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核桃枝干上一株黃色鐮刀菌的鑒定及室內(nèi)防治藥劑篩選

2021-01-21 09:18:34王鵬程方愛平屈定斌金太星孫長城楊正容
湖北農(nóng)業(yè)科學(xué) 2020年24期

王鵬程,方愛平,屈定斌,彭 新,姜 李,金太星,孫長城,楊正容,賈 切

(1.湖北三峽職業(yè)技術(shù)學(xué)院,湖北 宜昌 443000;2.遠(yuǎn)安縣河口鄉(xiāng)林業(yè)站,湖北 遠(yuǎn)安 444209;3.秭歸縣林業(yè)局,湖北 秭歸 443600;4.秭歸縣郭家壩鎮(zhèn)林業(yè)站,湖北 秭歸 443621;5.興山縣黃糧鎮(zhèn)林業(yè)站,湖北 興山 443701;6.興山縣黃糧鎮(zhèn)農(nóng)技服務(wù)中心,湖北 興山 443701;7.興山縣峽口鎮(zhèn)農(nóng)技服務(wù)中心,湖北 興山 443701;8.五峰土家族自治縣農(nóng)業(yè)農(nóng)村局,湖北 五峰 443413;9.長江大學(xué)園藝園林學(xué)院,湖北 荊州 434025)

核桃(Juglans regiaL.)是世界上四大干果之一。據(jù)文獻(xiàn)[1]記載中國已有3 000 多年的栽培歷史。由于缺乏良種、無性繁殖困難,生產(chǎn)一直處于徘徊不前狀態(tài)。20 世紀(jì)90年代,早實(shí)核桃良種選育的成功以及方塊芽接技術(shù)的突破,國家政策引導(dǎo)和市場驅(qū)動,中國核桃產(chǎn)業(yè)迎來了前所未有的發(fā)展機(jī)遇。目前,整個宜昌地區(qū)核桃種植面積近46 萬hm2,主要為從外地引進(jìn)的遼核系列、云新系列和清香系列品種。據(jù)調(diào)查,每年4月初宜昌種植的核桃幼枝開始出現(xiàn)腐爛病變,感病初期枝條上零散出現(xiàn)大小不一的小黑點(diǎn)。隨著病情的發(fā)展,斑點(diǎn)不斷擴(kuò)大,連成一片,中間稍凹陷,呈不規(guī)則長條狀。常規(guī)施藥防治效果不佳,給當(dāng)?shù)睾颂疑a(chǎn)帶來嚴(yán)重影響。為確定病原、精準(zhǔn)施藥、有效控制該病害蔓延,開展了病原生物的分離、鑒定及室內(nèi)殺菌劑篩選工作,在分離過程中獲得2 株鐮刀菌屬(Fusarium)菌株,經(jīng)致病性測試,可引起核桃幼枝變黑腐爛。

鐮刀菌是一種寄生病原菌,已報道的鐮刀菌超過500 種[2]。以菌絲體或分生孢子的形式在土壤中越冬,通過傷口、皮孔等侵入組織。鐮刀菌可迅速侵入寄主植物的維管組織,導(dǎo)致寄主植株死亡,變黑腐爛,微管組織和周圍海綿組織破裂[3]。黃色鐮刀菌是鐮刀菌屬下的1 個種,黃色鐮刀菌致病性研究多見于馬鈴薯、大豆和小麥等農(nóng)作物[4-6],在核桃樹上浸染未見報道,擔(dān)心其可能為核桃潛在的新病原,筆者對該菌種進(jìn)行了形態(tài)和ITS 鑒定,并對該菌進(jìn)行了常用殺菌劑敏感性測定,以期為生產(chǎn)上防治該病提供數(shù)據(jù)支撐。

1 材料與方法

1.1 試驗(yàn)材料

1.1.1 供試材料 在發(fā)病的5月采集當(dāng)年生核桃?guī)Р∮字Γ庞谧苑馍飿?biāo)本袋中帶回實(shí)驗(yàn)室進(jìn)行病原菌分離。采集健康帶葉幼枝用于回接試驗(yàn),進(jìn)行致病性檢測。

1.1.2 試驗(yàn)試劑 PDA 培養(yǎng)基:馬鈴薯200 g,葡萄糖20 g,瓊脂粉18 g,去離子水1 000 mL。供試殺菌劑及其劑型、生產(chǎn)廠家見表1。

