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miR-1-3p抑制肝癌細(xì)胞SMMC-7721增殖、遷移并誘導(dǎo)其凋亡*

2021-11-20 09:45:44劉雨潭孔藝璇王一同蘇靜慧盧鴻健王梅梅熊亞南章廣玲
重慶醫(yī)學(xué) 2021年21期
關(guān)鍵詞:肝癌意義差異

劉雨潭,孔藝璇,王一同,蘇靜慧,盧鴻健,王梅梅,熊亞南△,章廣玲

(1.河北省慢性疾病重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室/唐山市慢性病臨床基礎(chǔ)研究重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室/華北理工大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院,河北 唐山 063000;2.華北理工大學(xué)臨床醫(yī)學(xué)院,河北 唐山 063000;3.河北省醫(yī)工融合精準(zhǔn)醫(yī)療重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,河北 唐山 063000)

肝癌是僅次于肺癌、結(jié)腸癌和胃癌的第4類癌癥相關(guān)致死原因,肝細(xì)胞癌(hepatocellular carcinoma,HCC)是最常見(jiàn)的肝癌類型,占75%~90%,患者被檢出時(shí)多數(shù)已處于晚期,因此,治療及預(yù)后效果均較差[1-3];尋找早診斷、早治療的靶點(diǎn)是目前研究的熱點(diǎn)之一。微小RNA(micro RNA,miRNA)是一組20~22堿基長(zhǎng)度的非編碼RNA分子,是轉(zhuǎn)錄后水平上基因表達(dá)的負(fù)調(diào)控因子。miRNAs異常表達(dá)常見(jiàn)于多種人類惡性腫瘤。有研究表明,miRNA在細(xì)胞凋亡和生長(zhǎng)乃至癌的轉(zhuǎn)移和侵襲過(guò)程中具有關(guān)鍵作用[4-5]。其中miR-1-3p參與了包括前列腺癌、膀胱癌、肺癌、結(jié)直腸癌等癌癥的發(fā)生、發(fā)展[6-9];但在肝癌發(fā)病過(guò)程中的作用知之甚少。本研究通過(guò)檢測(cè)miR-1-3p及其預(yù)測(cè)靶基因在肝癌細(xì)胞系SMMC-7721中的表達(dá)水平,并結(jié)合過(guò)表達(dá)和敲低表達(dá)技術(shù),探討了miR-1-3p對(duì)該腫瘤細(xì)胞系生物學(xué)行為的影響及其作用機(jī)制,現(xiàn)報(bào)道如下。

1 材料與方法

1.1 材料

質(zhì)粒pcDNA3和pcDNA3/pri-miR-1-3p均由天津醫(yī)科大學(xué)生命科學(xué)中心實(shí)驗(yàn)室湯華教授贈(zèng)予,NC inhibitor、miR-1-3p inhibitor均購(gòu)自銳博生物公司;實(shí)驗(yàn)用LO2和SMMC-7721細(xì)胞系均購(gòu)自中國(guó)科學(xué)院上海細(xì)胞庫(kù),杜氏改良Eagle培養(yǎng)基(Dulbecco′s modified Eagle medium,DMEM)、胰酶、抗青霉素和鏈霉素雙抗均購(gòu)自美國(guó)Gibco公司,實(shí)時(shí)熒光定量聚合酶鏈反應(yīng)(qRT-PCR)試劑盒、Lipofectamine 2000 Reagent、Trizol Reagent、Opti-MEM細(xì)胞培養(yǎng)基均購(gòu)自美國(guó)Invitrogen公司。

1.2 方法

1.2.1細(xì)胞轉(zhuǎn)染

收集細(xì)胞后按8×105個(gè)/孔,體積為100 μL均勻接種于6孔板。補(bǔ)充含10%血清的DMEM,5%二氧化碳、37 ℃過(guò)夜。細(xì)胞密度到達(dá)板底面積的70%~90%。按照Lipofectamine 2000說(shuō)明書(shū)分組轉(zhuǎn)染人肝癌細(xì)胞系SMMC-7721:分為轉(zhuǎn)染pcDNA3/pri-miR-1-3p質(zhì)粒(miR-1-3p組)、轉(zhuǎn)染pcDNA3空載質(zhì)粒(pcDNA3組)、轉(zhuǎn)染miR-1-3p inhibitor(miR-1 inhibitor組)及其對(duì)照(NC inhibitor組)。

