黃鰭棘鯛精子冷凍保存方法探究

賈濮元 ，郭華陽, ，朱克誠, ，劉寶鎖, ，郭 梁, ，張 楠, ，江世貴, ，張殿昌,

（1. 河北農業大學海洋學院，河北 秦皇島 066003； 2. 中國水產科學研究院南海水產研究所/農業農村部南海漁業資源開發利用重點實驗室，廣東 廣州 510300； 3. 廣東省海洋生物種業工程技術研究中心，廣東 廣州 510300）

魚類精子冷凍是一種有效保護魚類種質資源的生物技術，具有極大的商業應用潛力[1-2]，可有效簡化對親魚的管理，解決魚類雌、雄配子發育不同步或地理隔離的問題，從而有助于瀕危物種資源保護和重要模式物種的譜系構建，為魚類遺傳學研究不間斷提供優質的配子材料，增加養殖親魚的遺傳變異性。Blxater[3]于1953年成功冷凍保存大西洋鯡 (Clupea harengus) 精子，開啟了魚類精子冷凍保存的先河。近年來，國內外學者已建立了魚類精子冷凍保存技術體系，構建了白斑狗魚 (Esox lucius)[4]、翹嘴鲌 (Culter alburnus)[5]、紅點鮭 (Salvelinus leucomaenis)[1]、烏克蘭鱗鯉 (Cyprinus carpoio)[6]、小黃魚 (Larimichthys polyactis)[7]等重要經濟魚類的冷凍精子庫，并成功應用在魚類的雌核發育和性別控制等方面。魚類精子冷凍保存已成為長期保存魚類優質資源的有效途徑之一，然而不同魚類精子的生理特性不盡相同，導致其冷凍保存技術具有特異性，因此對特定養殖品種，需要優化確定其精子冷凍保存技術參數，建立適宜的精子冷凍保存技術體系。

黃鰭棘鯛 (Acanthopagrus latus)，又名黃鰭鯛、黃腳立、赤翅等，為淺海暖水性底層魚類[8]，因其肉質鮮美、口感極佳、營養價值較高，加之其適應力強、生長快，已成為我國南方池塘和網箱養殖的重要對象之一[9]。黃鰭棘鯛是雌雄同體魚類，單個個體時，雄性1齡時可發育成熟，到3齡時雄魚轉化為成熟雌性，雌、雄發育不同步以及地理隔離的問題致使其育種受到限制，制約了黃鰭棘鯛養殖產業的健康可持續發展。利用低溫冷凍技術可有效解決雌、雄發育不同步的問題，保證在人工授精時獲得充足的魚類精子供應，使育種更加順利，保障其產業的健康可持續發展[10]。自20世紀80年代起國內外開始了鯛科魚類精子超低溫冷凍保存的研究工作；江世貴等[9,11]對黑鯛 (A. schlegelii)、黃鰭棘鯛、平鯛 (Rhabdosargus sarba) 和真鯛 (Pagrus major) 4種鯛科魚類精子的適鹽性、精子激活條件以及pH對精子活力的影響等方面進行了研究；李加兒等[12]研究了環境因子對平鯛精子活力的影響；其他學者在黑鯛[13-14]、真鯛[11,15]和金鯛 (Sparus aurata)[16]等精子冷凍保存方面進行了研究。而目前關于黃鰭棘鯛精子冷凍保存的報道僅見Gwo[17]在冷凍保存稀釋液、抗凍劑、降溫程序等方面的研究。本實驗進一步對黃鰭棘鯛精子超低溫冷凍保存條件進行優化篩選，探索出適用于其精子簡便有效的超低溫冷凍保存方法，以期為該種優良種質資源的保護以及開展其他魚類精子超低溫冷凍保存提供科學參考。

1 材料與方法

1.1 實驗材料

2齡黃鰭棘鯛親魚來自于中國水產科學研究院南海水產研究所熱帶研究開發中心，體質量為300～450 g，養于海南陵水新村港。2020年12月挑選性腺發育良好的雄性親魚，采用輕輕擠壓腹部的方法收集精液。采集精子時用干毛巾擦去魚體體表水分，避免光線直射、避免血液、尿液及糞便的污染，待精液流出后用潔凈的注射器將精液收集于離心管并置于冰浴上 (4 ℃) 備用。

