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一種基于超高效液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜同時測定大米中10種真菌毒素和殺鼠劑的檢測方法

2020-07-20 07:02:18趙健呂燕許秀琴吳銀良
浙江農(nóng)業(yè)科學(xué) 2020年7期

趙健,呂燕,許秀琴,吳銀良

(寧波市農(nóng)業(yè)科學(xué)研究院 寧波市農(nóng)產(chǎn)品質(zhì)量檢測中心,浙江 寧波 315040)

殺鼠劑和真菌毒素是可能污染糧食的2類有毒有害物質(zhì)。殺鼠劑在稻谷種植和儲藏階段被廣泛應(yīng)用,誤用或處理不當(dāng)都會造成糧食的污染[1-2]。真菌毒素在稻谷的生長過程中,尤其是在儲藏過程中,被真菌不斷地代謝出來,會造成糧食的污染。同時,部分真菌毒素還具有“三致”(致突變、致癌、致畸)作用[3-5]。因此,同時監(jiān)測稻谷是否被殺鼠劑和真菌毒素污染,對保證糧食安全具有非常積極的意義。

目前,關(guān)于殺鼠劑和真菌毒素的檢測方法在國內(nèi)外已有報道[6-7]。其中,對殺鼠劑的檢測多關(guān)注于血漿[8-9]、動物組織[10]、食品[11-13]等基質(zhì),對真菌毒素的檢測多關(guān)注于糧食[14-15]、食品[16]、中藥[17]、食品添加劑[18]等基質(zhì)。總的來看,現(xiàn)有的檢測方法多局限于殺鼠劑或真菌毒素單類藥物,使用QuECHERS-超高效液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜法同時測定殺鼠劑和真菌毒素的方法仍較少見。本研究基于現(xiàn)有研究基礎(chǔ),通過篩選和優(yōu)化提取試劑、凈化材料和液相質(zhì)譜儀器條件,建立一套基于QuECHERS-超高效液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜儀檢測大米中10種藥物(氯滅鼠、安妥、大隆、殺鼠靈、殺鼠醚、赭曲霉毒素A、赭曲霉毒素B、黃曲霉毒素B1、黃曲霉毒素B2、玉米赤霉烯酮)的方法,旨在為糧食樣品快速檢測殺鼠劑和真菌毒素提供借鑒與參考。

1 材料與方法

1.1 試驗儀器

XEVO TQ超高效液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜儀(UPLC-MS/MS),配電噴霧離子源(ESI),美國Waters;N-EVAP-24氮吹儀,美國Organomation;PL3002電子天平、XPE205天平,Mettler Toledo;KS4000ic控溫?fù)u床,德國IKA;LM3310盤式實驗粉碎磨,瑞典Perten。

1.2 試驗試劑

甲醇、乙腈、甲酸,色譜純,德國Merck;硅膠、N-丙基乙二胺(PSA),上海安譜科學(xué)儀器;多壁碳納米管,南京先豐納米材料科技有限公司。

氯滅鼠、安妥、大隆、殺鼠靈、殺鼠醚購于德國Dr. Ehrenstorfer,赭曲霉毒素A(OTA)、黃曲霉毒素B2(AFB2)、赭曲霉毒素B(OTB)、黃曲霉毒素B1(AFB1)、玉米赤霉烯酮購于加拿大TRC,以上物質(zhì)的純度均大于95%。樣品粉碎,-20 ℃儲存。

1.3 溶液配制

儲備液:稱取適量固體標(biāo)樣,用乙腈溶解,配成100 mg·L-1的儲備液,-20 ℃保存。

工作液:取儲備液用基質(zhì)空白依次稀釋至適當(dāng)濃度,現(xiàn)配現(xiàn)用。

提取溶液:乙腈-水-甲酸混合溶液,三者體積比為80∶19∶1。

1.4 樣品提取與凈化

稱取粉碎后的大米樣品2.50 g,置于50 mL塑料離心管中,加入10 mL提取溶液,放勻漿儀上12 000g勻漿2 min,振蕩15 min后超聲2 min,9 500g離心5 min。準(zhǔn)確移取4.00 mL上清液至裝有80 mg PSA的10 mL塑料離心管中,渦旋1 min,9 500g離心3 min,準(zhǔn)確移取2.50 mL凈化溶液于另一個10 mL試管中,在氮氣流下40 ℃水浴濃縮近干,殘液用1 mL乙腈-0.1%甲酸水溶液(體積比1∶1)共1 mL溶解,12 500g離心3 min,待測。

