孫夏榮,葛曉明,王建花
(江蘇省南京市食品藥品監督檢驗院,江蘇 南京 211198)
黃曲霉毒素(aflatoxins)是由黃曲霉和寄生曲霉中某些產菌毒株產生的雙呋喃環類毒素,是迄今發現的毒性最大的真菌毒素,常見有 B1,B2,G1,G24 種,其中以黃曲霉毒素B1的毒性最大、致癌性最強,其毒性相當于氰化鉀的10倍、砒霜的68倍,已被世界衛生組織(WHO)的癌癥研究機構(IARC)劃定為Ⅰ類致癌物,是一種毒性極強的劇毒物質[1-4]。中藥材及其制劑在儲存過程中常會發生霉變,產生很多對人體有害的真菌毒素[5-6],2015年版《中國藥典(一部)》已規定了部分中藥材品種黃曲霉毒素B1的限量不得超過5 μg/kg、黃曲霉毒素B1,B2,G1,G2的總量不得超過 10 μg /kg[7]。
目前,文獻報道的黃曲霉毒素檢測方法主要有薄層色譜(TLC)法[8]、酶聯免疫(ELISA)法[9]、高效液相色譜(HPLC)法[10-11]、液相色譜 - 串聯質譜(LC-MS /MS)法[12-13]等。樣品的前處理方面,現行《中國藥典》執行的標準為免疫親和柱凈化法聯用色譜技術,由于免疫親和柱填料大多采用進口填料,單根免疫親和柱售價約為100元,若長期使用則相關檢測成本較高。LC-MS/MS法專屬性好、靈敏度高、抗干擾強,能有效排除假陽性的干擾,適合在復雜基質下同時篩查痕量的多種黃曲霉毒素。
QuEChERS(quick,easy, cheap,effective, rugged,safe)是由美國農業部的化學家ANASTASSIADAS等于2003年提出的一種快速樣品前處理技術[14-15],用于農藥殘留的檢測。該方法具有分析快速、回收率高、精確度和準確度好、使用溶劑量少、污染少、操作簡便等優點,近年來主要用于農產品和食品的各項檢測中,但在藥品的檢測中應用較少。本研究中采用基于QuEChERS原理的樣品前處理的快速提取方法,結合超高效液相色譜(UPLC)-MS/MS法,建立中藥飲片中4種黃曲霉毒素(AFB1,AFB2,AFG1,AFG2)的檢測方法,提供一種不使用免疫親和柱的黃曲霉毒素的檢測思路,為藥品的監管提供有效的技術支撐。現報道如下。
Agilent 6470型三重四極桿串聯質譜聯用儀,包括電噴霧離子化源(ESI)、MassHunter數據處理系統(美國安捷倫公司);CPA225D型電子天平(德國Sartorius公司,精度為十萬分之一);渦旋混勻器(德國維根公司);X-30R型冷凍離心機(德國 Beckman公司);Milli-Q型超純水系統(美國默克公司);N-EVAP 24型氮吹儀(美國 Organomation公司);KQ-250B型超聲波清洗器(昆山市超聲儀器有限公司,功率為250 W,頻率為 30 kHz)。
甲醇、乙腈(色譜純,Honeywell公司);甲酸、乙酸銨(色譜純,Aladdin公司);無水硫酸鎂(分析純,國藥集團化學試劑有限公司);氯化鈉(分析純,南京化學試劑股份有限公司);水為超純水;黃曲霉毒素混合對照品 ( 批 號 為 610001-201804), AFB1,AFB2,AFG1,AFG2含量分別為 0.93,0.30,0.93,0.35 μg /mL,均購自中國食品藥品檢定研究院;陳皮、大棗、柏子仁均為市售樣品或抽樣樣品。
2.1.1 液相色譜條件
色譜柱:Agilent Eclipse XDB C18RRHD柱(50 mm×2.1 mm,1.8 μm);流動相:2 mmoL /L 乙酸銨溶液(含0.1%甲酸,流動相A)-乙腈(流動相B),按表1進行梯度洗脫;流速:0.3 mL /min;柱溫:30 ℃;進樣量:2 μL。

表1 流動相梯度洗脫程序
2.1.2 質譜條件
離子源模式(ESI):正離子模式;毛細管電壓4 000;霧化器流速:9 L/min;干燥器溫度:325℃;霧化器壓力:40 psi(1 psi= 6.89 kPa);鞘氣溫度:350 ℃ ;鞘氣流量:11 L/min;掃描模式:動態多反應離子監測(DMRM)。相關質譜采集參數見表2。
分別精密量取黃曲霉毒素混合對照品1 mL,置20 mL容量瓶中,用70%甲醇溶液稀至刻度,搖勻,作為標準貯備液。精密量取標準貯備液適量,用70%甲醇溶 液 稀 釋 成 每 1 mL 含 AFB1,AFG10.093, 0.465,0.930, 1.860, 3.720, 9.300 ng, AFB20.030, 0.150,0.300, 0.600, 1.200, 3.00 ng, AFG20.035, 0.175,0.350,0.700,1.400,3.50 ng 的混合標準系列溶液。取供試品粉末 2 g(過3號篩),精密稱定,置50 mL離心管中,加入 80%乙腈溶液(含 0.1%甲酸)20 mL,超聲10 min,離心 5 min(離心速率 10 000 r/min),取上清液,再加入0.5 g氯化鈉和2 g無水硫酸鎂,充分渦旋振蕩2 min,離心 5 min(離心速率 6 000 r/min),取上清液1 mL用50℃氮氣吹干,快速加入2 mmoL/L乙酸銨溶液(含 0.1% 甲酸)-乙腈(65 ∶35,V/V)1 mL,過微孔濾膜(0.22 μm),取濾液,供 LC-MS /MS 分析。
線性關系考察:取6個不同質量濃度的混合標準系列溶液,分別進樣,記錄峰面積。以質量濃度(X,ng/mL)為橫坐標、峰面積為縱坐標(Y)繪制標準曲線。結果見表3。
精密度試驗:取同一質量濃度的混合標準系列溶液(AFB1, AFG10.930 ng /mL; AFB20.300 ng /mL; AFG20.350 ng /mL),進樣 6 次。測定結果見表 3,各組分峰面積的 RSD均在 1.80% ~3.52%(n=6),表明儀器精密度良好。
重復性試驗:精密稱取空白樣品2 g(過3號篩),共6份,加入標準貯備液0.1 mL,按供試品溶液制備方法制備,按擬訂條件進樣測定。結果見表3,上述各組分峰面積的 RSD<4.00%(n=6),表明方法重復性良好。

