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GDF-15對糖尿病小鼠肝損傷保護作用的實驗研究

2021-03-03 14:31:46張泓嬌王小梅王雅光田鶴穆長征
錦州醫科大學學報 2021年6期
關鍵詞:小鼠血糖血清

張泓嬌,王小梅,王雅光,田鶴,穆長征

(1.錦州醫科大學組織學與胚胎學教研室;2.錦州醫科大學附屬第一醫院;3.錦州醫科大學研究生學院,遼寧 錦州 121000)

糖尿病嚴重危害著人們的健康,其中2型糖尿病(type 2 diabete,T2DM)患者居多[1]。肝損傷是糖尿病并發癥之一[2]。T2DM患者由于高血糖癥出現,導致蛋白功能喪失,進而使肝臟氧化損傷。轉氨酶升高是肝臟損傷的判斷指標之一,肝臟中最常見的轉氨酶是丙氨酸轉移酶(alanine transferase,ALT)和天冬氨酸氨基轉移酶(aspartate aminotransferase,AST);已糖激酶(hexokinase,HK)和丙酮酸激酶(pyruvate kinase,PK)是調控糖酵解的酶,糖酵解是維持血糖穩定的重要因素,HK、PK升高會導致血糖升高,血糖升高會使炎癥標志物升高,最終使活性氧(ROS)升高。丙二醛(malondialdehyde,MDA)作為氧化物的代表,可損傷肝細胞膜以及線粒體膜,從而損傷肝細胞。肝細胞損傷后,有大量的細胞因子產生,如腫瘤壞死因子(tumor necrosis factor,TNF)-α、白細胞介素(interleukin,IL)等。

生長分化因子-15[3](growth differentiation factor-15,GDF-15)是一種氧化應激蛋白。在正常狀況下,GDF-15大量表達在胎盤及前列腺等少數的組織。在腫瘤、炎癥、心血管疾病以及外傷等各種應激狀態下,GDF-15會大量表達[4]。目前,有實驗證明它是肝臟損傷的新型標志物,并且通過免疫抑制、抗凋亡、抗炎和促進氧化代謝等方面對肝臟起到保護作用[5]。臨床研究報道血清中GDF-15水平可作為一個有效的生物標志物,用于評估肝臟纖維化和慢性肝病的嚴重程度[6]。本文將通過炎癥因子的檢測等方法進一步探討GDF-15可能對糖尿病誘導的肝損傷的保護作用。

1 資料與方法

1.1 模型建立及分組

C57BL/6J雄性小鼠(4~8周齡)60只(錦州醫科大學實驗動物中心提供),體重18~22 g,適應性飼養1 w,隨機選取10只作為正常對照組,其余50只小鼠高脂飲食喂養2 w,腹腔注射STZ按(40 mg/kg體重),每天監測血糖,當小鼠空腹血糖達到(≥12 mmol/L)時,為造模成功[7]。按體重選取狀態較好的小鼠30只隨機分為3組,繼續高脂飲食喂養30 d,具體分組及處理方法,見表1。

表1 動物分組及處理因素

1.2 取材及標本制備

小鼠眼眶取血,EP管收集血液,4 ℃冰箱靜止2 h,低溫離心取上清,-80 ℃冰箱保存備用。取血后小鼠灌流,立即取出肝組織,一部分稱重-80 ℃冰箱保存備用;另一部分修剪成1 cm3小塊,多聚甲醛固定,石蠟包埋、切片,用于HE和免疫組織化學染色。

1.3 血糖和體重監測

每天監測小鼠空腹血糖和體重并做記錄,取體重和血糖變化最大的幾天(第1、3、7、14、30天)作為血糖和體重變化依據。

1.4 血清中ALT和AST含量的測定

取-80 ℃冰箱保存備用的血清,按照試劑盒說明書進行ALT和AST水平的測定。

1.5 肝組織中TG、TC、SOD、MDA、HK及PK的測定

取各組小鼠凍存的肝組織40 mg,按肝組織重量(g)∶體積(mL)=1∶9的比例加入360 mL的生理鹽水,制成勻漿,4 ℃離心10 min,取上清即為10%的肝勻漿液,將其分成兩份,一份用于檢測TG、TC、SOD、MDA值;另一份用生理鹽水1∶9比例稀釋成1%肝組織勻漿液,測定HK、PK酶的活力,卡馬斯亮藍試劑盒測定蛋白濃度。

