胡馨丹 李 瑤 張小花 梁娟紅 張騰國
(西北師范大學生命科學學院,蘭州 730070)
低溫是限制植物生長的關鍵非生物脅迫之一,是影響植物生長發(fā)育、地理分布和作物產(chǎn)量的重要環(huán)境因子[1]。植物在受到低溫脅迫后會導致芽發(fā)育不良、葉片萎黃或泛黃以及組織死亡[2]。同時,在低溫脅迫過程中,植物體內(nèi)會產(chǎn)生大量活性氧(ROS),當生成量超過植物自身的清除能力時,ROS 開始攻擊生物大分子,例如膜脂質、核酸和蛋白質,引起生物膜系統(tǒng)的損傷,導致光合產(chǎn)物的減少,代謝異常以及植物中有毒物質的大量積累[3~5]。耐寒性是植物抵御冷害的必要特性,特別是對于越冬作物[6]。為了增強植物在各種生物和非生物脅迫中的生命力,植物已經(jīng)進化出一套復雜且精細的抗氧化系統(tǒng)抵御外部環(huán)境脅迫,包括超氧化物歧化酶(SOD)、過氧化氫酶(CAT)、愈創(chuàng)木酚過氧化物酶(POD)和抗壞血酸過氧化物酶(APX),以及其他自由基清除劑。除此之外,植物在響應低溫脅迫過程中,各種有機和無機物質(如無機鹽、脯氨酸、甜菜堿、可溶性糖和可溶性蛋白)通過滲透調(diào)節(jié)積累在植物細胞中,從而導致細胞液濃度增加和滲透勢降低,進而減緩低溫脅迫[7]。同時,Ca2+也參與耐寒調(diào)控過程,CPK 是Ca2+傳感器,可以感知Ca2+單個蛋白質中的水平和激酶活性,對植物發(fā)育和植物對各種環(huán)境脅迫的反應至關重要。研究表明,Ca2+依賴性蛋白激酶(CPKs)參與低溫脅迫下水稻的信號響應過程[8]。
ATP(三磷酸腺苷)不僅是所有生物的通用能源,而且還在細胞間通訊中充當重要的信號分子。20 世紀70 年代ATP 已被廣泛接受為介導眾多動物細胞過程的信號分子,包括神經(jīng)傳導、免疫應答、細胞生長和細胞死亡[9]。1970 年以后發(fā)現(xiàn)了ATP 在植物中可能發(fā)揮重要作用,Lew[10]等人發(fā)現(xiàn)外源施用ATP 可以促進根毛生長,并使生長中的根毛的質膜電位去極化;外源ATP 處理會引起根卷曲,并刺激側根生長[11]。隨著人們不斷地研究發(fā)現(xiàn),ATP 參與植物生長和發(fā)育的各種生理過程,包括植物生長,生物/非生物脅迫響應[12]。研究表明,外源施用或內(nèi)源誘導的ATP 能夠增強植物對鹽[13]、寒 冷[14]、干 旱[15]等 非 生 物 脅 迫 的 抗 性。Feng[16]等研究發(fā)現(xiàn),外源ATP 能夠增強菜豆幼苗的葉綠素熒光參數(shù)。擬南芥中,外源ATP 能夠通過清除ROS 促進根毛生長,表明ATP 能夠調(diào)節(jié)與植物形態(tài)發(fā)生有關的氧化還原平衡[17]。此外,細胞外ATP(eATP)對植物的免疫響應具有一定的濃度依賴性,適宜濃度的eATP 能夠增強植物對逆境的抗性[18~20]。Ca2+和H2O2是植物響應環(huán)境刺激誘導信號轉導途徑中的第二信使,也在外源ATP 調(diào)節(jié)植物細胞的生理功能中起作用。在應激信號轉導過程中,Ca2+和H2O2與ATP之間既相互獨立又存在交互作用[21]。研究表明,細胞外ATP 誘導的ROS 產(chǎn)生參與了各種植物的生長、發(fā)育和脅迫反應,例如防御反應,氣孔運動和程序性細胞死亡[22~23]。ATP 通過調(diào)節(jié)Ca2+以及CaM 基因的表達進而增強枇杷的耐低溫能力[24];Ca2+和H2O2參與了外源ATP 對菜豆葉片的葉綠素熒光的調(diào)控[16];外源ATP 能夠通過增加H2O2和Ca2+濃度進而增強胡楊細胞的耐鹽性[13]。雖然關于外源ATP 對植物抗逆性方面的研究有很多,但外源ATP 對油菜幼苗耐寒性方面的研究鮮見報道。
