史宜正,劉 毅,徐志鵬,傅 強(qiáng)
解放軍總醫(yī)院第一醫(yī)學(xué)中心 麻醉手術(shù)中心,北京 100853
血腦屏障(biood brain barrier,BBB)是由腦微血管內(nèi)皮細(xì)胞、基膜、星形膠質(zhì)細(xì)胞足突以及細(xì)胞間緊密連接(tight junction,TJs)組成的重要結(jié)構(gòu)。一旦遭到破壞,外界的有害物質(zhì)極易進(jìn)入中樞神經(jīng)系統(tǒng),導(dǎo)致中樞神經(jīng)系統(tǒng)病變[1-3]。鑒于體內(nèi)血腦屏障觀察的不便性,體外血腦屏障模型對(duì)多種中樞神經(jīng)系統(tǒng)疾病研究具有重要意義。目前已有多種建立體外血腦屏障的方法[4-5],如體外培養(yǎng)單層腦內(nèi)皮細(xì)胞、內(nèi)皮細(xì)胞與星形膠質(zhì)細(xì)胞共培養(yǎng),研究表明單獨(dú)培養(yǎng)內(nèi)皮細(xì)胞的模型會(huì)喪失血腦屏障部分功能,而與星形膠質(zhì)細(xì)胞聯(lián)合培養(yǎng)則可恢復(fù)部分功能[6],可見星形膠質(zhì)細(xì)胞在誘導(dǎo)血腦屏障發(fā)揮特性中起重要作用。脂多糖(lipopolysaccharide,LPS)是革蘭陰性細(xì)菌細(xì)胞壁外壁的組成成分,腹腔或局部腦室注射LPS可以促進(jìn)腦內(nèi)炎性因子的釋放及神經(jīng)元凋亡,常用來模擬中樞神經(jīng)系統(tǒng)炎癥反應(yīng)[7-8]。本實(shí)驗(yàn)通過建立體外血腦屏障模型,并利用LPS進(jìn)行處理,模擬中樞神經(jīng)系統(tǒng)炎癥反應(yīng),探究其對(duì)血腦屏障功能的影響,為進(jìn)一步探究血腦屏障在中樞炎癥產(chǎn)生機(jī)制中的作用提供思路。
1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 出生1 ~ 3 d C57BL乳鼠,雌雄不限,由北京華阜康生物科技股份有限公司提供,動(dòng)物許可證編號(hào):SCXK(京)2014-0004。
2 設(shè)備與試劑 二氧化碳培養(yǎng)箱(MCO-170AIUVL-PC),超凈臺(tái)(北京亞泰科隆儀器技術(shù)有限公司),倒置相差顯微鏡(德國(guó)Leica公司),流式細(xì)胞儀(美國(guó)BD公司),冷恒溫振蕩器(太倉市強(qiáng)樂實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司),上皮電阻電壓儀RE1600(中國(guó)北京金工鴻泰科技有限公司 ),Mini Gel Tank(美國(guó) Invitrogen 公司 ),電泳儀電源(DYY-5D中國(guó)北京六一儀器廠),脫色搖床(WD-94505D中國(guó)北京六一生物科技有限公司),化學(xué)發(fā)光儀(中國(guó)北京西沖生物科技有限 公 司 ),NuPAGETM4-12% Bis-Tris Gel(美 國(guó)Invitrogen公司 ),Transwell小室 (美國(guó) Coring公司),bEND.3小鼠腦微血管內(nèi)皮細(xì)胞(武漢普諾賽生物科技有限公司),DMEM培養(yǎng)液(美國(guó)Gibco公司 ),Phosphote Buffered Saline(美國(guó) HyClone公司),胎牛血清(德國(guó)PAN公司),鏈霉素/青霉素(美國(guó)HyClone公司),胰蛋白酶(美國(guó)Gibco公司),內(nèi)皮細(xì)胞培養(yǎng)套裝(美國(guó)Sigma公司),DifoTMSkim