李代昆,樊超強,吳茳鈴,余雪梅,李文明,薛建江△
(1.重慶醫(yī)科大學附屬大學城醫(yī)院檢驗科,重慶 401331; 2.陸軍軍醫(yī)大學第二附屬醫(yī)院消化科,重慶 400037)
根據(jù)2018年全球癌癥統(tǒng)計、2015年中國癌癥統(tǒng)計和2018年全球癌癥在線數(shù)據(jù)庫的資料,2018年中國新增癌癥病例430萬,死亡病例290萬,36.4%死于消化道癌癥[1];致癌危險因素中,環(huán)境和生活方式占40%,吸煙占24.5%,慢性感染占17%[2]。中國結(jié)直腸癌的發(fā)病率和病死率均保持上升趨勢,2015年中國癌癥統(tǒng)計數(shù)據(jù)顯示:我國結(jié)直腸癌發(fā)病率、死亡率在全部惡性腫瘤中均位居第5位,其中新發(fā)病例37.6萬,死亡病例19.1萬。城市地區(qū)遠高于農(nóng)村,結(jié)腸癌的發(fā)病率明顯上升[2]。
直腸癌患者的鼠類肉瘤病毒癌基因(KRAS)是否突變與腫瘤發(fā)病機制間具有較大的相關(guān)性,臨床研究表明結(jié)直腸癌患者的KRAS基因突變率為30%~40%;KRAS基因突變出現(xiàn)在結(jié)直腸癌的早期,患者的原發(fā)灶與轉(zhuǎn)移灶的KRAS基因突變情況基本一致[3]。將KRAS基因是否突變作為分子標志物對結(jié)直腸癌進行早期篩查,檢測結(jié)果對結(jié)直腸癌的防治具有重要意義。
PCR技術(shù)使基因突變檢測得到了較大的進展。本文采用基于擴增阻滯突變系統(tǒng)(ARMS)的熒光定量PCR技術(shù)檢測KRAS基因突變,該方法具有簡單、方便、快速和靈敏度較高等優(yōu)點,易于臨床開展。
1.1一般資料 選取陸軍軍醫(yī)大學第二附屬醫(yī)院2018年6月至2019年3月進行腸鏡檢查的患者為研究對象,診斷標準為結(jié)直腸鏡檢查+病理學診斷。將病理學診斷為腺瘤伴灶性高級別癌變的24例患者納入試驗組,將病理學診斷未見異常的12例患者納入對照組。試驗組男14例,女10例;年齡38~72歲;乙狀結(jié)腸腺瘤伴灶性高級別癌變10例,升結(jié)腸腺瘤伴灶性高級別癌變6例,直腸腺瘤伴灶性高級別癌變8例;管狀結(jié)腸腺瘤14例,絨毛狀結(jié)腸腺瘤10例。對照組男6例,女6例;年齡42~68歲。試驗組納入標準為病理學診斷為腺瘤伴高級別癌變;排除標準為診斷為非結(jié)直腸癌的其他癌癥或診斷為腸炎或腸息肉等良性病變。試驗組與對照組患者性別、年齡比較,差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。見表1。

表1 兩組一般資料比較[ n(%)]
1.2儀器與試劑
1.2.1試劑 核酸(循環(huán)DNA)提取試劑購自廈門艾德生物醫(yī)藥科技有限公司。Buffer CDL、Digest Solution、DNA Tracer、Buffer CDB、Buffer CDD、Buffer CW1(濃縮液)、Buffer CW2(濃縮液)、Buffer CDE、KRAS基因突變檢測試劑盒(熒光PCR法)均購自廈門艾德生物醫(yī)藥科技有限公司。KRAS19 PCR反應(yīng)條(引物、探針、鎂離子、dNTPs),KRAS19混合酶(Taq DNA酶、UNG酶),KRAS19陽性對照(質(zhì)粒DNA),陰性對照(純化水)。KRAS19 PCR反應(yīng)條組成:KRAS19反應(yīng)液1-11,KRAS19外控反應(yīng)液。
1.2.2儀器 Strata gene Mx3000P實時熒光定量PCR儀購自美國安捷倫公司。
1.3方法
1.3.1標本采集和保存 患者做腸鏡前,采集肘靜脈約15.0 mL(4支商品化的乙二胺四乙酸二鉀抗凝采血管),緩慢輕柔顛倒采血管6~8次(防止靜脈血凝集或溶血),3 000 r/min離心10 min,在生物安全柜內(nèi)收集上層血漿(約8.0 mL),血漿未上機檢測前于-80 ℃冰箱保存。
1.3.2標本DNA提取 按核酸提取試劑(型號:循環(huán) DNA)說明書進行操作,DNA分離完畢后,使用Nanodrop 2000測定DNA水平,DNA水平大于2 ng/μL,吸光度A260/A280為1.8~2.0。DNA提取后6 h內(nèi)未上機檢測應(yīng)保存于-20 ℃以下。
1.3.3PCR檢測流程 PCR反應(yīng)體系:DNA樣品65.8 μL,KRAS19混合酶4.2 μL,每反應(yīng)管加入混和好的PCR反應(yīng)物5 μL。KRAS19陽性對照(質(zhì)粒DNA)和陰性對照(純化水)按樣品DNA的檢測步驟操作,對PCR檢測流程進行質(zhì)量控制。后統(tǒng)一上機檢測,第1階段:95 ℃、5 min;第2階段:95 ℃ 25 s,64 ℃ 20 s,72 ℃ 20 s,循環(huán)15次;第3階段:93 ℃ 25 s,60 ℃ 35 s,72 ℃ 20 s,循環(huán)31次。第3階段60 ℃時收集FAM和HEX(或VIC)信號。
1.3.4結(jié)果判斷 確定擴增曲線的拐點位置,得到Ct值,根據(jù)Ct值把檢測結(jié)果分為陰性(Ct值≥28)、弱陽性(26≤Ct值<28)和強陽性(Ct值<26)。
1.4統(tǒng)計學處理 應(yīng)用SPSS19.0統(tǒng)計軟件進行數(shù)據(jù)分析,計數(shù)資料以例數(shù)或百分比表示,組間比較采用χ2檢驗。以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
KRAS基因19種突變檢測結(jié)果,試驗組(24例)和對照組(12例)的血漿KRAS基因的突變率都為0.00%。試驗組患者的血漿KRAS基因19種突變檢測結(jié)果見表2。