油菜作為我國第一大油料作物,其生產(chǎn)以冬油菜為主,但我國北方旱寒區(qū)冬季氣候寒冷,嚴重影響了冬油菜在我國北方地區(qū)的種植[25],白菜型冬油菜“隴油7 號”(Brassica campestris L.)是可以在中國北方安穩(wěn)越冬的超強抗寒的冬油菜品種。本實驗以“隴油7 號”為材料,探究了外源ATP 對低溫脅迫下油菜幼苗丙二醛(MDA)、滲透調(diào)節(jié)物及活性氧的積累,光合能力以及抗氧化系統(tǒng)的影響,以及外源ATP 對低溫脅迫下油菜幼苗RBO?HD、RBOHF、CPK4、CPK5 基因表達的影響,同時,還研究了Ca2+和H2O2是否參與了外源ATP緩解低溫脅迫過程。研究結果為深入了解外源ATP 在植物抗逆過程中的生物學功能提供理論參考。
本實驗以白菜型冬油菜“隴油7 號”為實驗材料,種子由甘肅農(nóng)業(yè)大學提供。
挑選出顆粒飽滿,大小均一的油菜種子消毒后播種于裝有等量混合營養(yǎng)土(營養(yǎng)土∶蛭石=2∶1)的花盆,置于25℃、光照強度為150 μmol·m-2·s-1、光周期16 h/8 h(光照/黑暗)的培養(yǎng)間培養(yǎng)至4 周,挑選生長良好且長勢一致的油菜幼苗進行以下處理:①低溫脅迫:將油菜幼苗置于4℃的低溫培養(yǎng)箱中處理24 h;②ATP+低溫復合處理:用去離子水分別配置濃度為25μmol·L-1的ATP 溶液均勻噴灑在油菜幼苗葉片后,將油菜幼苗置于4℃條件下的低溫培養(yǎng)箱處理24 h;③CaCl2/EGTA/H2O2/DMTU+低溫復合處理:分別配制CaCl2(10 mmol·L-1)、EGTA(5 mmol·L-1)、H2O2(10 mmol·L-1)、DMTU(40 mmol·L-1)處理液分別均勻噴灑在油菜幼苗葉片后,將油菜幼苗置于4℃的低溫培養(yǎng)箱中處理24 h;④DMTU/EGTA+ATP+低溫復合處理:分別用40 mmol·L-1DMTU(H2O2清除劑)、5 mmol·L-1EGTA(鈣離子螯合劑)浸泡油菜根部12 h 后,洗凈油菜根部處理液,然后用去離子水配置的濃度為25 μmol·L-1的ATP 溶液均勻噴灑在經(jīng)抑制劑處理過的油菜幼苗上,再將油菜幼苗轉入4℃的低溫培養(yǎng)箱中處理24 h。
1.3.1 總葉綠素含量的測定
總葉綠素含量的測定采用Knudson[26]的方法。
1.3.2 葉綠素熒光參數(shù)測定
參 照Demmig-Adams 等[27]的方 法 使 用PAM-2500葉綠素熒光儀測定葉綠素熒光參數(shù)。
1.3.3 生理指標測定
MDA含量的測定參照Heath[28]的方法;脯氨酸含量的測定參照Bates[29]的方法稍作改動;可溶性糖含量的測定參照郝建軍等[30]的方法;O2-含量的分布采用NBT 組織化學染色法[31],超氧化物歧化酶(SOD)活性采用NBT 顯色法測定[32];過氧化物酶(POD)活性的檢測采用愈創(chuàng)木酚法[33]測定;過氧化氫酶(CAT)活性采用紫外吸收法測定[24];抗壞血酸過氧化物酶(APX)活性測定參照Nakano[34]的方法測定;采用試劑盒測定總抗氧化酶(TAOC)活性和Ca2+-ATP 酶(Ca2+-ATPase)活性(購自南京建成生物工程研究所的試劑盒)。
1.3.4 實時熒光定量PCR 分析RBOHD、RBOHF、CPK4、CPK5基因表達
油菜葉片總RNA 的提取和cDNA 第一條鏈的合成,參照MiniBEST Plant RNA Extraction Kit(Code No.9769)試劑盒(TaKaRa 公司)中的說明書進行。以提取到的油菜總RNA 為模板,以ActinF和ActinR 為管家基因引物,RBOHD-F、RBOHD-D為RBOHD 引物,RBOHF-F、RBOHF-D 為RBOHF引 物,CPK4-F、CPK4-R 為CPK4 引 物,CPK5-F、CPK5-R 為CPK5 引物,參照TB GreenTMPremix Ex TaqTMⅡ定量試劑盒(TaKaRa 公司)的說明書進行RT-PCR 反應,所有基因特異引物(見表1)由華大基因科技有限公司合成。每個樣品均做3個平行,采用2?ΔΔCt法,其中:
式中:Ct 為熒光信號到達設定閾值時所經(jīng)歷的循壞數(shù),計算基因相對表達量。
使用SPSS 20.0 軟件進行統(tǒng)計分析,按單因素方差分析法在P<0.05 水平上進行顯著性檢驗,使用GraphPad Prism 5.01軟件制圖。

表1 實時熒光定量PCR引物Table 1 Real-time PCR primers

如圖1B-E 所示,與CK 相比,油菜幼苗葉片經(jīng)外源ATP 處理后,SOD、POD、CAT、APX 四種抗氧化酶的活性無明顯變化,經(jīng)低溫(4℃)處理24 h后,SOD、POD、CAT、APX 4 種抗氧化酶的活性顯著增加,分別增加了63.9%、57.5%、88.9%、112.6%;與單獨低溫(4℃)處理相比,外源ATP+低溫(4℃)復合處理下,SOD、POD、CAT、APX 4 種抗氧化酶的活性分別增加了14.1%、31.3%、44.3%、39.7%;結果表明,外源ATP 預處理能增加低溫脅迫下油菜幼苗SOD、POD、CAT、APX 的活性,維持低溫脅迫下ROS的平衡,增強油菜的耐寒性。
如圖2 所示,與CK 相比,外源ATP 處理后油菜幼苗葉片內(nèi)的脯氨酸和可溶性糖的含量無顯著增加,低溫(4℃)處理24 h 后,油菜幼苗葉片內(nèi)的脯氨酸和可溶性糖的含量顯著增加,分別增加了51.9%、97.4%;與單獨低溫(4℃)相比,低溫(4℃)+ATP 復合處理下脯氨酸和可溶性糖的含量顯著增加,分別增加了40.2%、45.9%。結果表明,低溫脅迫能夠誘導油菜葉片滲透調(diào)節(jié)物質的顯著升高,外源ATP 可以進一步提高低溫脅迫下油菜葉片的滲透調(diào)節(jié)物質,增強油菜幼苗的耐寒性。
Fv'/Fm'反應的是光適應下PSII 最大光化學效率,Y(II)反映的是光下葉片實際光化學效率,ETR反應的是電子傳遞速率,qP是光化學淬滅系數(shù),表示的是PSII 中處于開放狀態(tài)的反應中心所占比例。如圖3A-D 所示,與CK 相比,外源ATP 處理對油菜幼苗的Fv'/Fm'、Y(II)、ETR、qP無明顯影響,但經(jīng)低溫(4℃)處理24 h 后油菜幼苗的Fv'/Fm'、Y(II)、ETR、qP 顯 著 下 降,分 別 下 降 了34.5%、21.1%、36.9%和45.3%;與單獨低溫(4℃)相比,低溫(4℃)+ATP 復合處理下油菜幼苗的Fv'/Fm'、Y(II)、ETR、qP 分別升高54.8%、15.6%、36.9%和67.5%,且均差異顯著。Y(NPQ)反應的是調(diào)節(jié)性能量耗散量子產(chǎn)量,NPQ 反映的是非光化學淬滅系數(shù)。如圖3E、F 所示,與CK 相比,外源ATP 處理對油菜幼苗的Y(NPQ)、NPQ 無明顯影響,但經(jīng)低溫(4℃)處理24 h 后油菜幼苗的Y(NPQ)、NPQ 顯著增加,分別增加了88.5%、25.7%;與單獨低溫(4℃)相比,低溫(4℃)+ATP 復合處理下油菜幼苗的Y(NPQ)、NPQ 分別下降了31.8%、67.5%,且均差異顯著。結果表明,外源ATP 預處理能夠緩解低溫脅迫下油菜幼苗光化學反應效率的降低。