1.2.2分析miR-1-3p水平和臨床信息

登錄TCGA數(shù)據(jù)門戶下載肝癌相關(guān)miRNA和臨床信息。對(duì)比miR-1-3p在正常肝組織、原發(fā)及復(fù)發(fā)性肝癌組織中的水平,并對(duì)不同分期miR-1-3p的表達(dá)進(jìn)行比較分析。采用單因素生存分析比較miR-1-3p與肝癌患者總生存率(overall survival,OS)的關(guān)系。

1.2.3qRT-PCR檢測(cè)miR-1-3p及 CAAP1 mRNA的相對(duì)表達(dá)水平

轉(zhuǎn)染48 h后TRIzol法提取總RNA,逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA。使用qRT-PCR法測(cè)定miR-1-3p和CAAP1相對(duì)表達(dá)水平。使用時(shí)將獲得的逆轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物反應(yīng)液稀釋50倍后作為模板,U6 的上下游引物和所有miRNA的下游引物由miRNA第一鏈cDNA合成試劑盒提供。miR-1-3p 上游:5′-GCC GTG GAA TGT AAA GAA GTA TG-3′,CAAP1 上游:5′-CTC CTT GCA GCA GGA AAC TA-3′,CAAP1 下游:5′-ATG ACA CAG TCA GGT CCA GT-3′。

1.2.4CCK-8實(shí)驗(yàn)檢測(cè)增殖能力

細(xì)胞按照5×103個(gè)/孔均勻接種于96孔板中,每孔100 μL,培養(yǎng)過(guò)夜。分別于轉(zhuǎn)染后0、24、48、72、96 h吸凈原培養(yǎng)液,每孔加入100 μL培養(yǎng)液和10 μL CCK-8試劑,37 ℃孵育3 h后使用酶標(biāo)儀在波長(zhǎng)450 nm處檢測(cè)每孔的吸光度值[10]。

1.2.5集落形成能力檢測(cè)

SMMC-7721轉(zhuǎn)染48 h后800個(gè)/孔接種于12孔板,5%二氧化碳、37 ℃繼續(xù)培養(yǎng)14 d,吸出每孔培養(yǎng)液,用磷酸鹽緩沖液(phosphate buffer solution,PBS) 沖洗,再用1%結(jié)晶紫進(jìn)行染色,細(xì)胞數(shù)大于或等于50可視為集落,觀察并計(jì)數(shù)[11]。

1.2.6流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)細(xì)胞凋亡

SMMC-7721轉(zhuǎn)染48 h后重懸細(xì)胞,使用Annexin V-FITC試劑盒進(jìn)行細(xì)胞凋亡檢測(cè),加入AnnexinV-FITC和PI staining solution各5 μL,輕輕混勻,室溫放置,避光作用 10 min后用儀器檢測(cè)染色細(xì)胞。

1.2.7Western blot檢測(cè)蛋白水平

SMMC-7721轉(zhuǎn)染48 h后吸棄原培養(yǎng)基,PBS沖洗3次,加入300 μL RIPA裂解液,冰浴搖30 min,14 000 r/min離心。在10%的十二烷基硫酸鈉-聚丙稀酰胺上分離且轉(zhuǎn)移到聚丙稀酰胺膜上,加入抗caspase-3(1∶200)或抗CAAP1(1∶500),4 ℃孵育過(guò)夜。用TBST洗3次,在室溫下與羊抗兔(1∶2 000)孵育2 h。1×TBST沖洗4次,每次5 min,同時(shí)配制ECL顯色液,避光。聚丙稀酰胺膜于顯影液反應(yīng)大概1 min后采用凝膠成像儀成像。采用ImageJ軟件分析條帶灰度。