表1 供試殺菌劑

1.1.3 試驗(yàn)儀器、設(shè)備 基因組DNA 快速抽提試劑盒(TaKaRa MiniBEST Universal Genomic DNA Ex?traction Kit Ver.5.0)、PCR 試劑盒(TaKaRa ExTaq)均購自于寶生物工程(大連)有限公司,ITS1∕ITS4 引物由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。

E100 型普通光學(xué)顯微鏡,日本Nikon 公司;Mi?crofug?20R centrifuge 高速冷凍離心機(jī),美國貝克曼庫爾特有限公司;9700 型PCR 儀、3730XL 型DNA 測序儀,美國ABI 公司。

1.2 試驗(yàn)方法

1.2.1 病原菌分離培養(yǎng) 采用組織分離法[7]進(jìn)行菌種分離。將采回的帶病枝條沖洗干凈消毒,取病健交界處組織塊(4.0 mm×4.0 mm)放入PDA 平板中培養(yǎng),待菌落形成后,挑取少許菌落邊緣形態(tài)比較單一的菌絲塊轉(zhuǎn)接到新的PDA 平板上培養(yǎng),如此重復(fù)2~3 次后,挑取形態(tài)比較單一的菌絲小塊移至PDA斜面試管中培養(yǎng)備用。

1.2.2 菌株單孢純化 采用分生孢子稀釋法,菌株在PDA 培養(yǎng)基中連續(xù)暗培養(yǎng)后加無菌水,用滅菌棉簽輕洗培養(yǎng)菌落,制成分生孢子懸浮液,然后進(jìn)行梯度稀釋,最后將孢子懸浮液均勻涂抹在PDA 培養(yǎng)基平板上培養(yǎng)。再挑取單個分生孢子萌發(fā)產(chǎn)生的單菌落,移至PDA 斜面培養(yǎng)備用。

1.2.3 病原菌形態(tài)鑒定 菌絲和孢子形態(tài)觀察,參照張?zhí)煊睿?]的方法,取濾紙剪成長方形,將中心挖一方孔,滅菌后用無菌水潤濕放于無菌載玻片上。從PDA 平板邊緣挑取約6 mm 大小的菌餅均勻涂于濾紙中央方孔的邊緣,置于鋪有濕潤濾紙的滅菌培養(yǎng)皿中培養(yǎng)。參照傳統(tǒng)真菌分類方法,初步判定病原菌種類[9]。

1.2.4 病原菌致病性測定 按照柯赫氏法則,采用離體枝條接種。將新鮮且健康的枝條清洗消毒,放入鋪有濕潤滅菌吸水紙的搪瓷盤中擺放整齊。用消毒針刺傷表皮,用消毒打孔器取直徑4 mm 的菌餅分別接種到刺傷部位,以接入無菌PDA 為對照組。用保鮮膜封盤,保濕培養(yǎng),每個菌株接種5 個。接種后置于恒溫恒濕培養(yǎng)箱中于28 ℃下誘導(dǎo)發(fā)病,2 d后移去菌餅,每天觀察并記錄發(fā)病情況,連續(xù)觀察10 d。發(fā)病后再次從病斑分離培養(yǎng)病原菌,并與原接種菌株進(jìn)行比較。

1.2.5 菌絲DNA 提取及菌種ITS-PCR 鑒定

1)菌絲DNA 提取及凝膠電泳檢測。用打孔器取直徑6 mm 活化的病原菌菌餅,置于鋪有玻璃紙滅菌的PDA 培養(yǎng)基上,于25 ℃下暗培養(yǎng)3 d。收集玻璃紙上新鮮菌絲,按DNA 提取試劑盒操作說明進(jìn)行基因組DNA 提取。取5 μL DNA 溶液,以瓊脂糖凝膠電泳檢測,用全自動凝膠成像系統(tǒng)(GelDoc XR+,BIO-RAD)進(jìn)行拍照記錄。