表2 黃曲霉毒素的質譜離子參數
穩定性試驗:取重復性試驗項下供試品溶液1份,置室溫,分別于 0,4,8,12,24 h 時依法進樣測定。結果見表 3,各組分峰面積的 RSD <5.00%(n=5),表明供試品溶液在24 h內穩定性良好。
檢測限與定量限確定:將混合標準系列溶液加入空白樣品溶液中,依法制備供試品溶液并進樣測定。以信噪比(S/N)為 3∶1確定各組分的檢測限(LOD),當 S/N為10∶1確定各組分的定量限(LOQ)。結果見表3。
準確度試驗:取空白樣品2 g,精密稱定,共18份,每6份按低、中、高3種質量濃度水平分別精密加入標準貯備液 0.05,0.10,0.50 mL,依法制備供試品溶液并進樣測定,計算回收率。結果見表3。

表3 黃曲霉毒素方法學考察結果(n=6)
對10批市售樣品進行測定,結果在2批樣品中檢出AFB1,其余均未檢出。詳見圖1和圖2。
曾考察不同比例的甲醇-水系統、乙腈-水系統、乙酸銨-乙腈系統等多個流動相體系進行梯度洗脫。結果顯示,在2 mmoL/L乙酸銨溶液的流動相體系下,各化合物的響應值最高、峰形較好,且加入一定量的甲酸可進一步提高各化合物的離子化效率,故選取2 mmoL/L乙酸銨溶液(含0.1%甲酸)-乙腈系統為流動相。
本試驗中對影響離子化效率的干燥器溫度、鞘氣溫度、鞘氣流量、霧化器壓力、毛細管電壓、碰撞能量等條件均進行了優化,最終選擇電噴霧正離子掃描模式,得各化合物最佳的質譜條件。

圖1 黃曲霉毒素定性和定量離子對的DMRM圖
提取溶劑選擇:曾考察不同提取溶劑對4種黃曲霉毒素的提取效率,比較了甲醇、乙腈、不同比例的酸化甲醇水溶液(含0.1%甲酸)、不同比例的酸化乙腈水溶液(含0.1%甲酸),結果發現,不同類型的提取溶劑對黃曲霉毒素的提取效率存在差異。當提取溶劑為80%乙腈溶液(含0.1%甲酸)時,提取效率最高,各化合物回收率均超過85%,且選擇高有機相比例的提取溶劑,可明顯縮短氮吹時間,節約試驗時間。因此,確定80%乙腈溶液(含0.1%甲酸)為提取溶劑。
提取方式選擇:曾考察超聲波提取、渦旋振蕩提取2種方式對提取效率的影響,結果無顯著性差異。從試驗操作的方便性考慮,宜采用超聲波提取。此外,進一步比較了不同超聲時間(2,5,10,20,30 min)對提取結果的影響。結果顯示,樣品超聲處理10 min和20 min與30 min相比,回收率無顯著差異,故選擇超聲處理10 min。
鹽析劑和復溶溶劑選擇:QuEChERS方法中鹽析劑對黃曲霉毒素的回收率也有一定影響。經比較發現,0.5 g氯化鈉和2 g無水硫酸鎂能促進提取液分層,回收效率最高。曾考察樣品在氮吹蒸干后不同的復溶溶劑對試驗的影響,比較甲醇、乙腈、2 mmoL/L乙酸銨溶液(含 0.1% 甲酸)-乙腈(65 ∶35,V/V)的復溶溶液,結果直接采用甲醇或乙腈作為復溶溶液,會出現溶劑效應。故最終選擇2 mmoL/L乙酸銨溶液(含0.1%甲酸)-乙腈(65∶35,V/V)作為復溶溶液,也作為流動相的初始比例溶液。

圖2 典型陽性供試品定性和定量離子對的DMRM圖
本研究中建立了基于QuEChERS原理的樣品前處理方法,結合UPLC-MS/MS技術,建立中藥飲片中4種黃曲霉毒素(AFB1,AFB2,AFG1,AFG2)的檢測方法。該方法快速簡便、操作性強、靈敏度高,為中藥飲片中快速檢測4種黃曲霉毒素提供了新的研究思路和參考。