1.2.8劃痕實(shí)驗(yàn)檢測(cè)遷移能力

SMMC-7721轉(zhuǎn)染48 h后消化并計(jì)數(shù),向24孔板中加入500 μL細(xì)胞懸液(8×104個(gè)),每組3個(gè)復(fù)孔,于培養(yǎng)箱24 h。用100 μL槍頭尖端進(jìn)行劃痕創(chuàng)面處理,PBS清洗3次,加入新鮮培養(yǎng)基,在倒置相差顯微鏡下觀察并拍照,培養(yǎng)24 h,用PBS洗3次,計(jì)算細(xì)胞遷移的平均距離和標(biāo)準(zhǔn)差并繪制柱狀圖。

1.2.9Transwell檢測(cè)遷移和侵襲能力

1.2.9.1遷移能力

SMMC-7721細(xì)胞分組轉(zhuǎn)染48 h后用PBS清洗2次,0.25%胰酶消化、計(jì)數(shù),按照5×104個(gè)/孔量至1.5 EP管中,離心后用 200 μL DMEM重懸細(xì)胞,移入Transwell上層小室,遷移下室加600 μL 20%血清的DMEM,于培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h,結(jié)晶紫染色,顯微鏡計(jì)數(shù)。

1.2.9.2侵襲能力

先在上層小室預(yù)鋪一層 metrigel 膠(1 mg/mL),通過(guò)細(xì)胞計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù),按照1×105個(gè)/孔的量至1.5 EP管中,離心后用 200 μL DMEM重懸細(xì)胞移入Transwell上室,加600 μL含30%血清的DMEM進(jìn)行侵襲實(shí)驗(yàn)。培養(yǎng)24 h后用棉簽輕輕擦去小室膜上方的細(xì)胞,結(jié)晶紫染色,顯微鏡計(jì)數(shù)。

1.2.10雙熒光素酶報(bào)告載體實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證CAAP1是miR-1-3p的直接靶基因

構(gòu)建雙熒光報(bào)告載體pcDNA3/EGFP-miR-1-CAAP1-3′UTR和pcDNA3/EGFP-miR-1-CAAP1-3′UTR-mut載體,與pri-miR-1-3p共轉(zhuǎn)染SMMC-7721細(xì)胞在48孔板中。轉(zhuǎn)染48 h后用RIPA裂解液裂解細(xì)胞。測(cè)定蛋白樣品中EGFP(報(bào)告分子)和RFP(內(nèi)參)表達(dá)強(qiáng)度。

1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理

2 結(jié) 果

2.1 miR-1-3p在HCC中表達(dá)與預(yù)后的關(guān)系

原發(fā)性和復(fù)發(fā)性腫瘤中miR-1-3p的表達(dá)較正常組織明顯降低,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),見(jiàn)圖1A;miR-1-3p在不同肝癌分期中的表達(dá)無(wú)顯著差異,見(jiàn)圖1B;miR-1-3p低表達(dá)水平與較短總生存期相關(guān)(P<0.05),見(jiàn)圖1C。

A:肝癌組織與正常肝組織比較;B:在不同肝癌分期組織中的表達(dá);C:miR-1-3p高表達(dá)患者與miR-1-3p低表達(dá)患者比較;*:P<0.05。

2.2 miR-1-3p在SMMC-7721細(xì)胞和LO2細(xì)胞中的表達(dá)

SMMC-7721中miR-1-3p相對(duì)表達(dá)水平明顯低于LO2,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),見(jiàn)圖2。

2.3 過(guò)表達(dá)或沉默內(nèi)源性miR-1-3p后SMMC-7721中miR-1-3p的表達(dá)

miR-1-3p組miR-1-3p表達(dá)水平較pcDNA3組明顯升高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);miR-1 inhibitor組miR-1-3p表達(dá)水平較NC inhibitor組明顯下降,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),見(jiàn)圖3。