如圖4A所示,與CK相比,低溫(4℃)處理24 h后油菜幼苗MDA 含量顯著升高;經(jīng)ATP 預處理再低溫(4℃)脅迫與單獨低溫(4℃)處理相比油菜幼苗MDA 含量降低了21.2%;與ATP+低溫(4℃)復合處理相比,用ATP+DMTU 預處理后在低溫脅迫處理的黃瓜幼苗MDA 含量增加了22.7%,用ATP+EGTA 預處理后在低溫脅迫處理的黃瓜幼苗MDA含量增加了19.4%,且均差異顯著,說明低溫脅迫能夠促進油菜幼苗MDA 含量增加,而外源ATP 預處理可以抑制低溫脅迫下油菜幼苗MDA 含量增加,緩解低溫脅迫下油菜幼苗的膜脂損傷,而DMTU 和EGTA 可以抑制外源ATP 對低溫脅迫下油菜幼苗膜脂損傷的緩解。
如圖4B所示,與CK 相比,低溫(4℃)處理24 h后油菜幼苗總葉綠素含量顯著降低;經(jīng)ATP 預處理再低溫(4℃)脅迫與單獨低溫(4℃)處理相比油菜幼苗總葉綠素含量升高了127.6%;與ATP+低溫(4℃)復合處理相比,用ATP+DMTU 預處理后在低溫(4℃)脅迫處理的黃瓜幼苗總葉綠素含量降低了26.7%,用ATP+EGTA 預處理后在低溫(4℃)脅迫處理的黃瓜幼苗總葉綠素含量降低了32.6%,且均差異顯著,說明低溫脅迫能夠導致油菜幼苗總葉綠素含量降低,外源ATP 預處理可以促進低溫脅迫下油菜幼苗總葉綠素含量增加,緩解低溫脅迫下油菜幼苗的損傷,而DMTU 和EGTA 可以抑制外源ATP 對低溫脅迫下油菜幼苗損傷的緩解,表明H2O2和Ca2+可能參與了ATP 誘導油菜幼苗的耐寒性的過程。
如圖5A、B 所示,單獨低溫(4℃)處理下,油菜幼苗RBOHD 和RBOHF 基因表達顯著上調(diào)分別是CK的2.32倍、3.53倍;與單獨低溫(4℃)處理相比,低溫(4℃)+ATP 復合處理下和低溫(4℃)+Ca2+復合處理下油菜幼苗RBOHD 和RBOHF 基因表達顯著上調(diào),而低溫(4℃)+EGTA 復合處理下RBOHD和RBOHF 基因表達明顯下調(diào);表明外源ATP 和Ca2+預處理均能夠增強低溫誘導下油菜幼苗RBO?HD和RBOHF基因表達;與低溫(4℃)+ATP處理相比,經(jīng)低溫(4℃)+ATP+EGTA 復合處理后油菜幼苗RBOHD 和RBOHF 基因表達顯著下調(diào),說明外源ATP 對低溫脅迫下油菜幼苗的RBOHD 和RBO?HF基因表達的影響可能與Ca2+有關。
如圖5C 所示,與單獨低溫(4℃)處理相比,外源ATP 預處理再低溫(4℃)脅迫與Ca2+預處理再低溫(4℃)脅迫均顯著提高了T-AOC 酶活性,而經(jīng)EGTA 預處理后再進行低溫(4℃)脅迫,T-AOC 酶活性顯著降低;與低溫(4℃)+ATP 復合處理相比,低溫(4℃)+EGTA+ATP 復合處理顯著降低了油菜幼苗的T-AOC 酶活性,說明外源ATP 對低溫脅迫下油菜幼苗的T-AOC 酶活性的影響可能與Ca2+有關。
如圖6A~B 所示,單獨低溫(4℃)處理下,油菜幼苗的CPK4 和CPK5 基因表達顯著上調(diào),分別是CK 的4.28、6.94 倍;與單獨低溫(4℃)處理相比,經(jīng)外源ATP 預處理或H2O2預處理再低溫(4℃)脅迫能夠誘導油菜幼苗CPK4和CPK5基因表達顯著上調(diào),而低溫(4℃)+DMTU復合處理下CPK4和CPK5的基因表達顯著下調(diào),表明外源ATP 和H2O2均可以誘導低溫脅迫下油菜幼苗CPK4和CPK5基因表達;與低溫(4℃)+ATP 處理相比,低溫(4℃)+DMTU+ATP 處理后的油菜幼苗CPK4 和CPK5 基因的表達水平顯著下調(diào)。說明外源ATP 對低溫脅迫下油菜幼苗的CPK4和CPK5基因表達的影響可能與H2O2有關。
如圖6C 所示,與單獨低溫(4℃)相比,DMTU預處理后再低溫脅迫下的油菜幼苗Ca2+-ATPase酶活性顯著下降,而外源H2O2預處理在低溫脅迫明顯提高了油菜幼苗的Ca2+-ATPase 酶活性,與低溫(4℃)+ATP 復合處理相比,低溫(4℃)+EGTA+ATP復合處理顯著降低了油菜幼苗的Ca2+-ATPase酶活性。說明外源ATP 對低溫脅迫下油菜幼苗的Ca2+-ATPase酶活性的影響可能與H2O2有關。