Milk(美國(guó)BD公司)兔抗膠質(zhì)纖維酸性蛋白多克隆抗體(美國(guó)Sigma公司),F(xiàn)ITC標(biāo)記的羊抗兔IgG(美國(guó)Jackson ImmunoReaserarch公司),脂多糖(美國(guó)Sigma公司),NuPAGE MOPS SDS Running Buffer(美 國(guó) Invitrogen公 司 ),NuPAGE Transfer Buffer(美國(guó) Invitrogen公司 ),RIPA 高效裂解液(美國(guó)Solarbio公司),兔抗小鼠Occludin抗體(美國(guó)Abcom公司),兔抗小鼠ZO-1抗體(美國(guó)Invitrogen公司),兔抗小鼠GADPH抗體(美國(guó)Abcom公司),辣根過氧化物酶(horseradish peroxidase,HRP)標(biāo)記山羊抗兔IgG(H+L)(中國(guó)武漢博士德生物工程有限公司)。
3 bEND.3小鼠腦微血管內(nèi)皮細(xì)胞的培養(yǎng) 鏡下觀察bEND.3小鼠腦微血管內(nèi)皮細(xì)胞生長(zhǎng)狀態(tài)后置于二氧化碳孵育箱中穩(wěn)定3 h以進(jìn)行傳代處理。吸取培養(yǎng)瓶中培養(yǎng)液,加入一定量的0.25%胰蛋白酶消化3 min。消化成功后加入等量的內(nèi)皮細(xì)胞完全培養(yǎng)基(DMEM基礎(chǔ)培養(yǎng)基+10%胎牛血清+5% PS)重懸混勻后置于離心機(jī)以1 200 r/min離心5 min。去除上清加入10 ml內(nèi)皮細(xì)胞完全培養(yǎng)基重懸混勻后傳至2個(gè)25 cm2培養(yǎng)瓶中,每隔2 d換液以備后續(xù)實(shí)驗(yàn)使用。
4 小鼠原代星形膠質(zhì)細(xì)胞培養(yǎng) 將出生1 ~ 3 d的10只C57BL乳鼠用75%乙醇消毒全身后,斷頭取腦。所取腦組織放入預(yù)冷PBS中并去除軟腦膜、海馬及其他腦組織部分,剩余皮質(zhì)部分放入新EP管內(nèi)。使用1 000μl槍頭反復(fù)吹打3次組織后轉(zhuǎn)移至15 ml離心管內(nèi)加入8 ml 0.25%胰蛋白酶,37℃恒溫振蕩消化30 min。完全消化后加入等量星形膠質(zhì)細(xì)胞完全培養(yǎng)基(DMEM基礎(chǔ)培養(yǎng)基+10%胎牛血清+1% PS)終止消化。以1 200 r/min離心5 min后去除上清,加入完全培養(yǎng)基重懸后種于2個(gè)25 cm2培養(yǎng)瓶中。24 h后換液,此后可每2 d換液[9-10]。7 ~ 8 d后,星形膠質(zhì)細(xì)胞匯聚,小膠質(zhì)細(xì)胞覆蓋于星形膠質(zhì)細(xì)胞層之上,此時(shí)將培養(yǎng)瓶置于恒溫?fù)u床上180 r/min搖晃30 min。去除含有小膠質(zhì)細(xì)胞的上清,換液后在孵箱穩(wěn)定1 h后繼于恒溫?fù)u床上續(xù)以240 r/min搖晃6 h,然后人工劇烈搖晃1 min,以去除含有少突膠質(zhì)前體細(xì)胞的上清。鏡下觀察細(xì)胞生存狀態(tài)后用胰蛋白酶消化貼壁細(xì)胞,種于新培養(yǎng)板內(nèi)以備后續(xù)實(shí)驗(yàn)使用。
