張 圓,孫玉娣,石蓓佳,陸益紅*
1 江蘇省食品藥品監督檢驗研究院 生物技術藥品檢驗一室,南京 210019;2 中國藥科大學 藥學院,南京 210009
云芝胞內糖肽是運用現代生物工程技術,從雜色云芝菌(Polystictus versicolor(L).Fr.)經深層培養,由菌體提取獲得的糖肽類物質[1]。
核堿(Nucleobase)是指一類含氮堿基,是在DNA 和RNA 中起配對作用的部分,包括嘌呤堿和嘧啶堿。核苷(Nucleoside)是核堿與核糖或脫氧核糖縮合而成,是核酸和核苷酸的主要組成成分,參與RNA和DNA 組成。核苷和核堿的組成對于評價真菌類藥材及其提取物具有重要的意義。核苷和核堿類成分是生物細胞的基本組成元素,參與DNA 代謝過程、維持生命活動,具有抗腫瘤、抗病毒、基因治療等生理作用[2]。研究核苷和核堿組成對云芝胞內糖肽質量控制有著積極作用。本文采用HPLC-UV 法,對云芝胞內糖肽中核苷和核堿組成和含量進行了測定[3]。
儀器:島津LC20AD-UV 檢測器。
對照品:11 種核苷和核堿對照品,見表1。

表1 11 種核苷和核堿對照品信息表
樣品:云芝胞內糖肽對照品(批號140692-200301,中國食品藥品檢定研究院);云芝胞內糖肽原料:A 公司(批號S-30200601),B 公司(批號20200101);C 公司云芝胞內糖肽膠囊(批號190203,含量0.5 g);云芝胞內糖肽膠囊、云芝胞內糖肽片樣品共計54 批(含量0.5 g 原料均來自B 公司,制劑處方中無輔料或輔料無干擾)。B 公司提供菌絲體水提醇沉產物(產物1)和培養液濾液醇沉產物(產物2)。A 公司提供的原料中僅含有菌絲體水提醇沉產物。
化學計量學軟件:ChemPattern 2020 版,科邁恩(北京)科技有限公司。
2.1 色譜條件色譜柱:月旭AQ-C18(4.6 mm×250 mm,5 μm);流動相A 為水,流動相B 為甲醇,按表2 進行梯度洗脫;檢測波長:260 nm;柱溫:30 ℃;流速:1 mL·min-1;進樣體積:20 μL。

表2 流動相梯度洗脫程序
系統適用性:在對照品溶液(1 μg·mL-1濃度)的色譜圖中,理論板數按腺嘌呤峰計算不低于2000,各核苷和核堿色譜峰之間的分離度應>1.5。
2.2 溶液的制備
2.2.1 對照品溶液 精密稱取表1 中11 種核苷和核堿對照品適量,加水溶解并稀釋成每1ml 中各含1、2、5、10、20、50、100 μg 的系列混合對照品溶液。
2.2.2 供試品溶液 取云芝胞內糖肽膠囊內容物、云芝胞內糖肽片研細,精密稱取200 mg,置20 mL量瓶中,加水15 mL,超聲振蕩30 min,冷卻至室溫后用水稀釋至刻度,5000 r·min-1離心10 min,取上清液,用0.22 μm 濾膜過濾,即得。
2.3 含量測定
精密量取對照品溶液、供試品溶液各20 μL,注入高效液相色譜儀,記錄色譜圖,以標準曲線法計算出各樣品中核苷和核堿的含量。
2.4 方法學驗證
2.4.1 線性范圍 取11 種混合對照品溶液,用水稀釋,配制成含11 種核苷和核堿各1、2、5、10、20、50、100 μg·mL-1的標準曲線溶液,以峰面積(Y)對濃度(X)進行線性回歸,得各組成分在1~100 μg·mL-1范圍的回歸方程和相關系數(r>0.9940)。表明各組分線性關系良好。測定結果見表3;分離圖譜見圖1。

表3 11 種核苷和核堿的分析方法驗證結果(n=6)

圖1 混合對照品核苷和核堿的HPLC 色譜圖
2.4.2 進樣精密度試驗 取同一濃度混合對照品溶液,連續進樣6 次,計算峰面積相對標準偏差RSD%,計算各峰峰面積的RSD%(n=6)。精密度考察結果顯示,各峰峰面積的RSD 均<1.0%,精密度良好。結果見表3。
2.4.3 重復性試驗 取同一批樣品6 份,按“2.2.2”供試品溶液的制備方法,從“加水15 mL 起”同法處理,測定重復性。各峰峰面積的RSD 均<3.0%。結果見表3。
2.4.4 加樣回收率試驗 取同一批已知含量的樣品6 份,精密稱取200 mg 置20 mL 量瓶中,分別加入含各核苷和核堿100 μg·mL-1的對照品溶液1 mL,按“2.2.2”供試品溶液的制備方法,從“加水15 mL 起”同法處理,測定其峰面積,按標準曲線法計算加樣回收率%和RSD%。各成分回收率分別在81.4%~98.7%。結果見表3。
2.4.5 穩定性試驗 取對照品溶液和供試品溶液,分別于0、4、8、12、16、24 h 進樣,各峰峰面積的RSD均<0.5%,對照品溶液和供試品溶液在24 h 內穩定。
2.5 各樣品核苷和核堿總量見表4。

