丁簫月,馮建軍,辛甜甜,郭松林,王藝磊,林 鵬
(集美大學水產學院,鰻鱺現代產業技術教育部工程研究中心,農業部東海海水健康養殖重點實驗室,福建廈門 361021)
嗜水氣單胞菌(Aeromonashydrophila)可引發人類和哺乳動物敗血癥等疾病[1,2],日本鰻鱺敗血腹水病、體表潰瘍病和腸炎病均與嗜水氣單胞菌感染有關[3,4],因此,建立嗜水氣單胞菌檢測技術可有效預防和控制病害發生,減小病害造成的損失。酶聯免疫吸附法(ELISA)[5]和熒光免疫抗體法[6]檢測嗜水氣單胞菌已有報道,但ELISA法如果沒有生物素-鏈霉親和素的信號放大作用,其檢測限只有4.0×105CFU/mL,而熒光抗體法只是采用熒光顯微鏡半定量觀察,靈敏度更低。時間分辨熒光免疫檢測(Time -Resolved Fluorimmunoassay,TRFIA)以稀土螯合物作為標記物,而稀土螯合物的熒光壽命較長,免疫反應后,延緩測量時間,待短壽命的背景熒光完全衰變后再測量螯合物的熒光[7,8],靈敏度比ELISA法和熒光抗體法高約兩個數量級。我們曾應用解離增強TRFIA法檢測水產養殖病原菌[9],但該方法是用本身沒有熒光的標記物標記抗體。標記物本身即是熒光團,反應后不需要解離顯色的稀土螯合物探針已見諸于報道[10,11],但另一種熒光標記物更具有優勢,即熒光納米粒子[12,13]。用于TRFIA的標記粒子是納米級的聚苯乙烯微粒共價包埋多個稀土螯合物分子[14],由于納米粒子表面修飾有羧基、氨基等功能性基團,可以用來偶聯蛋白抗體進行標記。用稀土螯合物納米粒子作為標記物已在TRFIA檢測中得到應用[15,16],主要用于可溶性小分子物質,但用于顆粒性的病原菌檢測尚未見報道。
在本文中,我們將銪螯合物納米粒子標記在嗜水氣單胞菌抗體上,采用雙抗夾心TRFIA法,建立了一種檢測嗜水氣單胞菌的新方法。結果證明納米粒子標記的TRFIA法同樣可用于顆粒性病原菌檢測。該方法線性范圍寬,檢測限為1.0×103CFU/mL,遠高于ELISA法及熒光抗體法。
Perkins-Elmer Victor X4多標記分析儀(美國,Perkins-Elmer公司);GE Healthcare SPA親和層析柱(美國,GE Healthcare公司)。
羧基修飾的銪螯合物熒光納米粒子(Fluoro-Max)購自美國Thermo fisher scientific公司;1-(3-二甲氨基丙基)-3-乙基碳二亞胺鹽酸鹽(EDC)、N-羥基丁二酰亞胺(Sulfo-NHS)、2-(N-嗎啡啉)乙磺酸(MES)購自美國Pierce公司,其他相關試劑均為國產分析純。菌株B15獲得于病變的日本鰻鱺,并經Biolog自動生化鑒定系統(GeneⅢ)鑒定為嗜水氣單胞菌;實驗用鰻鱺購自福建莆田養殖場;兔抗嗜水氣單胞菌抗體(IgG)據文獻方法[17]制得,其效價為1∶25 600。
1.2.1 IgG的納米粒子標記參照納米粒子標記說明書以及文獻報道[18],向離心管中加入20 μL納米粒子和180 μL MES緩沖液(pH=6.0,0.05 mol/L),混合均勻后加入4 μL EDC溶液(0.1 mol/L),迅速加入10 μL Sulfo-NHS溶液(0.05 mol/L),室溫反應15 min,加入0.28 μL巰基乙醇,室溫反應10 min。4 ℃ 離心35 min(15 000 r/min),去除上清液,加入200 μL 磷酸鹽緩沖液(pH=7.5,0.1 mol/L)溶解的IgG抗體,反應2 h后離心去除上清液。加入20%BSA封閉液200 μL,離心去上清后,用200 μL含有SDS的去離子水洗滌標記納米粒子三次,最后復溶于200 μL 0.05 mol/L MES緩沖液,得納米粒子-IgG溶液,4 ℃保存備用。標記效果亦根據文獻方法[18]驗證,效果良好。
1.2.2 菌株B15的納米粒子TRFIA法檢測用0.05 mol/L,pH=9.6的碳酸鹽緩沖溶液稀釋IgG,每孔加入100 μL稀釋后的IgG到96孔微孔板中,包被12 h,包被溫度37 ℃,用0.05 mol/L Tris-HCl洗滌液(pH=7.8)洗滌3次,加入3%BSA 200 μL封閉2 h,封閉溫度37 ℃,洗滌液洗滌3次,加入分析緩沖液稀釋的不同濃度嗜水氣單胞菌B15菌懸液100 μL,振動孵育1 h,孵育溫度37 ℃,洗滌液洗滌3次后,加入工作濃度的納米粒子-IgG溶液,振動孵育后再用洗滌液沖洗6次,多標記分析儀上測量時間分辨熒光(TRF),測量參數設置如下:激發波長340 nm,發射波長615 nm,延遲時間0.4 ms,測量時間0.4 ms。樣品孔的TRF值設為P,對照孔的TRF值設為N,P/N>2時判斷為陽性,其中對照孔以分析緩沖溶液代替B15菌株。
以P/N值為指標,抗體包被時間(A)、抗體包被濃度(B)、納米粒子-IgG的免疫反應時間(C)、納米粒子-IgG稀釋度(D)為4個因素,選擇3個水平進行L9(34)正交試驗,因素水平列于表1。