5 流式細(xì)胞術(shù)鑒定星形膠質(zhì)細(xì)胞 通過檢測(cè)膠質(zhì)纖維酸性蛋白的表達(dá)以判斷星形膠質(zhì)細(xì)胞陽性率。待測(cè)細(xì)胞根據(jù)細(xì)胞計(jì)數(shù)結(jié)果加入PBS充分重懸后等量放于兩個(gè)流式管內(nèi),一組加入兔抗膠質(zhì)纖維酸性蛋白多克隆抗體(1∶500),另一組加入等量PBS,室溫避光孵育30 min。一抗孵育結(jié)束后1 200 r/min離心5 min去上清,加入PBS再次重懸清洗兩次。清洗結(jié)束后加入FITC標(biāo)記的羊抗兔IgG(1∶100)室溫避光孵育30 min。孵育結(jié)束后使用PBS清洗細(xì)胞兩次后上機(jī)檢測(cè)。
6 體外血腦屏障模型的建立 將上述培養(yǎng)的原代星形膠質(zhì)細(xì)胞以2.75×104/孔的細(xì)胞密度種于Transwell小室背面,倒置培養(yǎng)3 h后加入500μl星形膠質(zhì)細(xì)胞完全培養(yǎng)基并正置培養(yǎng)2 d后,以6.6×104/孔的細(xì)胞密度將內(nèi)皮細(xì)胞種于小室內(nèi)。1 ~ 2 d更換兩種細(xì)胞培養(yǎng)基使其穩(wěn)定生長(zhǎng)待后續(xù)處理。
7 4 h液面滲漏試驗(yàn) 更換Transwell小室內(nèi)外側(cè)培養(yǎng)基,使內(nèi)外側(cè)液面相差>0.5 cm,放置二氧化碳孵箱孵育4 h后再次測(cè)量液面差,若4 h后液面仍相差>0.5 cm(波動(dòng)浮動(dòng)<0.1 cm),則可初步判斷體外血腦屏障模型建立成功。
8 跨內(nèi)皮細(xì)胞電阻(trans-epithelium electrical resistant,TEER)測(cè)定 待Transwell小室中微血管內(nèi)皮細(xì)胞接種7 d后,采用中國(guó)北京金工鴻泰科技有限公司提供的上皮電阻電壓儀檢測(cè)TEER值,方法遵循說明書。TEER值可反映小離子通透物理屏障的電阻抗,是測(cè)定血腦屏障完整性敏感準(zhǔn)確的指標(biāo),TEER值下降說明血腦屏障完整性下降,遭到破壞。
9 脂多糖處理方法 實(shí)驗(yàn)共分為三種細(xì)胞:bEND.3小鼠腦微血管內(nèi)皮細(xì)胞、原代星形膠質(zhì)細(xì)胞和共培養(yǎng)模型細(xì)胞。每種細(xì)胞均分為兩組:對(duì)照組和LPS處理組。每組細(xì)胞更換新鮮無血清培養(yǎng)基后LPS處理組以20μg/ml的藥物濃度處理24 h,對(duì)照組則加入等量PBS。24 h后收集細(xì)胞待后續(xù)實(shí)驗(yàn)使用。
10 Western Blot檢測(cè)血腦屏障相關(guān)蛋白Occludin、ZO-1相對(duì)蛋白表達(dá)量 每組細(xì)胞經(jīng)LPS處理完畢后使用預(yù)冷PBS進(jìn)行清洗3次,吸凈所有液體后均加入100μl RIPA高效裂解液進(jìn)行細(xì)胞蛋白提取,冰上裂解10 min利用細(xì)胞刮匙收集細(xì)胞,4℃12 500 g 15 min取上清。使用BCA法測(cè)定細(xì)胞濃度后,PBS稀釋細(xì)胞蛋白濃度至2μg/μl。蛋白經(jīng)過10 min 70℃變性冷卻后備用。利用Mini Gel Tank電泳系統(tǒng)進(jìn)行電泳,每孔上樣量為10μl,電泳條件為4℃150 mA 90 min,待目的條帶分離開后利用Mini Gel Tank轉(zhuǎn)膜系統(tǒng)進(jìn)行轉(zhuǎn)膜,轉(zhuǎn)膜條件為4℃ 250 mA 1 h。轉(zhuǎn)膜成功后使用5%脫脂牛奶室溫封閉1 h,封閉結(jié)束后使用TBST清洗PVDF膜后分別孵育三種一抗:GADPH兔抗小鼠一抗(1∶1 000)、Occludin兔抗小鼠一抗(1∶1 000)和ZO-1兔抗小鼠一抗(1∶1 000)。4℃過夜孵育后,TBST清洗PVDF膜3次,每次10 min,加入山羊抗兔IgG(H+L)多克隆抗體(1∶5 000),室溫孵育1 h。TBST清洗PVDF膜3次,每次5 min。化學(xué)增強(qiáng)發(fā)光法(ECL)顯色,所得條帶使用Image J進(jìn)行灰度值分析,以目的蛋白的灰度值與GADPH的灰度值之比半定量分析目的蛋白表達(dá)量。