1.2 稀釋液的篩選

將采集的精子進行鏡檢，收集活力90%以上的精子進行后續實驗。取50 μL精子，分別加入100 μL的4種稀釋液 (表1)，立即在顯微鏡下進行觀察，并以精子原地顫動為指標檢測稀釋液是否將精子激活。隨后立即加入100 μL潔凈滅菌的海水進行激活，再次觀察，以檢測稀釋液是否對精子產生毒性以及能否有效保存精子，篩選出精子活力最高的稀釋液種類。每組實驗設6個平行，精子活力為隨機視野中被激活運動的精子占該視野全部精子的百分數。

1.3 葡萄糖濃度的篩選

使用篩選出的稀釋液，將稀釋液中葡萄糖質量濃度調整至5、10、15和20 g·L-1，并將精子與稀釋液以1∶1的比例稀釋，總體積為100 μL，每組實驗設6個平行。稀釋后立即加入100 μL潔凈滅菌的海水進行激活，在顯微鏡下觀察并記錄精子活力、運動時間和壽命。精子運動時間為其由激活開始到90%的精子原地顫動為止所經歷的時間 (s)。精子壽命為其從激活開始運動到90%的精子停止運動的時間 (s)。依據精子活力、運動時間和壽命篩選出適宜的葡萄糖濃度。

1.4 抗凍劑的篩選

選用甲醇 (MeOH)、乙二醇 (EG)、甘油 (Gly)和二甲基亞砜 (DMSO) 4種常見滲透性抗凍劑來檢測其對黃鰭棘鯛精子的冷凍保護效果。分別以4種體積分數 (5%、10%、15%和20%) 添加甲醇、乙二醇、甘油和二甲基亞砜至篩選出的稀釋液，配制成精子冷凍稀釋保護液，與新鮮精子及不添加抗凍劑的冷凍精子進行篩選比較。冷凍稀釋保護液配制完成后置于4 ℃保存備用。為篩選黃鰭棘鯛精子冷凍保存的最優抗凍劑，將精子與配制好的冷凍稀釋保護液以1∶1的比例稀釋，置于冰上平衡1～2 min使其混勻，總體積為100 μL，每組實驗設6個平行。將精子稀釋混勻液置于4 ℃冰箱中平衡30 min，后置于液氮液面上方10 cm處熏蒸5 min，最后投入液氮中保存供后續實驗使用。2 h后取出精子進行復蘇，將凍精放入37 ℃水浴中快速解凍至完全融化后，取少許精液均勻涂抹在載玻片上，滴加100 μL滅菌海水激活，利用顯微鏡觀察并記錄精子活力、測定快速運動時間和壽命，篩選出適宜冷凍精子的抗凍劑及濃度。

1.5 稀釋比例的篩選

確定最優的稀釋液和抗凍劑后，將精子與冷凍稀釋保護液分別按照1∶1、1∶2、1∶3、1∶4、1∶5、1∶7和1∶9的比例稀釋，總體積為100 μL，每組實驗設6個平行。按照1.4的方法冷凍、解凍，觀察和記錄精子活力、測定快速運動時間和壽命，篩選出適宜冷凍精子的稀釋比例。

1.6 降溫程序的篩選

使用篩選出的最優稀釋液、抗凍劑，將精子與保護液以最優的稀釋比例進行稀釋，檢測不同降溫程序對黃鰭棘鯛精子冷凍保存活力的影響。每組實驗設6個平行，將精子凍存混勻液于4 ℃冰箱平衡30 min后，置于液氮液面上方2.5、5.0、7.5和10.0 cm的4種高度熏蒸5 min，然后移至液氮中冷凍保存供后續實驗使用。按照1.4的方法解凍，觀察和記錄精子的活力、運動時間和壽命，篩選出最優的降溫程序。

1.7 數據統計分析

用Excel 2010和SPSS 26.0軟件處理分析實驗數據，以單因素方差分析法 (One-way ANOVA) 檢驗各組精子活力、運動時間和壽命的差異顯著性，再用多重比較檢驗各處理組之間的差異顯著性，P＜0.05表示差異顯著，P＜0.01表示差異極顯著，并用Origin (2019) 軟件對所得數據做柱狀圖。