表1 正交試驗設計
正交試驗結果如表2所示,K1、K2和K3表示每個因素在三個水平下對應P/N值的和,k1、k2和k3則代表

表2 試驗方案和結果

(續表2)
三個水平所對應P/N值的平均值,R為極差,即該因素k值的極大值與極小值之差,k值越大,表示該水平的P/N值越大,水平越優,R值越大,表示該因素對P/N值的影響越大。因此,根據表2極差分析結果可知,因素A影響結果最大,D次之,因素B和C的影響結果相對較小,四個因素的影響程度依次為抗體包被時間>納米粒子-IgG稀釋度>納米粒子-IgG的免疫時間>抗體包被濃度。由k值可以得出最優組合為A2B1C2D2,即12 h抗體包被時間,0.5 μg/mL抗體包被濃度,3 h免疫時間為和1∶4 000 的納米粒子-IgG稀釋度。

圖1 正交試驗的結果驗證Fig.1 Verification of orthogonal experimental results
正交試驗得出的最優組合為A2B1C2D2,但是該組合并未出現在所做9次的正交試驗設計中,為了驗證結果的準確性,在正交試驗設計的9次組合基礎上,加上該組合,一起重新進行基于納米粒子標記的TFRIA法檢測菌株B15,結果示于圖1。第10組的組合為A2B1C2D2,其P/N值最大,正交試驗確實對結果的優化具有一定的指導意義,并且可以降低篩選成本,提高篩選效率。
一般鑭系元素螯合物的熒光衰變時間約為0.9 ms,其它熒光團的衰變時間為1~100 μs,生物樣品中背景熒光的衰變時間只有1~10 μs[19]。為此我們考察了延遲時間在0.1~0.6 ms的TRF,發現延遲時間在0.2~0.4 ms時,TRF值最大且基本不變,因此選擇延遲時間為0.4 ms。延遲時間過短,會導致干擾熒光進入檢測器影響測定,延遲時間過長,由于鑭系元素螯合物熒光也會衰變,導致TRF減小。
固定嗜水氣單胞菌濃度,采用正交試驗篩選的最優條件,隨機在同一微孔板上進行納米粒子TRFIA測定,計算平均值與標準偏差(板內變異系數=板內標準偏差/平均值×100%)。同理,在6塊微孔板上進行納米粒子TRFIA測定,計算板間變異系數[20]。得出菌株B15檢測的板內變異系數為2.70%,板間變異系數為9.62%。說明該方法穩定性好,重現性高。
我們采用嗜水氣單胞菌菌株B15的抗體與其它14種病原菌菌株(包含不同血清型的嗜水氣單胞菌菌株),進行基于銪螯合物納米粒子標記的TRFIA檢測,并同時進行菌株B15的檢測,結果見表3。嗜水氣單胞菌抗體與菌株B15有較強的陽性反應,其P/N為22.95,而與其它致病菌菌株無交叉反應,檢測結果為陰性,說明抗體特異性良好,其它菌株并不干擾B15的檢測。
利用建立的納米粒子標記TRFIA法檢測不同濃度菌株B15,其TRF值隨致病菌濃度的增高而增大。分別以時間分辨熒光的對數值lgTRF為縱坐標、細菌濃度的對數值lgCFU為橫坐標,繪制標準曲線,線性范圍1.0×103~1.0×108CFU/mL,相關系數R2=0.990,以P/N>2時所對應的最小濃度為檢測限,其檢測限為1.0×103CFU/mL,遠高于ELISA[5]及法熒光抗體法[6],相較于已經報道的解離增強TRFIA法檢測病原菌[9],由于標記物為熒光納米顆粒,靈敏度也提高了5倍。

表3 納米粒子TRFIA測定嗜水氣單胞菌抗體的交叉反應
以腹腔注射嗜水氣單胞菌的日本鰻鱺組織樣品作為實驗組,腹腔注射生理鹽水的鰻鱺組織樣品作為對照組,建立了雙抗夾心納米粒子TRFIA法檢測嗜水氣單胞菌,以實驗組的TRF值與對照組的TRF值比值大于2(即P/N>2)時判斷為陽性。針對25個包括肝、鰓、腎、腸、肌組織在內的樣品進行了測定,結果見圖2,樣品均呈陽性,檢出率達100%,高于ELISA法(圖3,84%)。

圖2 鰻鱺樣品納米粒子TRFIA法檢測結果(1~5分別代表五條感染后的鰻鱺)Fig.2 The results of detection of A.japonica samples using nanoparticle-TRFIA(Number 1-5 represent the five infected A.japonica)

圖3 鰻鱺ELISA法樣品檢測結果(1~5分別代表五條感染后的鰻鱺)Fig.3 The results of detection of A.japonica samples using ELISA(Number 1-5 represent the five infected A.japonica)
建立了基于銪螯合物納米粒子標記的TRFIA新方法檢測嗜水氣單胞菌,方法的檢出限提高到1.0×103CFU/mL,高于ELISA法和熒光抗體法,相較于解離增強TRFIA法,靈敏度也得到了進一步提高。檢測了25份人工感染的日本鰻鱺樣品,包括鰓、腎、腸、肝和肌肉組織,結果滿意。納米粒子標記TRTIA法檢測病原菌,在水產養殖病害防治領域有著廣闊的應用前景。