2)ITS-PCR 及序列分析。以基因組DNA 為模板,采用真菌生物核糖體DNA 通用引物ITS1 和ITS4 對rDNA-ITS 區(qū)域進(jìn)行PCR 擴(kuò)增。PCR 反應(yīng)體系(50 μL):10×PCR Buffer(含MgCl2)5 μL,5 U∕μLTaqDNA 聚合酶0.3 μL,10 mmol∕L dNTPs 2 μL,模板DNA 10 ng,引物ITS1 和ITS4(25 μmol∕L)各1 μL,補(bǔ)ddH2O 使總體積達(dá)到50 μL,在PTC-100 PCR 擴(kuò)增儀(9700 型,美國ABI 公司)上擴(kuò)增。PCR 擴(kuò)增程序:94 ℃預(yù)變性5 min;94 ℃變性30 s,54 ℃退火30 s,72 ℃延伸1 min,共30 個循環(huán);最后72 ℃延伸10 min。PCR 產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳檢測后委托深圳華大基因科技有限公司進(jìn)行DNA 純化和測序。將測序結(jié)果在GenBank 數(shù)據(jù)庫中進(jìn)行序列同源性比對,利用MEGA7.0 軟件構(gòu)建該ITS 序列與同源ITS 序列的Neighbor-Joining 系統(tǒng)進(jìn)化樹,結(jié)合致病性試驗(yàn)和孢子形態(tài)觀察結(jié)果確定分離菌株種屬特性。

1.2.6 室內(nèi)抑菌藥劑篩選 采用菌絲生長速率法[10]測定藥劑對菌株的抑制效果。用5 種殺菌劑配制成5 個濃度梯度(表2),將不同濃度藥劑與PDA 培養(yǎng)基充分混勻后制成不同濃度含藥平板,加入等量無菌水的PDA 平板作為空白對照。用直徑6 mm 的打孔器取培養(yǎng)5 d 的菌絲餅接種至含藥平板,每個濃度重復(fù)4 次,置于25 ℃進(jìn)行培養(yǎng)5 d 后,用十字交叉法測量菌落直徑,計(jì)算相對抑菌率。根據(jù)藥劑系列濃度的Log10 值和抑制率擬合曲線,并計(jì)算出各藥劑EC50[11]。

表2 各供試藥劑濃度梯度

2 結(jié)果與分析

2.1 病原菌形態(tài)特征

從病枝病斑中分離純化獲得1 株有效菌株,編號為Jf2(圖1)。菌落初期為白色絨毛狀、致密,生長速度較快,隨著菌絲的蔓延,菌落中間逐漸轉(zhuǎn)為黃棕色。翻轉(zhuǎn)培養(yǎng)基觀察,邊緣菌絲為白色絨毛狀,中間菌絲呈玫瑰紅色。顯微鏡觀察,菌絲有隔,多分枝,分生孢子較大,鐮刀形,少見小型分生孢子。根據(jù)《真菌鑒定手冊》[12]初步判斷為鐮刀屬真菌。

2.2 菌株致病性確定

通過對一年生核桃枝條接種試驗(yàn)發(fā)現(xiàn),Jf2 接種的枝條先后出現(xiàn)黑色斑點(diǎn),樣本發(fā)病癥狀與標(biāo)本一致,且對照不發(fā)病(圖2)。對接種后發(fā)病的病斑再進(jìn)行分離,獲得的菌株與原病菌一致,因此確定核桃植株莖稈上的病害為Jf2 病原菌所致。

圖1 Jf2 病原菌菌落及分生孢子

圖2 Jf2 接種后枝條發(fā)病癥狀

2.3 菌絲DNA 提取及病原菌分子鑒定

2.3.1 菌絲DNA 提取及凝膠電泳檢測 提取的DNA 經(jīng)1% 瓊脂糖凝膠電泳檢測,DNA 條帶清晰、明亮,可作為PCR 反應(yīng)的模板(圖3)。以該DNA為模板,用ITS1、ITS4 為引物對Jf2 的基因組rD?NA-ITS 區(qū)段進(jìn)行PCR 擴(kuò)增,結(jié)果顯示,擴(kuò)增片段大小為550 bp(圖4)。

圖3 DNA 瓊脂糖凝膠電泳

圖4 rDNA-ITS 擴(kuò)增電泳

2.3.2 序列分析 將測得的rDNA-ITS 序列與Gen?Bank 數(shù)據(jù)庫中已經(jīng)收錄的序列進(jìn)行BLAST 比對分析,結(jié)果表明,菌株Jf2 與F.culmorum同源性最高,同源性達(dá)99%。利用MEGA7.0 軟件通過鄰接法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育進(jìn)化樹,系統(tǒng)發(fā)育分析結(jié)果顯示,Jf2 與F. culmorum聚為一支,與其他菌株的遺傳距離較遠(yuǎn)(圖5)。根據(jù)形態(tài)觀察結(jié)果和系統(tǒng)進(jìn)化分析結(jié)果,將Jf2 菌株鑒定為F.culmorum。