1.5 液相條件

色譜柱,Acquity UPLC BEH Shield RP18 2.1 mm×100 mm,1.7 μm;進(jìn)樣體積,10 μL;色譜柱溫度,40 ℃;樣品室溫度,20 ℃;流動相A,乙腈;流動相B,0.1%(體積分?jǐn)?shù))甲酸水溶液。

梯度洗脫程序:0 min,流速0.4 mL·min-1,流動相A,20%(體積分?jǐn)?shù),下同),流動相B,80%;1 min,流速0.4 mL·min-1,流動相A,20%,流動相B,80%;3 min,流速0.4 mL·min-1,流動相A,50%,流動相B,50%;5 min,流速0.4 mL·min-1,流動相A,90%,流動相B,10%;9 min,流速0.4 mL·min-1,流動相A,90%,流動相B,10%;9.1 min,流速0.4 mL·min-1,流動相A,20%,流動相B,80%;12 min,流速0.4 mL·min-1,流動相A,20%,流動相B,80%。

1.6 質(zhì)譜條件

離子源,電噴霧離子源(ESI+和ESI-同時掃描);檢測方式,多反應(yīng)監(jiān)測;電離電壓,2.50 kV;霧化氣流速,1 000 L·h-1;錐孔氣流速,30 L·h-1;離子源溫度,150 ℃;霧化溫度,500 ℃。各化合物的質(zhì)譜條件如下:氯滅鼠,定性離子對343.0/120.9(m/z,下同),定量離子對343.0/284.9,錐孔電壓24 V,碰撞能量40、20 V;安妥,定性離子對203.1/127.3,定量離子對203.1/144.0,錐孔電壓26 V,碰撞能量30、16 V;大隆,定性離子對521.3/78.9,定量離子對521.3/135.1,錐孔電壓-68 V,碰撞能量-34、-38 V;殺鼠靈,定性離子對307.3/250.1,定量離子對307.3/161.0,錐孔電壓-36 V,碰撞能量-18、-22 V;殺鼠醚,定性離子對291.2/106.0,定量離子對291.1/141.0,錐孔電壓-42 V,碰撞能量-26、-28 V;OTA,定性離子對404.5/358.1,定量離子對404.5/239.1,錐孔電壓25 V,碰撞能量25、14 V;OTB,定性離子對370.2/187.1,定量離子對370.2/205.1,錐孔電壓22 V,碰撞能量36、18 V;AFB1,定性離子對313.2/241.1,定量離子對313.2/213.1,錐孔電壓46 V,碰撞能量46、38 V;AFB2,定性離子對315.3/287.1,定量離子對315.3/259.1,錐孔電壓46 V,碰撞能量28、24 V;玉米赤霉烯酮,定性離子對317.3/149.0,定量離子對317.3/175.0,錐孔電壓-44 V,碰撞能量-20、-26 V。

2 結(jié)果與分析

2.1 方法優(yōu)化

2.1.1 提取溶劑選擇

大米樣品含水量較少,提取溶液需加入水相以提高回收率。此外,10種藥物均可溶解于乙腈和甲醇中,但它們結(jié)構(gòu)差異較大,部分藥物還含有酸堿性基團(tuán)。為保證所有藥物的回收率,采用在乙腈和甲醇中加入少量水或者甲酸水溶液作為提取液的思路。這樣做也有利于濃縮,提高定量限。為此,通過試驗考查了乙腈-水(體積比80∶20)、甲醇-水(體積比80∶20)、乙腈-水-甲酸(體積比80∶19∶1)、甲醇-水-甲酸(體積比80∶19∶1)4種提取溶液對10種藥物的回收率和提取效果,并通過基質(zhì)匹配的外標(biāo)法進(jìn)行計算。結(jié)果表明:當(dāng)使用沒有甲酸的提取溶液進(jìn)行提取時,OTA和OTB等藥物的回收率在50%以下;當(dāng)使用含有甲酸的提取溶液進(jìn)行提取時,所有藥物的回收率均在70~120%。鑒于乙腈比甲醇能更好地去除大米中的蛋白質(zhì),最終選擇乙腈-水-甲酸(體積比80∶19∶1)作為提取溶劑。

2.1.2 凈化材料選擇

凈化過程,既要兼顧藥物的回收率,又要考慮除去提取液中更多的雜質(zhì),減少基質(zhì)效應(yīng)和樣液中雜質(zhì)對儀器的污染。因大米含有豐富的糖和蛋白質(zhì),為取得較好的回收率,分別選用硅膠、PSA和多壁碳納米管作為填料,以期使用簡便的方式,取得較佳的凈化效果。結(jié)果表明:以硅膠作為凈化材料時,安妥、大隆等藥物的回收率低于60%;以多壁碳納米管作為凈化材料時,AFB1、AFB2等藥物的回收率低于50%,其他8種藥物回收率均在70%以上;以PSA作為凈化材料時,當(dāng)4.00 mL乙腈-水-甲酸(體積比80∶19∶1)提取溶液中使用80 mg填料時凈化效果最好,10種藥物的回收率在70%~120%。