2.4 miR-1-3p對(duì)SMMC-7721細(xì)胞增殖的影響

miR-1-3p過(guò)表達(dá)抑制了SMMC-7721細(xì)胞增殖,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),見(jiàn)圖4A;沉默miR-1-3p后促進(jìn)了細(xì)胞的增殖,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),見(jiàn)圖4B。

2.5 miR-1-3p對(duì)SMMC-7721細(xì)胞集落形成能力的影響

SMMC-7721中上調(diào)miR-1-3p組集落數(shù)明顯少于pcDNA3組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);沉默miR-1-3p后集落形成數(shù)較NC inhibitor組明顯增加,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),見(jiàn)圖5。

*:P<0.05。

*:P<0.05。

A:miR-1-3p對(duì)SMMC-7721細(xì)胞增殖的影響;B:干擾miR-1-3p對(duì)SMMC-7721細(xì)胞增殖的影響;*:P<0.05。

2.6 miR-1-3p對(duì)SMMC-7721凋亡的影響

與pcDNA3組比較,miR-1-3p組明顯增強(qiáng)了細(xì)胞凋亡,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。沉默miR-1-3p后SMMC-7721凋亡率明顯低于NC inhibitor組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),見(jiàn)圖6A;與pcDNA3組比較,miR-1-3p組cleaved caspase3蛋白水平明顯增加,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);與NC inhibitor組比較,沉默miR-1-3p后cleaved caspase3蛋白水平明顯減少,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),見(jiàn)圖6B。

*:P<0.05。

2.7 miR-1-3p對(duì)SMMC-7721遷移能力的影響

miR-1-3p組細(xì)胞遷移距離和遷移量均較pcDNA3組明顯減少,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);沉默miR-1-3p后細(xì)胞遷移距離和遷移量均較NC inhibitor組明顯增多,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),見(jiàn)圖7。

2.8 miR-1-3p對(duì)SMMC-7721細(xì)胞侵襲能力的影響

miR-1-3p組SMMC-7721侵襲量較pcDNA3組明顯減少,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);沉默miR-1-3p后細(xì)胞侵襲量較NC inhibitor組明顯增多,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),見(jiàn)圖8。

2.9 miR-1-3p對(duì)CAAP1靶向作用

利用miRDB、TargetScan、miRanda數(shù)據(jù)庫(kù)預(yù)測(cè)miR-1-3p與CAAP1-3′UTR上存在高度保守的互補(bǔ)序列,見(jiàn)圖9A;miR-1-3p與CAAP1-3′UTR-EGFP共轉(zhuǎn)染組EGFP/RPF熒光強(qiáng)度比值明顯減少,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),見(jiàn)圖9B;當(dāng)CAAP1的3′UTR與miR-1-3p結(jié)合區(qū)域突變后過(guò)表達(dá)miR-1-3p不能影響EGFP/RPF熒光強(qiáng)度。上調(diào)miR-1-3p可明顯降低CAAP1 mRNA和蛋白表達(dá);相反下調(diào)miR-1-3p表達(dá)可提高SMMC-7721細(xì)胞中CAAP1 mRNA和蛋白相對(duì)表達(dá)水平,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),見(jiàn)圖9C、D。

A:流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè);B:Western blot檢測(cè);*:P<0.05。