圖5 基于rDNA-ITS 序列構(gòu)建的菌株Jf2 的系統(tǒng)進(jìn)化分析

2.4 室內(nèi)毒力測定

通過室內(nèi)毒力測定,5 種殺菌劑對黃色鐮刀菌(F.culmorum)均表現(xiàn)出一定的抑制性(表3)。各殺菌劑的防效與濃度對數(shù)相關(guān)系數(shù)均大于0.8,表明高度相關(guān)。但不同殺菌劑之間EC50相差很大,其中40% 氟硅唑乳油對黃色鐮刀菌的毒力相對最強(qiáng),EC50為0.383 7 μg∕mL;其次為43% 戊唑醇懸乳劑,EC50為9.192 1 μg∕mL;毒力最弱的是70% 甲基硫菌靈可濕性粉劑,EC50為2 010.961 0 μg∕mL。試驗(yàn)結(jié)果表明,40%氟硅唑乳油和43%戊唑醇懸浮劑對黃色鐮刀菌(F. culmorum)的毒力較強(qiáng),可用于該病原菌的防控。因此,在生產(chǎn)實(shí)踐中可考慮用40% 氟硅唑乳油和43% 戊唑醇懸浮劑作為該種病害的主要防治藥劑。

表3 不同殺菌劑對黃色鐮刀菌的室內(nèi)毒力測定

3 小結(jié)與討論

引起核桃枝干發(fā)病的病原生物種類較多,已報道的有矩圓黑盤孢(Melanconium oblongum)[13]、胡桃黑盤孢(M. juglandina)[14]、小新殼梭孢(Neofusicoc?cum parvum)[15]、胡桃 楸擬莖點(diǎn)霉(Phomopsis jug?landina)[16]、莖生擬莖點(diǎn)霉(P.truncicola)[17]、葡萄座腔菌(Botryosphaeria dothidea)[18]、金黃殼囊孢菌(Cy?tospora chrysosperma)[19]等。就鐮刀菌而言,擬枝孢鐮刀菌是鐮刀菌屬中最早報道的菌種。1985年Cummmings 等[20]第一次從黑核桃潰瘍病中分離到了擬枝孢鐮刀菌(Fusarium sporotrichioides),這也是鐮刀菌屬真菌在核桃中首次被發(fā)現(xiàn)。1986年,劉世騏[21]又從核桃潰瘍病中分離到茄病鐮刀菌(Fusari?um solani),2002年,Belisario 等[22]又從核桃病果中離到了鐮刀菌(Fusariumspp.)。

鐮刀菌在自然界中分布廣泛,種內(nèi)生理分化十分明顯,而且新的種群還在不斷發(fā)現(xiàn),危害各種作物。宜昌地區(qū)首次從核桃中分離到黃色鐮刀菌,說明鐮刀菌屬真菌致病性強(qiáng),宿主廣泛。王麗麗等[23]利用從馬鈴薯中分離到的銳頂鐮刀菌(F.acuminat?urn)和黃色鐮刀菌(F. culmorum)進(jìn)行室內(nèi)殺毒試驗(yàn),將供試的8 種殺菌劑分別配制成5 個濃度梯度,結(jié)果表明作用效果最好的殺菌劑為32.5% 的苯醚甲環(huán)唑。本研究選用5 種常見的化學(xué)殺菌劑,分別配制成5 個不同濃度的溶液,進(jìn)行黃色鐮刀菌毒力測定,表明40% 氟硅唑作用效果最好,其次是43%戊唑醇。2 種藥劑對黃色鐮刀菌的菌絲生長及孢子萌發(fā)均有明顯抑制作用。

化學(xué)防治盡可能選擇對菌絲生長和孢子萌發(fā)抑制作用都最強(qiáng)的殺菌劑,盡可能采用混配殺菌劑,防止因?yàn)閱我粴⒕鷦┦┯靡鸬牟≡儺悺H欢鴼⒕Ч芏喾N因素影響,如周圍環(huán)境溫度、濕度、天氣以及病原菌所處的生理狀態(tài)等,因此生產(chǎn)上選用殺菌劑時應(yīng)結(jié)合室內(nèi)和田間試驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行綜合分析判斷。本試驗(yàn)盡管篩選出了作用效果好的殺菌劑,但試驗(yàn)是在室內(nèi)進(jìn)行的,還需下一步進(jìn)行田間殺菌試驗(yàn)。

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