2 結果

2.1 黃鰭棘鯛精子冷凍保存稀釋液的篩選

本實驗選取4種常見的稀釋液來檢測其對黃鰭棘鯛精子保存的效果，并與新鮮精子進行比較 (表2)。黃鰭棘鯛新鮮精子的平均活力為 (94.83±1.47)%，加入Hank's、MPRS、Cortland、RS 4種稀釋液后精子活力分別達到 (84.67±1.75)%、(2.00±1.41)%、(5.00±2.61)%和 (25.83±4.92)%。MPRS液和Cortland液的精子活力之間無顯著性差異 (P＞0.05)，均極顯著低于其他實驗組 (P＜0.01)。加入滅菌海水激活精子，其活力分別達到 (74.50±4.18)%、(90.17±2.79)%、(33.17±4.07)% 和 (72.50±5.01)%。MPRS液對黃鰭棘鯛精子保存的效果顯著低于新鮮精子的活力 (P＜0.01)，但顯著高于其他各組稀釋液(P＜0.01)。由上述結果得出MPRS液是適合黃鰭棘鯛精子保存的基礎稀釋液。

表2 黃鰭棘鯛新鮮精子加入4種稀釋液以及激活前后活力對比Table 2 Comparison of sperm activity before and after addition of four diluents to fresh sperm of A. latus

2.2 黃鰭棘鯛精子冷凍保存葡萄糖濃度的篩選

以MPRS液為稀釋液，將其葡萄糖質量濃度分別調整至5、10、15和20 g·L-1，加入激活液后立即使用顯微鏡觀察。隨著葡萄糖質量濃度由5 g·L-1增加至20 g·L-1，精子的活力、運動時間和壽命均呈先上升后下降的趨勢 (圖1)。其中葡萄糖質量濃度為10 g·L-1時，精子的活力、運動時間和壽命均最高，分別可達到 (83.33±3.98)%、(73.81±17.28) s和 (138.75±20.70) s，顯著高于其他葡萄糖濃度組 (P＜0.01)。

圖1 不同葡萄糖質量濃度對精子活力、運動時間和壽命的影響精子運動時間和壽命以左邊縱軸為準，精子活力以右邊縱軸為準；不同字母表示組間差異顯著 (P＜0.05)；后圖同此。Figure 1 Effects of different glucose concentration on sperm motility, sperm movement time and sperm life spanSperm movement time and sperm life are based on the left vertical axis,and sperm motility is based on the right vertical axis; different letters indicate significant difference among the groups (P＜0.05); the same case in the following figures.

2.3 黃鰭棘鯛精子冷凍保存抗凍劑的篩選

以MPRS液為黃鰭棘鯛精子冷凍保存稀釋液，分別以終體積分數為5%、10%、15%和20%加入抗凍劑甲醇、乙二醇、甘油和二甲基亞砜，超低溫冷凍保存黃鰭棘鯛精子，檢測凍精活力、運動時間及壽命來確定抗凍劑的保護效果 (圖2)。結果表明甘油對黃鰭棘鯛的精子基本無抗凍保護作用，各濃度組之間無顯著性差異 (P＞0.05，圖2-c)；甲醇組和二甲基亞砜組體積分數由5%增加到20%，精子活力、運動時間及壽命均有先上升后下降的趨勢 (圖2-a，2-d)，兩組中保存效果最好的分別是10%甲醇組和15%二甲基亞砜組，精子活力分別為 (46.00±4.97)%和 (41.25±2.99)%，精子運動時間分別為 (19.83±4.44) s和 (22.18±2.61) s，壽命分別為 (84.59±12.76) s和 (65.34±12.85) s，兩者之間無顯著性差異 (P＞0.05)；乙二醇各濃度組中隨著濃度的增高，其對黃鰭棘鯛精子抗凍保護的作用逐漸減弱，其中以5%乙二醇作為抗凍劑，冷凍精子激活后的活力、運動時間和壽命最高，分別為(89.67±3.44)%、(74.02±11.32) s和 (341.33±13.83) s，均顯著低于新鮮精子的活力 [(94.83±1.47)%]、運動時間 [(110.62±10.34) s] 和壽命 [(408.79±16.16) s](P＜0.05，圖2-b)，表明5%乙二醇對黃鰭棘鯛精子抗凍保護效果最好。

圖2 同種稀釋液、不同濃度的4種抗凍劑對精子活力的影響Figure 2 Effects of different concentrations of four kinds of cryoprotectant on sperm motility with same solution as diluent