表2 試驗組患者血漿標本的KRAS基因19種突變檢測結(jié)果

續(xù)表2 試驗組患者血漿標本的KRAS基因19種突變檢測結(jié)果
KRAS基因突變檢測的常用方法包括Sanger法測序、實時熒光定量PCR技術(shù)、ARMS技術(shù)、高分辨率熔解曲線(HRM)技術(shù)等,檢測對象主要為癌變組織。Sanger法測序是檢測基因突變的金標準,丁莉等[4]對378例結(jié)直腸癌標本進行了檢測,KRAS基因突變率為34.7%;代云等[5]對265例結(jié)直腸癌患者腫瘤組織標本進行了檢測,KRAS基因突變率為32.1%;孫新超等[6]對210例結(jié)直腸癌患者腫瘤組織標本進行了檢測,KRAS基因突變率為43.8%。實時熒光定量PCR技術(shù)應(yīng)用最為廣泛,凌云等[7]檢測了304例結(jié)直腸癌石蠟包埋標本,KRAS基因突變率為38.82%;梁躍等[8]檢測了58例結(jié)直腸癌組織標本,KRAS基因突變率為29.31%;贠田等[9]檢測了389例結(jié)直腸癌組織,KRAS突變率為42.4%。毛旭華等[10]采用HRM技術(shù)檢測了60例結(jié)直腸癌患者石蠟包埋組織標本,KRAS基因突變率為36.67%(Sanger法的突變率結(jié)果為33.33%);MIRANDA等[11]采用HRM-定量PCR方法檢測了47例結(jié)直腸癌組織KRAS基因的2號外顯子突變情況,靈敏度和特異度分別為83.30% 和 96.6%,與第二代測序(NGS)法結(jié)果高度一致。
本文采用的方法基于ARMS,其原理為PCR引物的3′端末位堿基必須與其模板DNA互補才能有效擴增。這一方法需先設(shè)計等位基因的特異性PCR擴增引物,只有引物3′堿基與模板嚴格配對才能出現(xiàn)PCR擴增帶,從而檢測出突變。羅妙玲等[12]檢測了177例結(jié)直腸癌手術(shù)切除或穿刺活檢標本,KRAS基因突變率為37.9%;祝繼原等[13]檢測了144例結(jié)直腸癌患者的手術(shù)石蠟標本,KRAS基因突變率為43.06%;張瑩等[14]檢測了60例結(jié)直腸癌患者手術(shù)切除組織,KRAS基因突變率為38.3%。
本文檢測了血液標本中KRAS基因的突變情況,相關(guān)文獻較少。李學琴[15]采用酶切富集-PCR聯(lián)合焦磷酸測序技術(shù)檢測43例晚期非小細胞肺癌患者癌組織和外周血,癌組織KRAS突變率為9.30%,靜脈血KRAS突變率為6.95%。崔發(fā)強等[16]采用PCR法檢測96例原發(fā)性肝癌患者外周血,KRAS突變率為9.9%。伍潔[17]采用PCR-DNA直接測序法檢測129例原發(fā)結(jié)直腸癌組織標本和靜脈血標本,癌組織KRAS突變率為39.53%,靜脈血KRAS突變率為32.56%。BOTEZATU等[18]采用富集突變PCR-定量DNA熔解曲線分析(mePCR-qDMA)技術(shù)檢測20例結(jié)直腸癌患者的腫瘤組織和血漿KRAS基因2號外顯子12和13位密碼子突變情況,KRAS基因突變率不一致(組織為60%、血漿為25%)。
ARMS技術(shù)尚未大規(guī)模應(yīng)用于血漿標本的檢測,本研究嘗試檢測血漿中KRAS基因突變的情況,但結(jié)果未檢測出KRAS基因突變,可能原因有:(1)檢測標本例數(shù)較少;(2)結(jié)直腸癌早期(包括癌前)血液中的KRAS突變基因含量較少;(3)檢測方法的靈敏度不足以檢測到微量KRAS基因突變。
靜脈血是結(jié)直腸癌早期篩查的理想標本,但需要提升檢測方法的靈敏度;采取不同方法的聯(lián)合達到揚長避短的目的,極大提高檢測的靈敏度。