植物在遭受低溫脅迫時,會產(chǎn)生大量ROS,導致膜脂過氧化、蛋白質活性降低甚至喪失、代謝紊亂等。近年來研究發(fā)現(xiàn),低溫脅迫能夠使櫻桃、番茄、油菜、水稻幼苗中抗氧化酶活性增強、滲透調(diào)節(jié)物質含量升高、MDA含量降低,導致植物受到損傷[35~37]。同時,Huo[15,38]等研究發(fā)現(xiàn),外源ATP能夠通過調(diào)節(jié)MDA 含量、抗氧化酶活性和滲透調(diào)節(jié)物質含量,進而增強非生物脅迫下植株幼苗的耐受性,本實驗結果與這些報道相一致。本研究發(fā)現(xiàn),外源ATP能夠顯著抑制低溫脅迫下油菜幼苗MDA含量的增加、促進脯氨酸、可溶性糖含量的積累和SOD、POD、CAT、APX 活性的升高,表明外源ATP能夠通過調(diào)節(jié)低溫脅迫下油菜幼苗的滲透調(diào)節(jié)物質和抗氧化能力緩解質膜損傷,增強油菜幼苗的耐寒性。
光合作用是大多數(shù)植物正常生長發(fā)育的必要條件,逆境脅迫能夠導致植物葉綠素的合成以及有機物積累能力下降,造成植物產(chǎn)量降低甚至絕產(chǎn)。在本研究中,低溫脅迫下油菜幼苗的Fv'/Fm'、Y(Ⅱ)、ETR、qP參數(shù)顯著低于對照處理,Y(NPQ)、NPQ 參數(shù)明顯高于對照處理。這與低溫脅迫對水稻、黃瓜、甘蔗、香蕉等植株光合作用相關參數(shù)的影響相一致[39~40]。此外,也有研究表明,外源ATP處理能顯著提高病原菌感染下菜豆幼苗的光合速率[41]。本研究中,外源ATP 能提高低溫脅迫下Fv'/Fm'、Y(Ⅱ)、ETR、qP參數(shù),降低低溫脅迫下Y(NPQ)、NPQ 參數(shù),表明外源ATP 能夠通過調(diào)節(jié)低溫脅迫下油菜幼苗光合色素積累和光合效率的提高,進而提高油菜幼苗的耐寒性。
Ca2+和H2O2作為植物激素信號和植物對逆境應激反應過程中的信號分子,響應低溫和鹽等非生 物 脅 迫[42~43]。植 物NADPH 氧 化 酶 被 認 為 是H2O2的主要生產(chǎn)者,近幾年研究發(fā)現(xiàn),低溫脅迫能夠誘導油菜幼苗RbohC和RbohF基因的表達[44];外源ATP 通過刺激NADPH 氧化酶緩解水楊酸誘導的細胞死亡[45]。結合這些前人結果,本研究中,DMTU 預處理顯著降低外源ATP 對低溫脅迫下油菜幼苗MDA 含量的抑制和總葉綠素含量的增加,可能是由于H2O2參與外源ATP 對油菜幼苗耐寒性調(diào)控過程。CPK 是Ca2+傳感器,感知Ca2+單個蛋白質中的水平和激酶活性,對植物生長發(fā)育和應對各種環(huán)境脅迫至關重要。OsCPKs 能被低溫脅迫迅速激活,是水稻響應低溫脅迫過程中的必需基因[46]。同時,Jeter[47]等研究發(fā)現(xiàn),外源ATP 能夠誘導擬南芥幼苗Ca2+濃度的增加。本研究表明,EGTA 預處理顯著降低外源ATP 對低溫脅迫下MDA含量的抑制和總葉綠素含量的增加,可能是由于Ca2+參與外源ATP 對油菜幼苗耐寒性調(diào)控過程。本實驗中,EGTA 或DMTU 預處理油菜幼苗均能降低外源ATP 對低溫脅迫下T-AOC 酶、Ca2+-ATPase酶的活性和RBOHD、RBOHF、CPK4 和CPK5 基因的表達,這與前人研究結果相一致[48~49]。以上結果表明Ca2+和H2O2均參與外源ATP 誘導油菜耐寒性的調(diào)控過程,并通過Ca2+和H2O2依賴性機制影響油菜幼苗的耐寒性。
外源ATP 能夠提高低溫脅迫下油菜幼苗葉綠素含量、滲透調(diào)節(jié)物質含量、抗氧化酶活性、降低MDA 含量,進而保護細胞膜系統(tǒng)免受膜質損傷。Ca2+和H2O2均能參與外源ATP 對低溫脅迫下油菜幼苗的調(diào)控過程,并通過Ca2+和H2O2依賴性機制影響油菜幼苗的耐寒性。