2.4 黃鰭棘鯛精子冷凍保存稀釋比例的篩選

以MPRS液為稀釋液，以5%乙二醇為抗凍劑，不同稀釋比例下精子冷凍保存的效果見圖3。黃鰭棘鯛精子與保護液稀釋比例為1∶2時凍精激活后活力最高 [(89.67±4.63)%]，但與稀釋比例為1∶3、1∶4和1∶5時差異不顯著 (P＞0.05)，稀釋比例為1∶7和1∶9時差異不顯著 (P＞0.05)，均顯著低于稀釋比例1∶2 (P＜0.05)，活力最低的是稀釋比例1∶1。精子運動時間和壽命均以稀釋比例為1∶2時最高，分別為 (68.54±12.91) s和 (206.87±33.08) s，均顯著高于其他實驗組 (P＜0.05)，稀釋比例為1∶3、1∶4、1∶5、1∶7和1∶9時精子運動時間無顯著差異 (P＞0.05)，均顯著高于稀釋比例1∶1組 (P＜0.01)。綜合精子活力、運動時間和壽命可知，稀釋比例為1∶2時黃鰭棘鯛精子冷凍保存的效果最優。

圖3 冷凍保存中不同稀釋比例對精子活力、運動時間和壽命的影響Figure 3 Effects of different dilution ratios on sperm motility,sperm movement time and sperm life span

2.5 黃鰭棘鯛精子冷凍保存降溫程序的篩選

以MPRS液為稀釋液，葡萄糖質量濃度為10 g·L-1，以5%乙二醇為抗凍劑，以1∶2的比例稀釋精液，分別將精子凍存混勻液置于液氮液面上方不同高度進行黃鰭棘鯛精子的冷凍保存。解凍復蘇后檢測精子冷凍保存的效果 (圖4)。隨著降溫高度由2.5 cm升高至10 cm，凍精解凍后的精子活力、運動時間和壽命均呈先上升后下降趨勢，其中5.0 cm組的精子壽命為 (94.29±9.55) s，顯著高于其他高度組 (P＜0.01)，精子活力 [(85.17±3.66)%]和運動時間 [(59.16±7.70) s] 與7.5 cm組精子活力[(78.80±6.53)%] 和運動時間 [(53.12±6.87) s] 無顯著性差異 (P＞0.05)，10.0 cm組各項指標均顯著低于其他高度組。綜上，5.0 cm組對黃鰭棘鯛冷凍精子有良好的保護作用，而10.0 cm組的保護作用較弱。

圖4 冷凍保存中不同液氮液面上方高度對精子活力、運動時間和壽命的影響Figure 4 Effects of different height above liquid nitrogen surface on sperm motility, sperm movement time and sperm life span

3 討論

3.1 稀釋液對黃鰭棘鯛精子活力的影響

通常精子被排出體外后與水或非等滲溶液結合后就會被激活發生劇烈運動。而稀釋液可以為精子提供一個適宜的生存環境，并為其提供一定營養，提高精子離體后的生存時長，減輕抗凍劑對精子的毒害作用，降低精子冷凍保存中的負面影響，有效預防精子被激活。因此稀釋液應該對精子無毒或是毒性較小，防止精子被激活[18]，且組成成分應盡可能簡單[11]。目前魚類精子稀釋液尚無統一標準，應根據不同物種魚類精子的生理特性篩選出該種所適宜的稀釋液種類。目前Hank's、MPRS、Cortland和RS都是常用的精子冷凍保存稀釋液，研究發現Hank's液較適用于鱸形目魚類精子的保存，D-15稀釋液常用于草魚 (Ctenopharyngodon idella)、鯉 (Cyprinus carpio)、團頭魴 (Megalobrama amblycephala) 等鯉科魚類精子的冷凍保存中[19]。尤穎哲[10]研究表明適宜雙斑東方鲀 (Takifugu bimaculatus) 精子冷凍保存的稀釋液是MPRS液。江世貴[11]在進行黑鯛、真鯛及平鯛精子超低溫冷凍保存時發現5%葡萄糖溶液、1%氯化鈉溶液、3%檸檬酸鈉溶液都是適宜的稀釋液。精子離開魚體后環境變化、營養消耗、能量代謝等致使其存活時間縮短而死亡，稀釋液則能維持精子在體外的生理狀態，使其不受損害并延長壽命[18]。稀釋液中鈉離子 (Na+)、鉀離子 (K+) 可以較好地維持精子的滲透壓[20]；鈣離子 (Ca2+) 能引起精子聚集，使精子活力降低，對精子的活動具有抑制作用；也有研究證實葡萄糖可以增強精子活力，延長精子壽命[21]，但至今關于稀釋液還沒有一個統一的說法[22]，應根據不同魚類進展特性進行逐個實驗篩選。本實驗中加入不同稀釋液后黃鰭棘鯛精子活力差異較大，Hank's液不能較好地抑制精子的活動，保存期間精子活力有一定程度的損耗，激活后由(84.67±1.75)%降低至 (74.50±4.18)%；而加入MPRS液和激活液激活前后，精子活力由 (2.00±1.41)%升高至 (90.17±5.01)%，保存過程中精子損耗小且更易被激活，結果證實適宜黃鰭棘鯛精子超低溫冷凍保存的稀釋液為MPRS液，可獲得80%以上的凍精活力，與雙斑東方鲀的研究結果相同。由此說明MPRS液可為黃鰭棘鯛精子提供更為適宜的存活環境及營養。其他種類稀釋液得到的精子活力顯著低于MPRS液，可能是其他稀釋液未能為黃鰭棘鯛精子提供適合生存的冷凍環境，或不能稀釋抗凍劑，使精子處于一個毒性較高的環境，因此不適用于黃鰭棘鯛精子的冷凍保存。