11 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 使用Graphpad7.0進(jìn)行統(tǒng)計(jì)及作圖,所有數(shù)據(jù)以-x±s表示,兩組間比較采用t檢驗(yàn),P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
1 小鼠星形膠質(zhì)細(xì)胞原代培養(yǎng)鑒定 培養(yǎng)1 d后即可觀察到少許貼壁細(xì)胞有粗短伸展,3 ~ 4 d后細(xì)胞即可長(zhǎng)滿60%,形態(tài)呈不規(guī)則狀,胞體肥大,邊界清晰,相互連接成網(wǎng)狀。7 d后細(xì)胞可鋪滿呈片,經(jīng)過提純后可觀察部分細(xì)胞脫落,貼壁細(xì)胞胞體較大,可呈三角形、梭形等不規(guī)則形態(tài);突起粗短符合星形膠質(zhì)細(xì)胞形態(tài)(圖1)。流式細(xì)胞術(shù)鑒定后,96%細(xì)胞為陽性細(xì)胞(圖2)。

圖1 倒置顯微鏡下小鼠原代星形膠質(zhì)細(xì)胞(200倍)Fig. 1 Morphology of primary astrocytes in mice under inverted microscope (200×)
2 體外血腦屏障模型建立鑒定 1) 4 h液面滲漏試驗(yàn)結(jié)果:4 h孵育后,Transwell小室內(nèi)外側(cè)仍可觀察到明顯的液面差>0.5 cm,說明細(xì)胞層間形成屏障,初步判斷血腦屏障模型建成(圖3)。2)單層培養(yǎng)的微血管內(nèi)皮細(xì)胞TEER值為(26.00±0.28) Ωcm2(n=5),微血管內(nèi)皮細(xì)胞與原代星形膠質(zhì)細(xì)胞共培養(yǎng)模型TEER值為(34±0.82) Ωcm2(n=5),明顯高于單層培養(yǎng)微血管內(nèi)皮細(xì)胞。
3 三種細(xì)胞分別經(jīng)LPS處理后TEER測(cè)定 與對(duì)照組相比,三種細(xì)胞分別經(jīng)LPS處理后TEER值均顯著降低(P<0.05)(表1)。
4 三種細(xì)胞分別經(jīng)LPS處理后Occludin、ZO-1蛋白相對(duì)表達(dá)量 與對(duì)照組相比,三種細(xì)胞分別經(jīng)LPS處理后與Occludin、ZO-1蛋白相對(duì)表達(dá)量均有顯著降低(P<0.05)(圖4、圖5)。

圖2 流式細(xì)胞學(xué)分析小鼠原代星形膠質(zhì)細(xì)胞純度Fig. 2 Flow cytometry analysis of primary astrocyte purity in mice

圖3 4 h液面滲漏試驗(yàn)前(A)、 試驗(yàn)后(B)結(jié)果Fig. 3 Result of liquid level leakage test at 4 h A: Before liquid level leakage test; B: After liquid level leakage test