2.1.3 色譜條件優(yōu)化

流動相的選擇,關(guān)系到樣品的分離度和離子化效果。10種藥物的結(jié)構(gòu)差異較大,需正、負(fù)離子同時掃描。為提高藥物的電離度,得到更好的靈敏度,試驗對比了甲醇-水、乙腈-水、甲醇-0.1%甲酸水溶液、乙腈-0.1%甲酸水溶液4套體系,通過調(diào)整有機(jī)相和水相的梯度,使液相條件最佳。結(jié)果表明,甲醇、乙腈加水作為流動相時,OTA等幾種藥物的峰形較寬;而加入甲酸的流動相,10種藥物均能得到較好的峰形。有機(jī)相為乙腈時,10種藥物的靈敏度和峰形均優(yōu)于以甲醇為有機(jī)相時,所以選擇乙腈-0.1%甲酸水溶液體系。

2.1.4 質(zhì)譜條件優(yōu)化

根據(jù)10種藥物的理化性質(zhì),大隆、殺鼠醚、殺鼠靈和玉米赤霉烯酮的電離化模式為ESI-,其他藥物的電離化模式為ESI+。應(yīng)用儀器自帶的工作站自動優(yōu)化質(zhì)譜參數(shù),最終建立10種藥物的多反應(yīng)檢測掃描(MRM)方法。

2.2 方法學(xué)驗證

2.2.1 基質(zhì)效應(yīng)

大米營養(yǎng)組分豐富,雖然提取溶液經(jīng)過凈化,但是樣液中未凈化雜質(zhì),仍有可能對藥物產(chǎn)生基質(zhì)效應(yīng),從而影響最終的檢測結(jié)果。為驗證上述方法最終上機(jī)溶液的基質(zhì)效應(yīng),對用溶劑和基質(zhì)空白分別配制的系列混合標(biāo)準(zhǔn)工作溶液進(jìn)行比較,配制的系列濃度范圍為2~100 μg·L-1。表1列出了10種藥物的基質(zhì)標(biāo)液與溶劑標(biāo)液線性回歸方程的斜率比,結(jié)果顯示,氯滅鼠、玉米赤霉烯酮等幾種農(nóng)藥的斜率比超出0.8~1.2的閾值,說明大米樣液中仍有較強的基質(zhì)效應(yīng)。為此,最終選擇基質(zhì)標(biāo)液定量。

表1 溶劑標(biāo)液和基質(zhì)標(biāo)液的線性回歸方程和斜率比

2.2.2 定量限和線性關(guān)系

用大米基質(zhì)空白配制10種真菌毒素和殺鼠劑的混合標(biāo)液,質(zhì)量濃度依次為2、5、10、20、100 μg·L-1。結(jié)果表明,當(dāng)質(zhì)量濃度為2~100 μg·L-1,10種藥物的回歸曲線的決定系數(shù)(R2)在0.991 0~0.999 8,線性關(guān)系良好。開展大米空白樣品添加試驗,以10倍信噪比時的添加濃度為方法定量限,結(jié)果如表2所示,10種藥物的定量限在0.5~2.5 μg·kg-1。

2.2.3 回收率與精密度

稱取不含10種真菌毒素和殺鼠劑的大米樣品,添加混合標(biāo)樣,添加濃度(質(zhì)量分?jǐn)?shù))分別為8、20、100 μg·kg-1,每個水平做5次平行。結(jié)果顯示,10種藥物的平均回收率為75.2%~110.0%,相對標(biāo)準(zhǔn)偏差為1.4%~10.7%(表2)。

表2 10種藥物的添加回收率、相對標(biāo)準(zhǔn)偏差和定量限

3 小結(jié)

建立起一套可實現(xiàn)10種殺鼠劑和真菌毒素藥物同時提取、QuECHERS方法同時凈化、超高效液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜儀同時檢測的方法,經(jīng)驗證,所建立的方法簡單,快速,重現(xiàn)性好,適用于大米中氯滅鼠、安妥、大隆、殺鼠靈、殺鼠醚、赭曲霉毒素A、赭曲霉毒素B、黃曲霉毒素B1、黃曲霉毒素B2、玉米赤霉烯酮等10種藥物的定性定量快速檢測。

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