1.6 ELISA檢測血清和肝組織中TNF-α、IL-1β和IL-6含量

取-80 ℃冰箱保存備用的血清和凍存的肝組織,ELISA檢測血清和肝組織中TNF-α、IL-1β和IL-6含量,具體檢測方法按試劑說明書操作。

1.7 HE染色觀察肝組織形態學改變

石蠟切片二甲苯脫臘,梯度酒精浸水,蘇木素伊紅染色,脫水,中性樹膠封片,光鏡下觀察肝細胞形態改變并攝像。

1.8 免疫組化檢測肝組織中TNF-α、IL-1β和IL-6蛋白表達

采用二步法 DAB 顯色檢測。操作步驟按試劑盒說明書進行,其中一抗稀釋度為1∶200,以已知陽性片作為陽性對照,以磷酸鹽緩沖液(PBS)代替一抗作為陰性對照。

1.9 Western Blot方法檢測肝組織中TNF-α、IL-1β和IL-6蛋白表達

取凍存的肝組織,組織裂解,BCA法測定蛋白濃度,制膠,上樣,電泳,轉膜,封閉后加一抗,4 ℃孵育過夜,充分洗膜后,室溫下二抗孵育 1 h,使用凝膠成像系統進行拍照,并用 Image J軟件進行分析,結果以目的蛋白與β-actin相對表達量表示。

1.10 統計學方法

用SPSS 20.0統計軟件包對實驗數據進行描述性統計分析、方差分析等統計學處理,以P<0.05為差異有統計學意義。

2 結 果

2.1 各組小鼠體重檢測結果

各組小鼠體重檢測結果:正常組小鼠體重隨飼養時間增加;與正常組比較,模型組和PBS組小鼠體重隨時間明顯下降,差異有統計學意義(P<0.01);與模型組比較,GDF-15組小鼠體重隨時間增加明顯上升,差異有統計學意義(P<0.01),見表2。

2.2 各組小鼠血糖檢測結果

各組小鼠血糖檢測結果:正常組小鼠血糖趨于穩定狀態;與正常組比較,模型組和PBS組小鼠血糖隨時間明顯上升,差異有統計學意義(P<0.01);與模型組比較,GDF-15組小鼠血糖隨時間增加明顯下降,差異有統計學意義(P<0.01),見表3。

表2 各組小鼠體重的變化

表3 各組小鼠血糖的變化

2.3 各組小鼠血清中ALT和AST檢測結果

各組小鼠血清中ALT和AST檢測結果:與正常組比較,模型組和PBS組小鼠血清中ALT和AST明顯增加,差異有統計學意義(P<0.01);與模型組比較,GDF-15組小鼠血清中ALT和AST明顯下降,差異有統計學意義(P<0.01),見表4。

表4 各組小鼠血清中ALT和AST的變化

2.4 各組小鼠肝組織中TG、TC、SOD、MDA、HK及PK檢測結果

各組小鼠肝組織中TG、TC、SOD、MDA、HK及PK檢測結果:與正常組比較,模型組和PBS組小鼠肝組織中TG、TC、MDA明顯增加,SOD、HK、PK明顯降低,差異有統計學意義(P<0.01);與模型組比較,GDF-15組小鼠肝組織中TG、TC、MDA明顯降低,SOD、HK、PK明顯增加,差異有統計學意義(P<0.01),見表5。

2.5 各組小鼠HE染色結果

各組小鼠HE染色結果見圖1。正常組肝細胞排列整齊,結構清晰,無病理改變;模型組和PBS組小鼠肝細胞出現大量脂肪空泡,提示糖尿病小鼠肝細胞中脂肪沉積;GDF-15組肝細胞中脂肪空泡明顯減少。

2.6 各組小鼠血清和肝組織中TNF-α、IL-1β和IL-6檢測結果

各組小鼠肝組織與血清中促炎因子(TNF-α、IL-1β、IL-6)檢測結果:與正常組比較,模型組和PBS組小鼠肝組織與血清中TNF-α、IL-1β、IL-6明顯增加,差異有統計學意義(P<0.01);與模型組比較,GDF-15組小鼠肝組織與血清中TNF-α、IL-1β、IL-6明顯下降,差異有統計學意義(P<0.01),見表6~7。

2.7 各組小鼠免疫組化染色結果

各組小鼠免疫組化染色結果見圖2~4。正常組TNF-α、IL-1β、IL-6在肝血竇低表達;模型組和PBS組TNF-α、IL-1β、IL-6在肝細胞胞質高表達;GDF-15組TNF-α在肝血竇低表達,肝細胞胞質中未見明顯表達,IL-1β、IL-6在肝細胞胞質低表達。

表5 各組小鼠肝組織中TG、TC、MDA、SOD、HK、PK的變化

A代表正常組:肝細胞結構清晰正常;B代表模型組:肝細胞內見大量脂肪空泡;C代表PBS組:肝細胞內見較多脂肪空泡;D代表GDF-15組:肝細胞內見極少量脂肪空泡

表6 各組小鼠肝組織中促炎因子的變化

表7 各組小鼠血清中促炎因子的變化

A代表正常組,TNF-α在肝血竇中低表達;B代表模型組,TNF-α在肝細胞胞質內大量表達;C代表PBS組,TNF-α在肝細胞胞質內高表達;D代表GDF-15組,TNF-α在肝血竇中少量表達