表1 三種細(xì)胞分別經(jīng)LPS處理后TEER測(cè)量結(jié)果Tab. 1 TEER measurement results of three types of cells in the control group and the LPS group (Ωcm2)

圖4 Western blot檢測(cè)LPS處理后三種細(xì)胞Occludin蛋白相對(duì)表達(dá)量(aP<0.05, vs對(duì)照組, n=6)Fig.4 Relative expression of Occludin in three types of cells treated with LPS by western blot (aP<0.05, vs control, n=6)

圖5 Western blot檢測(cè)LPS處理后三種細(xì)胞ZO-1蛋白相對(duì)表達(dá)量(aP<0.05, bP<0.01, vs 對(duì)照組, n=6)Fig. 5 Relative expression of ZO-1 in three types of cells treated with LPS by western blot (aP<0.05, bP<0.01, vs control, n=6)
血腦屏障在維持中樞神經(jīng)系統(tǒng)內(nèi)環(huán)境中發(fā)揮重要作用,研究表明許多神經(jīng)系統(tǒng)病變均與血腦屏障改變密切相關(guān)[11-12]。因而體外建立血腦屏障模型對(duì)研究中樞神經(jīng)系統(tǒng)疾病發(fā)病機(jī)制具有重要意義。本實(shí)驗(yàn)將腦微血管內(nèi)皮細(xì)胞與星形膠質(zhì)細(xì)胞共培養(yǎng)于Transwell小室的培養(yǎng)方法構(gòu)建的血腦屏障模型,更接近體內(nèi)血腦屏障結(jié)構(gòu)及功能,更具有臨床意義。星形膠質(zhì)細(xì)胞原代分離培養(yǎng)大多采用消化法分離[9]。本實(shí)驗(yàn)同樣采用相同方法對(duì)星形膠質(zhì)細(xì)胞進(jìn)行分離,并且僅用0.25%胰蛋白酶進(jìn)行消化,同時(shí)根據(jù)多次預(yù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果,在消化期間采用恒溫37℃振蕩消化細(xì)胞而非傳統(tǒng)水浴鍋,可在一定程度上減少細(xì)菌污染的可能性,后經(jīng)流式細(xì)胞術(shù)鑒定細(xì)胞純度為96%,滿足共培養(yǎng)要求。在動(dòng)物模型中,血腦屏障通透性常利用尾靜脈注射伊文思藍(lán)后進(jìn)行檢測(cè),或電鏡下直接觀察血腦屏障結(jié)構(gòu)改變。而在建立體外血腦屏障模型時(shí),為了可以簡(jiǎn)捷、準(zhǔn)確判斷模型是否成功,4 h液面滲透試驗(yàn)是較常使用方法,若4 h前后Transwell內(nèi)外液面可保持基本不變,則可初步判斷體外血腦屏障模型的成功建立。跨內(nèi)皮細(xì)胞電阻同樣可以準(zhǔn)確、便捷地評(píng)價(jià)血腦屏障緊密連接功能,數(shù)值越大,血腦屏障功能越好[13-14]。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,bEND.3小鼠腦微血管內(nèi)皮細(xì)胞與原代小鼠星形膠質(zhì)細(xì)胞構(gòu)成的共培養(yǎng)模型TEER為(34.00±0.82) Ωcm2,而單層bEND.3小鼠腦微血管內(nèi)皮細(xì)胞TEER僅為(26.00±0.82) Ωcm2,可進(jìn)一步說明共培養(yǎng)模型已成功建立。
