1。

表1 各組造模后24 h血清TNF-α、IL-6、ROS、SOD水平比較
2.4 模型組造模后不同時間點肺組織miR-21表達變化 造模后6、12、24、48 h,模型組miR-21表達均較假手術組升高,造模后24 h達到峰值。見表2。

表2 假手術組和模型組造模后不同時間點肺組織miR-21表達比較
2.5 干預miR-21表達對PTEN蛋白表達的調控作用 與假手術組比較,模型組和MP組miR-21表達均升高、PTEN蛋白表達均下降,MI組miR-21表達下降、PTEN蛋白表達升高(P均<0.05);與模型組比較,MP組miR-21表達升高、PTEN蛋白表達下降,MI組miR-21表達下降、PTEN蛋白表達升高(P均<0.05)。

表3 干預miR-21表達對PTEN蛋白表達的調控作用
研究發現,多種miRNA在膿毒癥中表達異常,其中miR-122、miR-133a、miR-146a變化較為顯著,逐步成為早期診斷膿毒癥的生物標志物,在膿毒癥防治中發揮重要作用[11-13]。研究表明,miR-21參與多種疾病的炎癥反應,且存在抗炎作用。miR-21在過氧化氫誘導的Ⅱ型肺泡上皮細胞凋亡中起保護作用[14],在動物試驗中證實可以減輕高氧性肺損傷[15]。而miR-21在膿毒癥急性肺損傷中的表達及如何發揮作用仍未可知。本研究結果顯示,膿毒癥急性肺損傷小鼠造模后6、12、24、48 h時miR-21表達水平均高于假手術組,24 h達到峰值,提示miR-21參與了膿毒癥急性肺損傷的過程。我們對小鼠通過注射載有miR-21前體或抑制劑的腺病毒干預miR-21表達,結果顯示,MP組肺組織miR-21表達較模型組升高,MI組肺組織miR-21表達較模型組下降。與模型組比較,MP組OI升高,W/D下降,MI組OI降低,W/D升高,表明增加miR-21表達可減輕膿毒癥小鼠肺損傷,而抑制miR-21表達會加重膿毒癥小鼠肺組織損傷。
在膿毒癥急性肺損傷的發病及病理過程中,免疫反應導致大量炎癥介質過度釋放。TNF-α是炎癥反應過程中出現最早的炎癥介質,能激發炎癥瀑布效應,促使IL-6、活性氧合成和釋放,加重炎癥反應;TNF-α可以損傷肺毛細血管細胞,增加血管通透性,導致肺水腫;還可通過直接損傷Ⅱ型肺泡上皮細胞,肺泡表面活性物質減少,進而出現肺泡萎陷[16],臨床出現頑固性低氧血癥、難治性呼吸困難、紫紺等癥狀。本研究結果顯示,與模型組比較,MP組血清TNF-α、IL-6水平下降,MI組TNF-α、IL-6水平升高,說明上調miR-21表達可減輕膿毒癥小鼠機體炎癥反應。既往研究表明,多種miRNA通過抑制炎癥因子受體mRNA表達以減少炎癥介質的釋放[17],提示miR-21可能通過與炎癥通路中mRNA結合促其降解,抑制炎癥反應,進一步改善臨床癥狀。
在膿毒癥發病過程中,除過度炎癥反應外,氧化應激也是膿毒癥急性肺損傷的重要發病機制之一,并且與炎癥反應相互促進。大量炎癥因子激活炎癥細胞,導致大量活性氧合成和分泌,形成氧化應激狀態。氧化應激對脂類、蛋白質產生強氧化作用,而這些物質是穩定細胞器和生物膜的重要成分,機體細胞的過氧化損傷導致組織缺血、水腫,造成組織器官損傷,進一步發展為器官功能障礙和衰竭。本研究結果顯示,與模型組比較,MP組血清ROS、SOD水平下降,MI組血清ROS、SOD水平升高。表明增加miR-21表達可減輕膿毒癥相關的炎癥反應和氧化應激反應,抑制miR-21表達后炎癥反應和氧化應激反應增加。miR-21可能通過減輕膿毒癥相關的炎癥反應及氧化應激反應,減輕炎癥因子及活性氧對肺毛細血管細胞及Ⅱ型肺泡上皮細胞的損傷,增加肺泡表面活性物質的釋放,進而減輕肺水腫及肺泡萎陷,使W/D下降、OI升高,改善呼吸困難及低氧血癥。
關于人類癌癥基因的研究顯示,PTEN是miR-21-5p的靶基因,miR-21-5p通過抑制PTEN進而抑制蛋白激酶B(Akt)通路,促進巨噬細胞極化和肺癌細胞凋亡。有研究認為,miR-21-5p可作用于PTEN/Akt信號通路,抑制Ⅱ型肺泡上皮細胞凋亡,進而保護肺組織[15]。Akt是一個重要細胞信號轉導通路,而PTEN是一種雙蛋白脂質磷酸酶,可負性調節Akt信號通路。本研究通過觀察miR-21變化對PTEN表達的影響,分析二者之間的關系,結果顯示,與假手術組比較,模型組PTEN表達下降;MP組上調miR-21后PTEN表達下降,而MI組下調miR-21表達后PTEN表達增加。這表明在小鼠膿毒癥急性肺損傷中PTEN是miR-21的作用靶點。為進一步驗證PTEN的作用,本研究采用PTEN抑制劑降低PTEN蛋白表達,結果顯示,與MP組造模后24 h比較,MP+Anti-PTEN組、MI+Anti-PTEN組TNF-α、IL-6、ROS、SOD水平、W/D下降,OI升高,說明抑制PTEN后miR-21對減輕炎癥反應、氧化應激、改善肺損傷的作用更強,產生了累加效應。而MP+Anti-PTEN組與MI+Anti-PTEN組TNF-α、IL-6、ROS、SOD水平、W/D、OI比較差異無統計學意義,說明PTEN被抑制后,上調或下調miR-21表達對膿毒癥中炎癥反應、氧化應激、改善肺損傷影響無差異,進一步驗證了PTEN確為miR-21的作用靶點。
綜上所述,膿毒癥小鼠急性肺損傷后肺組織中miR-21表達增加,增加miR-21表達可減輕膿毒癥小鼠炎癥反應及氧化應激從而減輕肺損傷;而抑制miR-21表達后可加重膿毒癥小鼠炎癥反應和氧化應激而加重肺損傷,其機制可能是通過抑制PTEN發揮保護作用。