A:劃痕實(shí)驗(yàn);B:Transwell實(shí)驗(yàn);*:P<0.05。

*:P<0.05。

A:序列比對(duì);B:熒光素酶報(bào)告;C:RT-qPCR檢測(cè);D:Western blot檢測(cè);*:P<0.05。

3 討 論

miRNA過(guò)度表達(dá)或下調(diào)導(dǎo)致蛋白質(zhì)表達(dá)失調(diào),從而通過(guò)調(diào)節(jié)細(xì)胞增殖、血管生成和侵襲而導(dǎo)致腫瘤的發(fā)生[12]。miRNAs在許多腫瘤發(fā)生、發(fā)展過(guò)程中均被下調(diào),包括肝癌[13]。基于miRNA的肝癌發(fā)生、發(fā)展機(jī)制及治療靶點(diǎn)研究將會(huì)對(duì)肝癌的預(yù)防、診治具有重大意義。以往研究證實(shí),miR-1-3p在多種癌癥組織中呈現(xiàn)低表達(dá),通過(guò)人為干預(yù)致其過(guò)表達(dá)可抑制多種癌細(xì)胞的增殖和遷移[6-9]。然而,在肝癌細(xì)胞增殖、遷移乃至侵襲過(guò)程中miR-1-3p及其下游靶基因的作用有待于深入研究。

本研究中首先通過(guò)對(duì)TCGA數(shù)據(jù)庫(kù)肝癌相關(guān)臨床數(shù)據(jù)進(jìn)行初步統(tǒng)計(jì)和分析,結(jié)果顯示,與正常對(duì)照組比較,miR-1-3p在HCC患者中表達(dá)下調(diào),且HCC患者miR-1-3p低表達(dá)預(yù)示生存率降低,意味著miR-1-3p在HCC的發(fā)生、發(fā)展中可能具有關(guān)鍵作用。在此基礎(chǔ)上本研究進(jìn)一步通過(guò)體外培養(yǎng)肝癌細(xì)胞系SMMC-7721并給予miR-1-3p干預(yù),結(jié)果顯示,miR-1-3p不僅抑制肝癌細(xì)胞SMMC-7721的增殖乃至集落的形成,對(duì)其遷移、侵襲能力也表現(xiàn)出一定的拮抗作用,同時(shí)促進(jìn)了該細(xì)胞的凋亡。為進(jìn)一步探索miR-1-3p對(duì)上述生物學(xué)功能的具體機(jī)制,尤其是關(guān)鍵靶向基因,本研究利用miRDB、TargetScan、miRanda數(shù)據(jù)庫(kù)篩選并推測(cè)miR-1-3p潛在靶向調(diào)控基因之一為CAAP1。CAAP1 mRNA和蛋白質(zhì)水平上不同程度表達(dá)于人類來(lái)源的每個(gè)正常(成人和胎兒)和癌癥組織中,并表現(xiàn)出具有幾個(gè)良好保守結(jié)構(gòu)域的進(jìn)化保留結(jié)構(gòu)。具體而言,通過(guò)生物信息學(xué)分析預(yù)測(cè)CAAP1的中心區(qū)域與意味著在凋亡信號(hào)傳導(dǎo)中起作用的死亡效應(yīng)域共享結(jié)構(gòu)相似性。其作用需要相互依賴的caspase激活網(wǎng)絡(luò)。在A-549、MCF-7/casp3-10b細(xì)胞系中抑制CAAP表達(dá)可誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡[14]。在Sézary綜合征檢測(cè)到CAAP1表達(dá)水平的變化。不同研究表明,CAAP1在不同疾病中表現(xiàn)出致癌基因的作用[15]。本研究雙熒光報(bào)告載體實(shí)驗(yàn)雙熒光素酶報(bào)告載體實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,miR-1-3p直接與CAAP1的3′-UTR結(jié)合,證實(shí)miR-1-3p與CAAP1的靶向關(guān)系。qRT-PCR和Western blot實(shí)驗(yàn)證實(shí),miR-1-3p在mRNA乃至蛋白表達(dá)水平上負(fù)調(diào)控CAAP1表達(dá)。

綜上所述,本研究在證實(shí)了miR-1-3p對(duì)肝癌細(xì)胞SMMC-7721 的增殖、遷移和侵襲的明顯抑制作用基礎(chǔ)上發(fā)現(xiàn)其作用機(jī)制可能是通過(guò)負(fù)調(diào)控CAAP1的表達(dá)抑制肝癌細(xì)胞的上述惡性生物學(xué)行為。提示miR-1-3p可能成為HCC新的治療靶點(diǎn),為HCC臨床靶向治療提供了理論和實(shí)驗(yàn)依據(jù)。

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