原代小鼠星形膠質(zhì)細(xì)胞、bEND.3小鼠腦微血管內(nèi)皮細(xì)胞及共培養(yǎng)模型細(xì)胞三種細(xì)胞分別經(jīng)LPS處理后,與各自對(duì)照組相比,TEER值均降低(P<0.05)說明LPS處理后引起血腦屏障功能受損。細(xì)胞間緊密連接作為構(gòu)成血腦屏障的另一主要結(jié)構(gòu),通過諸多研究表明緊密連接蛋白結(jié)構(gòu)、分布及含量的變化均會(huì)影響TJs,從而影響血腦屏障通透性[15]。咬合蛋白Occudin和胞質(zhì)附著蛋白ZO-1則是其中兩種經(jīng)典且重要的緊密連接蛋白,兩者相互連接形成TJs基礎(chǔ)結(jié)構(gòu)[16]。Occudin是構(gòu)成TJs的基礎(chǔ)蛋白之一,其主要是柵欄功能和細(xì)胞旁屏障功能[17],其表達(dá)水平降低可直接破壞TJs的穩(wěn)定性,導(dǎo)致血腦屏障功能的降低。胞質(zhì)附著蛋白ZO-1同樣是維持TJs結(jié)構(gòu)完整穩(wěn)定主要蛋白之一,其表達(dá)水平下降同樣也標(biāo)志著血腦屏障功能的降低[18]。本實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),原代小鼠星形膠質(zhì)細(xì)胞、bEND.3小鼠腦微血管內(nèi)皮細(xì)胞及共培養(yǎng)模型細(xì)胞分別經(jīng)LPS處理后,與對(duì)照組相比Occudin、ZO-1蛋白表達(dá)量均顯著下降(P<0.05),進(jìn)一步說明LPS處理后會(huì)破壞血腦屏障功能。
LPS作用于細(xì)胞膜表面的Toll樣受體(Tolllike receptor 4)引起中樞、外周細(xì)胞因子升高同時(shí)激活下丘腦-垂體-腎上腺軸,引起的體內(nèi)免疫炎癥反應(yīng)釋放大量炎性因子如IL-1β、IL-6、TNF等[19-21]。多種中樞神經(jīng)系統(tǒng)疾病如阿爾茨海默病、會(huì)不斷促進(jìn)炎性因子的釋放,產(chǎn)生慢性炎癥,不斷損傷神經(jīng)元,破壞神經(jīng)系統(tǒng)功能[22-25],可以說中樞神經(jīng)系統(tǒng)炎癥反應(yīng)是多種神經(jīng)系統(tǒng)疾病共同的病理生理改變,明確中樞神經(jīng)系統(tǒng)炎癥反應(yīng)產(chǎn)生機(jī)制可以為治療神經(jīng)系統(tǒng)疾病提供新思路。血腦屏障作為隔絕中樞神經(jīng)系統(tǒng)和外界的天然屏障,是否在中樞神經(jīng)系統(tǒng)炎癥反應(yīng)產(chǎn)生中起重要作用目前無定論。根據(jù)本實(shí)驗(yàn)結(jié)果,組成血腦屏障微血管內(nèi)皮細(xì)胞和星形膠質(zhì)細(xì)胞較對(duì)照組TEER值均明顯降低,Occludin和ZO-1兩種血腦屏障相關(guān)連接蛋白表達(dá)量也明顯下降,說明LPS誘導(dǎo)的中樞神經(jīng)炎癥反應(yīng)可能首先影響這兩種組成血腦屏障結(jié)構(gòu)的細(xì)胞,破壞TJs完整性及穩(wěn)定性,影響其生理結(jié)構(gòu)后導(dǎo)致整個(gè)血腦屏障功能減弱,而血腦屏障功能減弱是否會(huì)加劇中樞神經(jīng)系統(tǒng)炎癥反應(yīng)的進(jìn)展,導(dǎo)致中樞神經(jīng)系統(tǒng)疾病的產(chǎn)生,值得進(jìn)一步研究。
總之,LPS誘導(dǎo)的中樞神經(jīng)系統(tǒng)炎癥反應(yīng)會(huì)降低血腦屏障跨內(nèi)皮細(xì)胞電阻及血腦屏障相關(guān)連接蛋白表達(dá)量,削弱血腦屏障功能。