3.2 葡萄糖濃度對黃鰭棘鯛精子活力的影響

葡萄糖可以在精子冷凍保存期間為其提供能量以維持正常的生理活動和功能，具有較低的毒性，并可以幫助精子在冷凍期間預防冰晶的形成，降低精子形成冰晶的可能性，保持精子活力、延長精子壽命[23-24]。適宜的葡萄糖濃度可以提高精子耐受冷凍損傷的能力，但過高的葡萄糖濃度則不利于精子活力的保持。冷凍保存條件下葡萄糖濃度繼續增加會使糖酵解產物過多，積累后產生較多的活性氧破壞了精子結構[25-26]，進而致使精子凋亡[24,27]。不同種魚類對葡萄糖的需求有差異，哲羅鮭 (Hucho taimen)[28]精子冷凍保存過程中30%的葡萄糖有益于提高其精子活力；江世貴[11]使用5%的葡萄糖超低溫冷凍保存真鯛精子209 d后的激活率可達80%；本實驗中，隨著葡萄糖濃度的增加，黃鰭棘鯛精子活力先升高后降低，在葡萄糖質量濃度為10 g·L-1時精子活力最高，但當葡萄糖質量濃度達到20 g·L-1時精子活力、運動時間和壽命均明顯降低。

3.3 抗凍劑的種類和濃度對黃鰭棘鯛精子活力的影響

精子超低溫保存過程中，較低的溫度可能會對精子產生冰晶損傷，破壞精子的細胞結構，使其喪失生理功能，抗凍劑則可以降低冰點進而降低冰晶對精子結構的損傷[29]，達到保護精子的目的。理論上抗凍劑濃度越高，在精子冷凍保存期間對精子的保護效果越好，但抗凍劑濃度與其對精子的毒性呈正相關[30]，濃度過高可能對精子有毒甚至致死。目前常用滲透性抗凍劑有甲醇、乙二醇、甘油、丙二醇 (PG)、乙二醇甲醚 (MG) 和二甲基亞砜等，這些抗凍劑在溶液中可自由通過細胞膜，減緩精子冷凍過程中的收縮[18]，降低超低溫冷凍保存中對精子的冰晶損傷，從而達到保護精子的目的，有效減小超低溫冷凍保存中對精子的冰晶損傷。其中甘油多被用于魚類精子的冷凍保存，并在花鱸 (Lateolabrax japonicus)、大黃魚 (L. crocea) 等精子的保存中取得較好的抗凍效果；二甲基亞砜和甲醇多用于淡水魚類精子的冷凍保存，二甲基亞砜在鯉[31]、大鱗副泥鰍 (Paramisgurnus dabryanus)[32]、光唇魚 (Acrossocheilus fasciatus)[33]等精子的保存中有較為理想的效果；使用10%甲醇作為抗凍劑冷凍保存暗色唇魚 (Semilabeo obscures)[30]、圓口銅魚 (Coreius guichenoti)[34]等魚類精子時得到較高的激活率；真鯛精子按V(精液)∶V (二甲基亞砜)∶V (葡萄糖)=10∶75∶15進行超低溫冷凍保存可獲得較高的凍精活力[35]。Gwo[17]使用10%二甲基亞砜為抗凍劑冷凍保存黃鰭棘鯛精子，冷凍30 min取出檢測后獲得約75%的凍精活力，使用10%甲醇為抗凍劑則對精子無保護作用。在本實驗中任何濃度的二甲基亞砜、甘油和甲醇對超低溫冷凍保存的黃鰭棘鯛精子均有一定的保護作用，但乙二醇實驗組中5%的終體積分數可獲得黃鰭棘鯛冷凍精子復蘇后的最佳活力，在其精子冷凍保存期間起到良好的抗凍作用。