表4 核苷和核堿組成和含量結果(%,云芝胞內糖肽含量)
2.6 檢品成分說明
2.6.1 在B 公司原料及54 批云芝胞內糖肽膠囊/片中含有較多的尿嘧啶、尿苷、腺嘌呤、鳥苷、腺苷及少量胞嘧啶、尿嘧啶、次黃嘌呤等。B 公司原料(批號20200101)和C 公司云芝胞內糖肽制劑(批號190203)的HPLC 圖分別見圖2 和圖3。

圖2 B 公司原料(批號20200101)核苷和核堿的HPLC 色譜圖

圖3 C 公司云芝胞內糖肽膠囊(批號190203)(原料由B 公司提供)核苷和核堿的HPLC 色譜圖
2.6.2 A 公司來源的原料和中檢院對照品含有較多的尿苷、鳥苷和腺苷,為優勢代謝成分及少量胞嘧啶、尿嘧啶、次黃嘌呤等,中檢院對照品核苷和核堿總量約為B 公司來源的原料的兩倍,種類和含量均有明顯區別,見圖4、圖5。

圖4 云芝胞內糖肽對照品(中檢院,140692-200301)核苷和核堿的HPLC 色譜圖

圖5 A 公司原料(S-30200601)核苷和核堿的HPLC 色譜圖
2.6.3 菌絲體(產物1)中的核苷種類與B 公司原料一致(見圖6)。B 公司的培養液(產物2)中未檢出核苷,與細胞外無生命活動有關(見圖7)。

圖6 產物1 核苷和核堿的HPLC 色譜圖

圖7 產物2 核苷和核堿的HPLC 色譜圖
2.6.4 多元統計分析技術-主成分分析法區分不同生產工藝樣品 采用ChemPattern 2020 版軟件[4]的多元統計分析技術-主成分分析法,以9 批B 公司膠囊樣本中各核苷和核堿的含量建立共有模式,對樣本間的相關性和主成分貢獻率進行分析。
各樣本多元統計分析獲得的主成分分析聚類得分圖和載荷圖(PCA 圖)見圖8。2D PCA 圖顯示:其他廠家共45 批膠囊/片樣本游離糖組成與自建的共有模式同群,產物1、中檢院對照品、A 公司原料、產物2 與自建的共有模式離群。

圖8 核苷和核堿組成測定主成分分析聚類得分圖和載荷圖(PCA 圖)
結合載荷圖可知,尿苷、腺苷為樣本識別的主要因素;其次為鳥苷、次黃嘌呤。產物2 因不含核苷成分而離群,中檢院對照品、A 公司原料因鳥苷、腺苷等含量高而離群,產物1 因次黃嘌呤、尿苷含量較高而離群。
綜合聚類得分圖和載荷圖的結果,不同原料來源的聚類區分,可在核苷和核堿的含量差異、比例差異上得到體現:如A 公司來源的對照品和原料含有較多的鳥苷和腺苷,產物1(菌絲體成分)含有較多的尿苷、次黃嘌呤、腺嘌呤、尿嘧啶、鳥苷和腺苷。產物2(培養基成分)不含核苷成分,如將其與產物1 混合作為原料,可能導致藥效的下降。
3.1 考察了不同色譜柱的耐用性,如月旭AQ-C18柱(4.6 mm×250 mm,5 μm),Luna-C18柱(4.6 mm×250 mm,5 μm),Waters Xbridge C18柱(4.6 mm×250 mm,5 μm),結果各色譜峰分離度均良好。
3.2 對提取溶劑、提取方式、超聲時間等進行了考察。結果表明,以水為溶劑,超聲提取30 min 時,核苷和核堿提取效率較高,且含量較為穩定。
3.3 對新建立的核苷和核堿檢測方法進行了方法學驗證,線性關系良好,相關系數均>0.9940,11 種成分的線性均在1~100 μg·mL-1,儀器精密度良好(RSD<2%)、樣品回收率在81.4%~98.7%,均能滿足云芝胞內糖肽中測定核苷和核堿成分的要求。該方法前處理簡單,檢測方法靈敏,結果準確。