A代表正常組,IL-6在肝血竇中低表達;B代表模型組,IL-6在肝細胞胞質內大量表達;C代表PBS組,IL-6在肝細胞胞質內高表達;D代表GDF-15組,IL-6在肝血竇中有表達,在肝細胞胞質內少量表達

2.8 各組小鼠Western Blot檢測結果

各組小鼠Western Blot檢測結果:與正常組比較,模型組和PBS組小鼠肝組織中TNF-α、IL-1β、IL-6明顯增加,差異有統計學意義(P<0.01);與模型組比較,GDF-15組小鼠肝組織中TNF-α、IL-1β、IL-6明顯下降,差異有統計學意義(P<0.01),見圖5、表8。

圖5 各組小鼠肝組織TNF-α、IL-1β和IL-6的表達

組 別TNF-α/β-actinIL-1β/β-actinIL-6/β-actin正常組0.33±0.020.08±0.010.13±0.01模型組1.24±0.14**0.52±0.04**0.44±0.05**PBS組 1.12±0.08**0.43±0.03**0.32±0.03**GDF-15組0.54±0.03##0.14±0.01##0.23±0.02##

3 討 論

糖尿病肝損傷是糖尿病常見的并發癥之一。對于T2DM的發病機制,目前還未見明確的闡述,主要涉及以下幾個方面,如:糖脂質代謝異常、氧化應激、內質網應激、胰島素抵抗、線粒體功能障礙、炎癥反應[8-10]等等。研究顯示,在糖尿病以及并發癥中發揮重要作用的是炎癥反應。當TNF-α、IL -1β、IL-6 等炎癥細胞因子大量釋放時,可導致糖尿病肝損傷加重,可由非酒精性脂肪肝病發展為非酒精性脂肪肝炎[11]。

轉化生長因子GDF-15在體內有廣泛的表達,其主要的分泌部位在肝臟和脂肪組織。有研究表明,GDF-15能使高脂飲食的小鼠體內脂肪含量降低[12],同時可使機體能量消耗水平增加;還可通過抑制巨噬細胞活化減少炎癥的發生。機體炎癥反應時GDF-15水平會有代償性增高,推測GDF-15可能對機體具有一定保護作用[5]1-5。本實驗利用高脂飲食聯合STZ誘導C57BL/6J小鼠糖尿病模型,就有關GDF-15對糖尿病小鼠肝損傷的保護作用進行了初步探索研究。

ALT和AST可作為肝細胞損傷的診斷標準之一。本實驗血清中ALT、AST的檢測結果顯示,模型組明顯升高,GDF-15組明顯下降,說明GDF-15可明顯改善糖尿病小鼠的肝功能。肝組織中糖尿病脂質代謝指標TG、TC的檢測結果顯示:模型組明顯升高,GDF-15組明顯下降,說明GDF-15可改善糖尿病小鼠的脂質代謝。HK、PK是調控糖酵解的一種酶,肝組織中HK、PK的檢測結果顯示,模型組明顯降低,而GDF-15組明顯上升,說明GDF-15能維持糖尿病小鼠血糖的相對穩定。糖尿病小鼠抗氧化指標SOD、MDA的檢測結果顯示,模型組SOD表達明顯降低而MDA表達明顯升高,GDF-15組SOD表達明顯升高而MDA表達明顯降低,表明GDF-15可通過提高機體抗氧化來保護肝臟。

在各種促炎癥因子中,TNF-α是最重要的促炎介質之一,在胰島素抵抗的發生和T2DM的發病過程中發揮著重要作用。TNF-α主要產生于脂肪細胞和(或)外周組織,通過參與產生ROS和激活各種轉錄介導的通路,誘導組織特異性炎癥。TNF-α水平升高誘導脂肪細胞和外周組織的胰島素抵抗,通過絲氨酸磷酸化削弱胰島素信號,從而導致T2DM的發展。有文獻報道[13],通過抑制促炎細胞因子的表達來預防1型和2型糖尿病。本實驗各組小鼠血清和肝組織中TNF-α、IL-6及IL-1β檢測結果顯示,模型組促炎癥因子表達明顯上升,GDF-15組促炎癥因子表達明顯下降;免疫組織化學染色和Western Bolt檢測肝組織中NF-α、IL-6及IL-1β表達結果顯示:模型組處于高表達,GDF-15組處于低表達。其實驗結果與已有文獻報道一致,說明GDF-15能抑制促炎細胞因子的表達。有關GDF-15介導改善糖尿病小鼠肝損傷的機制還需進一步的研究來闡明。

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