3.4 稀釋比例對黃鰭棘鯛精子活力的影響

在魚類精子冷凍保存實驗中，精子與冷凍稀釋保護液一般以1∶1～1∶20的體積比稀釋時可以取得良好的冷凍保存效果[36]，過高或過低的稀釋比例都會降低精子活力甚至致死，因此適宜的稀釋比例能夠更好地保持精子良好的活力和穩定性，減輕高度稀釋對精子產生的不利影響。張崇英等[37]研究發現以D-17為稀釋液稀釋胭脂魚 (Myxocyprinus asiaficus) 精子時最佳的稀釋比例為1∶3，以D-20為稀釋液稀釋比例為1∶3與1∶6無顯著性差異，均有較好的保存效果。Lee等[38]研究發現較高的稀釋率與解凍后精子活力降低有關。本實驗中發現隨著稀釋率的增加，黃鰭棘鯛精子解凍后的活力、運動時間和壽命先增加后降低，這與大鱗副泥鰍[32]精子超低溫冷凍保存得到的精子活力趨勢變化一致，其中解凍精子活力在稀釋比例為1∶2時達到最高，但稀釋率過高會導致精子活力顯著降低，這與Lee等[38]研究結論一致，而與其他鯛科魚類精子超低溫冷凍保存中精液與保存液的比例1∶4～1∶9[11]有所不同，這可能是由于采取了不同的操作程序或改變了某些工作參數導致最適稀釋比有差異。

3.5 降溫程序對黃鰭棘鯛精子活力的影響

不同種魚類精子冷凍保存時所適用的降溫程序有所差異，需逐步對精子降溫，尋求適宜的降溫程序使其對低溫冷凍有一個逐步適應的過程，以獲取最好的保存效果。目前二步法、三步法和程序降溫儀降溫法常用于魚類精子的降溫，鯉形目[33]多用二步法，鰈形目[39]與鯡形目[40]多用三步法。程序降溫儀是連續降溫，具有合理的降溫梯度，但設備昂貴、操作煩瑣，實際過程中多采用簡便的二步法和三步法。Koh等[41]在七帶石斑魚 (Epinephelus septemfasciatus) 精子的冷凍保存實驗中于液氮液面上方2.5、5、7.5和10 cm處降溫至-50 ℃后投入液氮保存，各組凍精解凍后活力無顯著性差異；雙斑東方鲀[10]精子冷凍采用三步法降溫可獲得接近鮮精水平、高達83%的凍融精子活力；江世貴[11]在黑鯛精子超低溫保存中未采用降溫平衡，直接將精子浸入液氮中保存，取得了最好的保存效果；Gwo[17]在冷凍保存黃鰭棘鯛精子的實驗中，于液氮液面上方1.0、4.0、8.0 cm和置于干冰中得到的精子活力沒有差異。本實驗中黃鰭棘鯛精子直接投入液氮未獲得激活精子，使用二步法對黃鰭棘鯛精子進行降溫，經過4 ℃平衡后分別置于液面上方2.5、5.0、7.5和10 cm熏蒸5 min后，投入液氮2 h后得到了一定的凍精活力，且由結果可知5.0 cm組精子活力、運動時間和壽命顯著高于其他組，10.0 cm組為最低，可能是采取不同的稀釋液、稀釋比例以及冷凍保存時間等導致結果與Gwo[17]的研究有所差異。

4 結論

通過對黃鰭棘鯛精子稀釋液、抗凍劑、精子與保護液稀釋比例、葡萄糖濃度篩選以及降溫程序優化，確定了以含10 g·L-1葡萄糖、5%乙二醇的MPRS溶液與精子按1∶2比例稀釋，4 ℃平衡30 min，液氮面上5 cm熏蒸5 min，最后投入液氮保存的方法，可有效冷凍保存其精子，液氮冷凍2 h后可恢復 (85.17±3.66)%的黃鰭棘鯛冷凍精子活力。本實驗結果可為黃鰭棘鯛精子冷凍保存技術及其精子冷凍庫的建立提供一定的技術支持，有關黃鰭棘鯛精子冷凍保存技術還需要進一步優化完善，以獲取更高質量的精子。